Park Seung-Moon;Choi Eun-Jin;Kwon Tae-Ho;Jang Yong-Suk;Yoo Han-Sang;Choi Woo Bong;Park Bong-Kyun;Kim Dae-Hyuk
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.10
no.4
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pp.362-366
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2005
Actinobacillus pleuropneumoniae is an important pig pathogen, which is responsible for swine pleuropneumonia, a highly contagious respiratory infection. To develop subunit vaccines for A. pleuropneumoniae infection, the Apx toxin genes, apxI and apxII, which are thought to be important for protective immunity, were expressed in Saccharomyces cerevisiae, and the induction of immune responses in mice was examined. The apxI and apxII genes were placed under the control of a yeast hybrid ADH2-GPD promoter (AG), consisting of alcohol dehydrogenase II (ADH2) and the GPD promoter. Western blot analysis confirmed that both toxins were successfully expressed in the yeast. The ApxIA and ApxIIA-specific IgG antibody response assays showed dose dependent increases in the antigen-specific IgG antibody titers. The challenge test revealed that ninety percent of the mice immunized with ApxIIA or a mixture of ApxIA and ApxIIA, and sixty percent of mice immunized with ApxIA survived, while none of those in the control groups survived longer than 36 h. These results suggest that vaccination of the yeast expressing the ApxI and ApxII antigens is effective for the induction of protective immune responses against A. pleuropneumoniae infections in mice.
Dao, Hoai Thu;Do, Van Tan;Truong, Quang Lam;Hahn, Tae-Wook
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.7
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pp.1037-1043
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2020
Actinobacillus pleuropneumoniae (APP) is a causative agent of porcine pleuropneumonia. Therefore, the development of an effective vaccine for APP is necessary. Here, we optimized the culture medium and conditions to enhance the production yields of Apx toxins in APP serotype 1, 2, and 5 cultures. The use of Mycoplasma Broth Base (PPLO) medium improved both the quantity and quality of the harvested Apx toxins compared with Columbia Broth medium. Calcium chloride (CaCl2) was first demonstrated as a stimulation factor for the production of Apx toxins in APP serotype 2 cultures. Cultivation of APP serotype 2 in PPLO medium supplemented with 10 ㎍/ml of nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) and 20 mM CaCl2 yielded the highest levels of Apx toxins. These findings suggest that the optimization of the culture medium and conditions increases the concentration of Apx toxins in the supernatants of APP serotype 1, 2, and 5 cultures and may be applied for the development of vaccines against APP infection.
Actinobacillus (A.) pleuropneumoniae is the etiological agent of a porcine pleuropneumonia and have great economic importance to the global swine industry. For recent 5 years, a total of 50 pleuropneumonia cases of 24 pig farms were selected from pig lungs submitted to the College of Veterinary Medicine, Jeju National University using polymerase chain reaction (PCR) analysis. Collected lungs were fixed in 10% neutral phosphate-buffered formalin and processed for histological examination. Serotypes of A. pleuropneumoniae in pneumonic lesions were analyzed by PCR methods. And the antimicrobial susceptibility of A. pleuropneumoniae isolates was determined by a disc diffusion test. Grossly, unilateral distribution of hemorrhagic or necrotic pneumonic lesions was more common than bilateral distribution in lungs. In peracute or acute cases, histopathologic changes were characterized by necrosis, hemorrhage, neutrophils infiltration, vascular thrombosis, widespread edema and fibrinous exudates. Following the acute response, macrophage infiltration, marked fibrosis around zonal necrotic areas, and marked fibrous pleuritis were characteristic in chronic cases. A total of 50 pleuropneumonia were associated with A. pleuropneumoniae serotype 5 in 46 cases (92%), serotype 2 in 3 cases (6%), and both 2 and 5 in 1 case (2%). More than 90% of collected isolates showed high sensitivity to ceftiofur, amoxicillin, and colistin. However, ampicillin, penicillin, and tylosin showed low susceptibility. The results of this study demonstrated that A. pleuropneumoniae serotype 5 was predominant at porcine pleuropneumonia cases in Jeju.
The effect of relative humidity in swine house on swin pleuropneumonia was examined in piglets experimentally infected with Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 5. A total of 20 piglet were grown under 30~40%, 41~50%, 51~64% and 65~80% relative humidity chambers after intratracheal inoculation of A pleuropneumoniae. Characteristic fibrinous pleuropneumonia was observed in the pigs grown at the low relative humidity groups. The detailed results were as follows : 1. Growth performance and environment conditions were lower than high relative humidity groups. 2. Characteristic histopathological findings were fibrinous pleuritis and pneumonia accompanied congestion, hemorrhage, thrombosis and edematous change. 3. Antigenic distribution of inoculated bacterium was found mainly in alveolar macrophages or accumulated foci of macrophages adjacent to necrotic area. 4. Characteristic electron microscopic findings were proliferation of type II pneumocyte with increased lamella bodies and activated alveolar macrophages with pseudopods and widening of interstitium.
Dao, Hoai Thu;Truong, Quang Lam;Do, Van Tan;Hahn, Tae-Wook
Journal of Veterinary Science
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v.21
no.2
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pp.20.1-20.13
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2020
Actinobacillus pleuropneumoniae (APP) causes a form of porcine pleuropneumonia that leads to significant economic losses in the swine industry worldwide. The apxIBD gene is responsible for the secretion of the ApxI and ApxII toxins and the pnp gene is responsible for the adaptation of bacteria to cold temperature and a virulence factor. The apxIBD and pnp genes were deleted successfully from APP serotype 1 and 5 by transconjugation and sucrose counter-selection. The APP1ΔapxIBDΔpnp and APP5ΔapxIBDΔpnp mutants lost hemolytic activity and could not secrete ApxI and ApxII toxins outside the bacteria because both mutants lost the ApxI- and ApxII-secreting proteins by deletion of the apxIBD gene. Besides, the growth of these mutants was defective at low temperatures resulting from the deletion of pnp. The APP1ΔapxIBDΔpnp and APP5ΔapxIBDΔpnp mutants were significantly attenuated compared with wild-type ones. However, mice vaccinated intraperitoneally with APP5ΔapxIBDΔpnp did not provide any protection when challenged with a 10-times 50% lethal dose of virulent homologous (APP5) and heterologous (APP1) bacterial strains, while mice vaccinated with APP1ΔapxIBDΔpnp offered 75% protection against a homologous challenge. The ΔapxIBDΔpnp mutants were significantly attenuated and gave different protection rate against homologous virulent wild-type APP challenging.
To establish an effective diagnostic measure for detection of the antibodies against Actinobacillus pleuropneumoniae, the methods for tube agglutination test (TAT), plate agglutination test (PAT), micro-agglutination test(MAT) and agar-gel immunodiffusion test(ID) were improved and standarized, and the comparative studies were carried out. The results obtained through the experiments were summarized as follows. 1. The rabbit hyperimmune sera to reference serotypes 1 to 6 were cross-tested with TAT, PAT, MAT and ID. In the homologous systems, the range of antibody titers in TAT was 80 to 640, showing the cross-reaction in serotypes 3, 4, 5 and 6. The range of antibody titers in PAT was 4 to 64, showing the cross-reaction in serotypes 3, 4, 5 and 6. In ID, the range of antigen titers was 8 to 32, and cross-reaction was observed in serotype 5. 2. The optimal concentration of antigen in PAT and MAT were 100mg /ml and 1.25mg /ml respectively. The most sensitive reaction in MAT was observed in 52$^{\circ}C$ for 18hrs. 3. In ID, the most promising antigen and the buffer for agar-gel were EDTA-treated antigen and 0.05M tris buffer (pH 7.2), respectively. 4. By the tests for 200 swine sera, it was found that the frequency of positive reaction were 203 in TAT, 240 in PAT and 163 in ID. 5. When compared the titers of TAT with those of MAT for 200 swine sera, MAT showed the higher titer than TAT being increased by relative correlation. Int was found that the titer for positive readings were 20 in TAT and 40 in MAT. 6. when compared the results of ID with those of TAT for 200 swine sera, all sera with TAT titer under 10 were negative in ID. Of the sera with TAT titer 20 and 40, 55.1% nd 91.8% were positive in ID, respectively. All sera with TAT titer above 80 were positive in ID. In comparison of ID and MAT, all sera with MAT titer under 20 were negative in ID. Of the sera with MAT titer 40 and 80, 24.7% and 93.9% were positive in ID, respectively. All sera with MAT titer over 160 showed positive in ID. 7. In conclusion, the established MAT showed high sensitivity but low specificity, wherease ID revealed low sensitivity but high specificity.
In our previous studies, we have identified several in vivo-induced antigens and evaluated their potential as subunit vaccine candidates in a murine model, in which the recombinant protein GalT showed the most potent immunogenicity and immunoprotective efficacy against Actinobacillus pleuropneumoniae. To exploit a more efficient way of delivering GalT proteins, in this study, we employed the widely studied E. coli outer membrane vesicles (OMVs) as a platform to deliver GalT protein and performed the vaccine trial using the recombinant GalT-OMVs in the murine model. Results revealed that GalT-OMVs could elicit a highly-specific, IgG antibody titer that was comparable with the adjuvant GalT group. Significantly higher lymphocyte proliferation and cytokines secretion levels were observed in the GalT-OMVs group. 87.5% and 50% of mice were protected from a lethal dose challenge using A. pleuropneumoniae in active or passive immunization, respectively. Histopathologic and immunohistochemical analyses showed remarkably reduced pathological changes and infiltration of neutrophils in the lungs of mice immunized with GalT-OMVs after the challenge. Taken together, these findings confirm that OMVs can be used as a platform to deliver GalT protein and enhance its immunogenicity to induce both humoral and cellular immune responses in mice.
Swine respiratory diseases have induced severe economic losses in swine industry worldwide. Several methods have been developed and applied to prevent and control the disease. However, those are still problematic in swine industry. Recently, the use of egg yolk antibodies with several advantages was introduced and applied to control diseases in animal as well as human. As the first step of the use of egg yolk antibodies in the control of the swine respiratory diseases, we investigated the immunogens of the causative agensts of the diseases and immune response in egg yolk of hens immunized with them. Bacterial antigens prepared from Bordetella bronchiseptica, Pasteurella multocida 3A and 4D, and Actinobacillus pleuropneumaniae serotype 2 and 5 were analyzed by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, Western blot and toxicity test in mice. The antigens were injected into laying hens in order to produce antibodies against them in egg yolk. After chickens were immunized three times in 2 weeks interval, the profile of antibody production was examined by ELISA. The production of antibody in egg yolk was started in 2 weeks after the first injection, reached peak in 6-8 weeks and maintained until 12 weeks. Of two adjuvants used in this study, ISA70 was more effective than aluminum hydroxide gel in enhancing immunogenecity, laying rates and safety in hens. These results suggested that egg yolk antibodies could be a good source for production of antibodies specific to pathogenic bacteria inducing respiratory diseases of swine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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