Kim Il-Sup;Yun Hae-Sun;Choi Hye-Jin;Sohn Ho-Yong;Yu Choon-Bal;Kim Jong-Guk;Jin Ing-Nyol
Journal of Life Science
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v.16
no.3
s.76
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pp.454-458
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2006
HSF1 is the heat shock transcription factor in Saccharomyces cerevisiae. S. cerevisiae KNU5377 can ferment at high temperature such as $40^{\b{o}}C$. We have been the subjects of intense study because Hsf1p mediates gene expression not only to heat shock, but to a variety of cellular and environmental stress challenges. Basing these facts, we firstly tried to construct the hsf1 gene-deleted mutant. PCR-method for fast production of gene disruption cassette was introduced in a thermotolerant yeast S. cerevisiae KNU5377, which allowed the addition of short flanking homology region as short as 45 bp suffice to mediate homologous recombination to kanMX module. Such a cassette is composed of linking genomic DNA of target gene to the selectable marker kanMX4 that confers geneticin (G418) resistance in yeast. That module is extensively used for PCR-based gene replacement of target gene in the laboratory strains. We describe here the generation of hsf1 gene disruption construction using PCR product of selectable marker with primers that provide homology to the hsf1 gene following separation of haploid strain in wild type yeast S. cerevisiae KNU5377. Yeast deletion overview containing replace cassette module, deletion mutant construction and strain confirmation in this study used Saccharomyces Genome Deletion Project (http:://www-sequence.standard.edu/group/yeast_deletion_project). This mutant by genetic manipulation of wild type yeast KNU5377 strain will provide a good system for analyzing the research of the molecular biology underlying their physiology and metabolic process under fermentation and improvement of their fermentative properties.
The endoxylanase (GenBank Access No. U51675) of Bacillus spp. and endoglucanase (GenBank Access No. AY466436) of Trichoderma spp. were separately inserted downstream of the yeast constitutive ADHI promoter, resulting in three different plasmids (pAGX1, pAGX2, and pAGX3) according to the transcription direction of two genes. When the yeast transformants, S. cerevisiae SEY2102 harboring each expression plasmid, were grown on YPD medium, the total activities of the enzymes were approximately 3.01 unit/ml, 3.24 unit/ml, and 7.56 unit/ml for endoxylanase and 0.60 unit/ml, 0.54 unit/ml, and 0.39 unit/ ml for endoglucanase, in the following order: the pAGX1, pAGX2, and pAGX3. More than 70% of the endoxylanase and endoglucanase activities was found in the extracellular media.
Topoisomearse II is an essential enzyme in all organisms with several independent roles in DNA metabolism. Recently, it has been demonstrated that the C-terminal region of topoisomerases II is associated with hetero-logous protein-protein interactions in human and yeast. In this study, we identified that RTP1, a rat homologue of EIA binding protein BS69, is another topoisomerae II interacting protein by yeast two-hybrid screening. RTP1 has an E1A-binding domain and a MYND motif, which are known to be required for transcriptional regulation by binding to other proteins and interaction with the leucine zipper motif of topoisomerase II. The physical interaction between RTP1 and topoisomerase ll$\alpha$ was examined by GST pull-down assay in vitro. The expression level of RTP1 peaks in S phase as that of topoisomerase ll$\alpha$. These results suggest that the interaction between topoisomerase ll$\alpha$ and RTP1 might play an important role in regulating the transcription of genes involved in DNA metabolism in higher eukaryotes.
Glutaredoxin (Grx) is a small, heat-stable redox protein acting as a multi-functional glutathione (GSH)-dependent disulfide oxidoreductase. We have cloned the monothiol Grx5 gene from the genomic DNA of the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. It has 1,904 bp, with one intron, and encodes a putative protein of 146 amino acids with a molecular mass of 16.5 kDa. Recombinant Grx5 produced functional Grx in S. pombe cells. NO-generating sodium nitroprusside (SNP, 1.0 and 2.0 mM) and potassium chloride (KCl, 0.2 and 0.5 M) increased the synthesis of ${\beta}$-galactosidase from a Grx5-lacZ fusion gene, and transcription of Grx5 was also enhanced by SNP and KCl. Synthesis of ${\beta}$-galactosidase from the Grx5-lacZ fusion was lower in Pap1-negative TP108-3C cells than in wild type KP1 cells, and when Pap1 was overproduced in KP1 cells, the level of ${\beta}$-galactosidase increased. We also found that Pap1 is involved in the induction of Grx5 by SNP and KCl. S. pombe Grx5 may play a crucial role in responses to nitrosative and osmotic stresses.
Heterotrimeric GTP binding proteins (G proteins) mediate signal transduction generated by neurotransmitter and hormones. Among G-proteins, Go is classified as a member of the Go/Gi family and the most abundant heterotrimeric G protein in brain. Most of the mechanistic analyses on the activation of Go indicated its action to be mediated by the $G{\beta}{\gamma}$ dimer because downstream effectors for its ${\alpha}$ subunit have not been clearly defined. To determine the downstream effectors of alpha subunits of Go ($Go{\alpha}$), we used yeast two-hybrid system to screen $Go{\alpha}$ interacting partners in cDNA library from the human brain. A brain specific high mobility group box containing protein (BHX), A possible transcription factor, was identified as a $Go{\alpha}$ interacting protein. We confirmed interaction between $Go{\alpha}$ and BHX employing in vitro affinity binding assay. Moreover, active form of $Go{\alpha}$ preferentially interacts with BHX than inactive farm. Our findings indicate that $Go{\alpha}$ could modulate gene expression via interaction with BHX during neuronal or brain development.
During pretreatment of lignocellulosic biomass, a variety of fermentation inhibitors, including acetic acid and vanillin, are released. Using DNA microarray analysis, this study explored genes of the budding yeast Saccharomyces cerevisiae that respond to vanillin-induced stress. The expression of 273 genes was upregulated and that of 205 genes was downregulated under vanillin stress. Significantly induced genes included MCH2, SNG1, GPH1, and TMA10, whereas NOP2, UTP18, FUR1, and SPR1 were down regulated. Sequence analysis of the 5'-flanking region of upregulated genes suggested that vanillin might regulate gene expression in a stress response element (STRE)-dependent manner, in addition to a pathway that involved the transcription factor Yap1p. Retardation in the cell growth of mutant strains indicated that MCH2, SNG1, and GPH1 are intimately involved in vanillin stress response. Deletion of the genes whose expression levels were decreased under vanillin stress did not result in a notable change in S. cerevisiae growth under vanillin stress. This study will provide the basis for a better understanding of the stress response of the yeast S. cerevisiae to fermentation inhibitors.
Park, Eun-Hee;Lee, Dae-Hee;Seo, Jin-Ho;Kim, Myoung-Dong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.21
no.3
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pp.277-283
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2011
Glyoxalase I catalyzes the conversion of methylglyoxal to S-D-lactoylglutathione in the presence of glutathione. The structural gene of glyoxalase I (GLO1) was cloned from an osmotolerant yeast, Candida magnoliae, which produces a functional sweetener, erythritol, from sucrose. DNA sequence analysis revealed that the uninterrupted open reading frame (ORF) of C. magnoliae GLO1 (CmGLO1) spans 945 bp, corresponding to 315 amino acid residues, and shares 45.2% amino acid sequence identity to Saccharomyces cerevisiae Glo1. The cloned ORF in a multicopy constitutive expression plasmid complemented the glo1 mutation of S. cerevisiae, confirming that it encodes Glo1 in C. magnoliae. The responses of CmGLO1 to environmental stresses were different from those of S. cerevisiae, which only responds to osmotic stress. An enzyme activity assay and reverse transcription polymerase chain reaction revealed that the expression of CmGLO1 is induced by stress inducers such as methylglyoxal, $H_2O_2$, KCl, and NaCl. The GenBank Accession No. for CmGLO1 is HM000001.
Total tRNA genes from Aspergillus nidulans were cloned for the further investigation of the structure and expression of Aspergillus tRNA genes. Aspergillus DNA was isolated from spores and cloned into pBR322 plasmid DNA using BamHI and $T_4$ ligase. The recombinant hybrid DNA was transformed into E. coli HB101 and some 30,000 transformants were initially selected. Of these, about 5,300 E. coli clones containing Aspergillus DNA inserted into plasmid pBR322 at BamHl site have been isolated. The hybridization data obtained from the labeled Aspergillus $^{32}P-tRNA$ indicated that 105 colonies carried the total tRNA genes. From the data above and cohybridization experiment, tRNA genes of Aspergillus nidulans seem to be twice more clustered than those of yeast.
A cDNA that was rapidly induced upon abscisic acid, cold, drought, mechanical wounding and to a lesser extent, by high salinity treatment, was isolated from Arabidopsis seedlings. It was classified as DREB subfamily member based on multiple sequence alignment and phylogenetic characterization. Since it encoded a protein with a typical ERF/AP2 DNA-binding domain and was closely related to the TINY gene, we named it TINY2. Gel retardation assay revealed that TINY2 was able to form a specific complex with the previously characterized DRE element while showed only residual affinity to the GCC box. When fused to the GAL4 DNA-binding domain, either full-length or its C-terminus functioned effectively as a trans-activator in the yeast one-hybrid assay while its N-terminus was completely inactive. Our data indicate that TINY2 could be a new member of the AP2/EREBP transcription factor family involved in activation of down-stream genes in response to environmental stress.
AtbZIP16 and AtbZIP68 are two putative G group bZIP transcription factors in Arabidopsis thaliana, the other three members of G group bZIPs are GBF1-3 which can bind G-box. Members of G group have conservative protein structure: highly homological basic region and a proline-rich domain in the N-terminal region. Here, we report that AtbZIP16 and AtbZIP68 could bind cis elements with ACGT core, such as G-box, Hex, C-box and As-1, but with different binding affinities which from high to low were G-box > Hex > C-box > As-1; AtbZIP16 and AtbZIP68 could form homodimer and form heterodimer with other members of G group; N-terminal proline rich domain of AtbZIP16 had transactivation activity in yeast cells while that of AtbZIP68 did not; AtbZIP16 and AtbZIP68 GFP fusion protein localized in the nucleus of onion epidermal cells. These results indicated that AtbZIP16 and AtbZIP68 were two new members of GBFs. In Arabidopsis, AtbZIP16 and AtbZIP68 may also participate in light-responsive process in which GBF1-3 are involved.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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