Rotaviruses are the world-wide leading causative agents of severe dehydrating gastroenteritis in young children and animals. The outer capsid glycoprotein VP7 and inner capsid glycoprotein VP6 of rotaviruses are highly antigenic and immunogenic. An SFV-based expression system has recently emerged as a useful tool for heterologous protein production in mammalian cells, exhibiting a much more efficient performance compared to other gene expression systems. Accordingly, the current study adopted an SFV-based expression system to express the VP7 of a group A human rotavirus from a Korean isolate, and the VP6 of a group B bovine rotavirus from a Korean isolate, in mammalian cells. The genes of the VP6 and VP7 were inserted into the SFV expression vector pSFV-1. The RNA was transcribed in vitro from pSFV-VP6 and pSFV-VP7 using SP6 polymerase. Each RNA was then electroporated into BHK-21 cells along with pSFV-helper RNA containing the structural protein gene without the packaging signal. The expression of VP6 and VP7 in the cytoplasm was then detected by immunocytochemistry. The recombinant virus was harvested by ultracentrifugation and examined under electron microscopy. After infecting BHK-21 cells with the defective viruses, the expressed proteins were separated by SDS-PAGE and analyzed by a Western blot. The results indicate that an SFV-based expression system fur the VP6 and VP7 of rotaviruses is an efficient tool for developing a diagnostic kit and/or preventive vaccine.
The VP2 gene of infectious bursal disease virus (IBDV) Chinju which was previously detected in Chinju, Korea was cloned and sequenced to establish the information for the development of genetically engineered vaccines and diagnostic reagents against IBDV. The nucleotide sequence of the entire Chinju VP2 gene consisted of 1,356 bases long encoding 452 amino acids in a single open reading frame (ORF). It consisted of 368 adenine (27.1%), 363 cytosine (26.8%), 339 guanine (25.0%) and 286 thymine (21.1%) residues. The predicted $M_r$ of the Chinju VP2 protein was 48 kDa, and the protein contained 13 phosphorylation sites by protein kinase C, casein kinase II or tyrosine kinase, whereas 3 asparagine-linked glycosylation sites were recognized. The nucleotide sequence of Chinju VP2 ORF had a very close phylogenetic relationship with 98-99% homology to that of the very virulent IBDVs (vvIBDVs) HK46, OKYM, D6948, UK661, UPM97/61 and BD3/99. Also, the Chinju VP2 protein revealed a very close phylogenetic relationship with 99-100% homology to that of these vvIBDVs. The Chinju VP2 protein had 100% amino acid identity in the variable region of residues 206-360 with that of the D6948, HK46, OKYM and UK661, as well as 100% identity in two hypervariable regions of residues 212-224 and 314-324 with those of the D6948, HK46, OKYM, UK661, UPM97/61 and BD3/99. The amino acid sequence of the chinju VP2 protein contained a serine-rich heptapeptide of SWSASGS as in these vvIBDVs.
To detect the genetic variations among infectious bursal disease (IBD) vaccine strains, the hypervariable region of VP2 gene of seven IBDV vaccine strains were amplified using reverse transcriptase/polymerase chain reation(RT/PCR). Ampllified PCR products of IBDV were cloned, sequenced, and compared with published sequences for IBDV. Vaccine strains (JOONG, HAN, B7, IB, BU2, G2, CIL) used in Korea and Korean field isolates (SH/92, K1, 310) had 81%(310 and HAN) ~ 98%(SH/92 and CIL) amino acid sequence similarity. Vaccine strains had 80%(HAN and IB) ~ 99%(JOONG and BU2) amino acid sequence similartiy. Intermediate plus vaccine strain, CIL was not substituted at positions 279(D $\rightarrow$ N) and 284(A $\rightarrow$ T), and conserved in serine-rich heptapeptide. At the two hydrophilic region, JOONG, IB and Bu2 strains had identical amino acid sequence comparing with STC strain. By phylogenetic analysis, JOONG and DAE strains were categorized in same group with BU2. The CIL and STC strains closely related but seperated from G2, HAN, B7 and IB strains.
A VP6 fragments was subcloned with BamHI in the binary pMBP-1 vector under Califlower Mosaic Virus (CaMV) 355 promoter and neomycin phosphotransferase II (npt II) gene. The recombinant binary vector was mobilized into Agrobacterium-tumefaciens LBA4404 by the freeze-thaw method and potato (Solanum tubensum L. cv Desiree) was transformed by modified leaf-disc cocultivation. Shoots were induced on MS medium with 0.01 mg/L NAA, 0.1 mg/L GA$_3$, 2.0 mg/L Zeatin, 100.0 mg/L kanamycin, 500.0 mg/L carbenicillin. In order to identify the copy number of VP6 into potato plant, total genomic DNA was isolated from transgenic potato and analysed by Southern blotting. Genomic DNA and total mRNA analysis demonstrated the incorporation of the foreign gene into the potato genome, as well as their transcription.
Kim, Won-Yong;Song, Mi-Ok;Park, Chul-Min;Im, Sung-Joon;Kim, Ki-Jung;Chung, Sang-In;Choi, Chul-Soon;Lim, In-Seok
The Journal of Korean Society of Virology
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v.28
no.3
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pp.247-265
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1998
To determine the sequence and expression of the VP7 gene of Korean isolates (CAU-9), viral RNA was purified and used for cDNA amplification by RT-PCR. The VP7 cDNA was cloned, sequenced, and expressed using baculovirus expression system. The result showed that the sequence homologies CAU-9 compared with foreign isolated strains Wa, 417, TMC-II, 95B and SA11 were ranged from 74.0% to 95.1 % of nucleotide sequence and 35% to 43% of amino acid sequence, respectively. High homology of CAU-9 was observed in Japanease isolates 417 (nucleotide sequence homology was 95.1% and amino acid sequence homology was 43%). To express VP7 gene, the VP7 cDNA was cloned into pCR-Bac vector and inserted into the genome of baculovirus adjacent to the polyhedrin promoter by cotransfection of Spodoptera frugiperda (Sf9) insect cells with wild type baculovirus DNA. In antigenic analysis of Sf9 cells inoculated with the recombinant VP7, immunofluorescence assay revealed positive for viral antigens. In metabolic labeling of Sf9 cell lysates infected with recombinant baculoviruses, it was revealed that the protein of 34 kDa was expressed. The limited study of expressed VP7 protein inoculated with guinea pigs failed to elicit neutalizing antibody. As a results, the sequence analysis and expression of VP7 protein of rotavirus CAU-9 isolated from an infant in Korea could permit the conformation and development of virus like particles which may be useful in designing vaccine strategy.
The neuropeptide vasopressin (VP) is a nine- amino acid hormone synthesized as preprohormone in the cell bodies of hypothalamic magnocellular neurons. The tumor in magnocellular neurons of the hypothalamus is associated with disfunctions of the cell bodies, leading to the diabetes insipidus. In order to produce the disease models with a defect in VP synthesis and its secretion, we have produced the transgenic mice regulated by VP constructs containing 3.8 kbp of the 5'flanking region and all the exons and introns in the mouse VP gene, which was fused at the end of exon 3 to a SV40 Tag. The two VP-transgene constructs differed by the lengths of their VP gene 3' flanking regions (2.1 versus 3.6 kbp). (omitted)
Rotaviruses have been known to be a major etiological agent of gastroenteritis in both infants and young animals. Subsequently new rotaviruses, which were morphologically indistinguishable but antigenically and electrophoretically distinct with each other, were reported from several animals throughout world including Korea. These new rotaviruses were named as non-group A or group B or group C rotaviruses and so on. It has been very difficult to isolate and grow the non-group A rotaviruses in vitro, and this has greatly limited the characterizations of non-group A rotaviruses and serological studies. In this study, monoclonal antibodies (MAbs) against porcine non-group A rotavirus were produced and characterized. The VP6 gene of porcine group C rotavirus Korean isolate(#06-52-1) was cloned and expressed. For expression of VP6 gene, baculovirus expression system was applied. The VP6 gene and expressed protein in the recombinant virus were confirmed by polymerase chain reaction (PCR), indirect fluorescence antibody (IFA) test and Western blot, respectively. The expressed VP6 was used for MAbs production. The MAbs produced in this study would be promising as diagnostic reagents for detection of group C rotavirus infection.
Rotaviruses are the most common cause of severe vomiting and diarrhea in children worldwide and classified as a genus in the family Reoviridae. Rotavirus has eleven segmented dsRNAs and the virion consists of three shells. Outer capsid VP7 and VP4 induce neutralizing antibodies and are classified into G types (glycoprotein VP7) and P types (protease-sensitive VP4). Characterization of VP7 gene of Korean isolates of human rotavirus was performed using multiplex PCR and nucleotide sequence analysis. After RT-PCR amplification of full length (1,062 bp) of VP7 genes, the amplified PCR products were G typed by multiplex PCR and the nucleotide sequences were compared with those of reference rotavirus from GenBank. The G type analysis revealed that 25% (2/8) belong to G1, whereas 37.5% (3/8) benong to G2 and G4, respectively. The Korean isolates within the same serotypes showed high homology of nucleotide sequences and could be discriminated from foreign isolates exception with two strains (CAU009 and CAU022). But Korean isolates CAU009 and CAU022 were close related into japanease isolates 417 (99.2%) and indian isolates (97.6%) than Korean isolatese. Our results showed that these two strains were supposed to be originated from abroad. As a results, The G typing and nucleotide sequence analysis of VP7 gene of rotavirus isolated from infants in Korea could be used for identification, serotying and determination of novel or unusual strains of rotaviruses.
This study was carried out to evaluate neutralization effects against WSSV using antiserum produced from recombinant envelop protein, rVP466 of WSSV. The VP466 gene of WSSV was cloned into pCold I expression vector and rVP466 was expressed in E. coli RIPL. The antiserum against rVP466 was produced in white rabbits (New Zealand white rabbit). The specific immunoreactivity to the antigen, rVP466, was confirmed by Western blot. The constant amounts of WSSV at $1{\times}10^4$ diluted stocks were mixed with various antiserum concentrations and then injected to the muscle of shrimp, Penaeus chinensis, for the neutralization challenge. The shrimps challenged with WSSV as a positive control and those with the mixture of WSSV and preimmune serum as a preimmune control showed 100% cumulative mortality at 17 days post challenge and 83% at 25 days post challenge, respectively. The shrimps challenged with 3 different mixtures of WSSV and rVP466 antiserum at ratios of 1:0.01, 1:0.1 and 1:1 showed 73%, 53% and 46% cumulative mortalities at 25 days post challenge, respectively. These results indicated that WSSV could be neutralized by the rVP466 antiserum. These results suggest that envelop protein VP466 is involved in the initial step of WSSV infection in shrimp.
Porcine rotaviruses are the most common causes of viral gastroenteritis in piglets around the world. The major G genotypes of porcine rotaviruses causing diarrhea were G4, G5 and G11 genotypes. Recently, G9 genotype rotaviruses were problemed at swine farms and frequently recognized from diarrheic piglets. In this study, a porcine rotavirus (PoRV-1) was isolated from piglet showing diarrhea using MA104 cells and confirmed as rotavirus by electron microscopy, genomic RNA electropherotyping and indirect immunofluorescence antibody tests. The nucleotide sequence of the VP7 gene of PoRV-1 was determined and compared with those of other genotype rotavirus strains from other parts of the world. Also, the nucleotide sequences of VP4, VP6 and NSP4 genes of PoRV-1 were determined and compared with those of other rotavirus strains from other countries. The results showed that the PoRV-1 isolate belonged to the G9 genotype and the P, I and E genotypes of PoRV-1 were P[23], I5 and E1, respectively. The Korean G9 PoRV-1 isolate and its nucleotide sequence data would be usefully used for the development of porcine rotavirus vaccines in near future.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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