Tylosin is a potent veterinary macrolide antibiotic produced by the fermentation of Streptomyces fradiae; however, it is necessary to modify S. fradiae strains to improve tylosin production. In this study, we established a high-throughput, 24-well plate screening method for identifying S. fradiae strains that produce increased yields of tylosin. Additionally, we constructed mutant libraries of S. fradiae via ultraviolet (UV) irradiation and/or sodium nitrite mutagenesis. A primary screening of the libraries in 24-well plates and UV spectrophotometry identified S. fradiae mutants producing increased yields of tylosin. Mutants with tylosin yield 10% higher than the wild-type strain were inoculated into shake flasks, and the tylosin concentrations produced were determined by high-performance liquid chromatography (HPLC). Joint (UV irradiation and sodium nitrite) mutagenesis resulted in higher yields of mutants with enhanced tylosin production. Finally, 10 mutants showing higher tylosin yield were re-screened in shake flasks. The yield of tylosin A by strains UN-C183 (6767.64 ± 82.43 ㎍/ml) and UN-C137 (6889.72 ± 70.25 ㎍/ml) was significantly higher than that of the wild-type strain (6617.99 ± 22.67 ㎍/ml). These mutant strains will form the basis for further strain breeding in tylosin production.
The mutagenesis-enhancing plasmid pKM101 and its mutant pSL4 were introduced into Escherichia coli B/r strains possessing different DNA repair capacities ($phr^{-}, recA^{-}, uvrA^{-}, uvrB^{-}$) and determined the protection effect and mutagenecity for UV and MNNG. The mutability and protection effect of plasmid pKM101 and pSL4 were affected by different DNA repair capacity. The mutagenecity and resistance of two plasmids were increased against UV and MNNG, and plasmid pSL4 had a higher effect than pKM101. We suggest that the functional differences between pKM101 and pSL4 is due to the variety of mutator gene.
Choi, Yeon Joo;You, Jin Sam;Ha, Jin Mok;Baik, Hyung Suk
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.2
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pp.144-150
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1997
After DNA damage, umuDC is the only SOS operon that must be induced to promote SOS mutagenesis in Escherichia coli. The recombinant plasmid pBC401 and pBC402 were constructed to fuse the lac structural genes with promoter region of umuDC operon to induce the expression of lacZ gene by DNA damage. We transformed the plasmid pBC401 and pBC402 into E. coli MC1061, lacZ deleted strain and determined the activity of $\beta$-galactosidase for various mutagen; UV, mitomycin C (MMC), N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), 4-nitroqunoline-1-oxide (NQO), ethyl methanesulfonate (EMS). The $\beta$-galactosidase activities of PBC401 and pBC402 for UV, MMC, and NQO were increased in proportion to expression time until 3 hours thereafter, the activities were constant or slightly decreased. The activities for MNNG and EMS were not so high as for UV, MMC, and NQO. When MNNG and EMS were treated, $\beta$-galactosidase activity of pBC402 was slightly lower than pBC401 but when UV, MMC, and NQO were treated in pBC402, $\beta$-galactosidase activity was slightly higher than in pBC401. Therefore, the pBC402 was better than the pBC401 in terms of sensitivity for frameshift mutagen. We suggest that the plasmid pBC401 and pBC402 are easy to detect mutagens which cause frameshift mutation rather than point mutation.
In epistatic grouping of uvs genes in A. nidulans based on the sensitivities to 4-NQO, the same epistatic grouping was obtained as those for UV and MMS-sensitivities. Based on the MMS-sensitivities, uvsA demonstrated synergistic interactions to uvsF and uvsH, the UvsF group genes, but exhibited epistatic interactions to uvsB and uvsC. The same epistatic grouping was also seen for uvsI when UV was irradiated after 4h germination of conidia, showing synergistic interactions to uvsH, uvsC, and uvsB. However, epistatic interactions were observed with uvsF, which were different from those obtained in quiescent conidia by UV. Intergenic and intragenic recombination frequencies were normal in uvsI compared with wild type.
Proceedings of the Korean Environmental Sciences Society Conference
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2001.11a
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pp.168-170
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2001
생물 계면활성제의 개발을 위해 MNNG(N-Methyl-N-Nitro- Nitrosoguanidine), EMS, UV radiator random mutation을 통해 가장 우수한 biosurfactant 생산 균주를 선별하였는데 MNNG를 처리한 균주가 유화활성 1.950, 표면장력 29.0dyne/cm으로 공시균주인 Pseudomonas aeruginosa EL-MS 유화활성 0.456과 표면장력 33.0dyne/cm에 비해 우수하였다.
Kim, Hye-Eun;Son, Chang-Jin;Jeong, Seon-Yong;Kim, Seong-Jun
한국생물공학회:학술대회논문집
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2001.11a
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pp.723-726
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2001
This study was performed to improve the yield of bacterial cellulose(BC) by UV and NTG mutagenesis of strain KJ-1 which produced largely BC. some mutants showed high BC productivity with twice elevation compared to that the wild strain KJ-1. A difference was found in production and bioconversion phase of synthesized organic acid, such as gluconic acid, 2-keto gluconic acid, and 5-keto gluconic acid between mutants and strain KJ-1 in the static culture. The organic acid produced in secondary metabolism phase, were more rapidly consumed in the culture with the mutants than that the parent strain after glucose in the broth was conversed to a limiting substrate. Therefore, we suggested the reason for increasing of BC production that the mutant strain consumed more efficiently synthesized acids as substrates than that of the parent strain.
This study was performed to develop mutant strain using a combination of UV irradiation procedures with protoplast mutagenesis in order to achieve an effective kasugamycin production from Streptomyceskasugaensis. Whenlessthan 1.0g/lof Linoleic acid was used, the cell growth was not inhibited. On the other hand, the cell growth was greatly inhibited when more than 1.6 g/l of linoleic acid was used. Among the various mutant strains, SK-12 was obtained in medium containing 1.6g/l of linoleic acid, showing the highest rate of both cell growth and kasugamycin production. In order to compare kasugamycin production with the SK-12 and the parent strain using soybean oil, cultures were performed in a flask. The production of kasugamycin was increased with the increase time. The maximum kasugamycin concentration was 1.2g/l after 6 days of culture. The product yield from soybean oil was 0.05g/l/g consumed carbon source, which was roughly 5.0 fold higher than the parent strain. These results show that it was effective method for obtaining a mutant resistant to linoleic acid for the effective production of kasugamycin from soybean oil.
Wild strain L-6 was subjected to combined mutagenesis, including UV irradiation, atmospheric and room temperature plasma, and ion beam implantation, to increase the yield of 1,3-dihydroxyacetone (DHA). With application of a high-throughput screening method, mutant Gluconobacter oxydans I-2-239 with a DHA productivity of 103.5 g/l in flask-shake fermentation was finally obtained with the starting glycerol concentration of 120 g/l, which was 115.7% higher than the wild strain. The cultivation time also decreased from 54 h to 36 h. Compared with the wild strain, a dramatic increase in enzyme activity was observed for the mutant strain, although the increase in biomass was limited. DNA and amino acid sequence alignment revealed 11 nucleotide substitutions and 10 amino acid substitutions between the sldAB of strains L-6 and I-2-239. Simulation of the 3-D structure and prediction of active site residues and PQQ binding site residues suggested that these mutations were mainly related to PQQ binding, which was speculated to be favorable for the catalyzing capacity of glycerol dehydrogenase. RT-qPCR assay indicated that the transcription levels of sldA and sldB in the mutant strain were respectively 4.8-fold and 5.4-fold higher than that in the wild strain, suggesting another possible reason for the increased DHA productivity of the mutant strain.
Vahed, Majid;Motalebi, Ebrahim;Rigi, Garshasb;Noghabi, Kambiz Akbari;Soudi, Mohammad Reza;Sadeghi, Mehdi;Ahmadian, Gholamreza
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.11
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pp.1519-1528
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2013
Bacillus pumilus SG2, a halotolerant strain, expresses two major chitinases designated ChiS and ChiL that were induced by chitin and secreted into the supernatant. The present work aimed to obtain a mutant with higher chitinolytic activity through mutagenesis of Bacillus pumilus SG2 using a combination of UV irradiation and nitrous acid treatment. Following mutagenesis and screening on chitin agar and subsequent formation of halos, the mutated strains were examined for degradation of chitin under different conditions. A mutant designated AV2-9 was selected owing to its higher chitinase activity. To search for possible mutations in the whole operon including ChiS and ChiL, the entire chitinase operon, including the intergenic region, promoter, and two areas corresponding to the ChiS and ChiL ORF, was suquenced. Nucleotide sequence analysis of the complete chitinase operon from the SG2 and AV2-9 strains showed the presence of a mutation in the catalytic domain (GH18) of chitinase (ChiL). The results demonstrated that a single base change had occurred in the ChiL sequence in AV2-9. The wild-type chitinase, ChiL, and the mutant (designated ChiLm) were cloned, expressed, and purified in E. coli. Both enzymes showed similar profiles of activity at different ranges of pH, NaCl concentration, and temperature, but the mutant enzyme showed approximately 30% higher catalytic activity under all the conditions tested. The results obtained in this study showed that the thermal stability of chitinase increased in the mutant strain. Bioinformatics analysis was performed to predict changes in the stability of proteins caused by mutation.
A mutant of Arthrospira platensis PCC 9108, strain M9108, obtained by mutagenesis with UV treatment, was able to mixotrophically grow in an SOT medium containing 40 g of glucose/l. The biomass and specific growth rate of strain M9108 (4.10 g/l and 0.70/d) were 1.9-fold and 1.4-fold higher, respectively, than those of the wild type (2.21 g/l and 0.58/d) under mixotrophic culture condition. In addition, when compared with the wild type, the content of ${\gamma}$-linolenic acid (GLA) in the mutant was increased when glucose concentration was increased. Compared with the wild type, the GLA content of the mutant was 2-fold higher in autotrophic culture and about 3-fold higher in mixotrophic culture. Thus, the mutant appears to possess more efficient facility to assimilate and metabolize glucose and to produce more GLA than its wild-type strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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