Hepatitis E virus (HEV) infections cause epidemic or sporadic acute hepatitis, which are mostly self-limiting. However, viral infection in immunocompromised patients and pregnant women may result in serious consequences, such as chronic hepatitis and liver damage, mortality of the latter of which reaches up to 20-30%. Type I interferon (IFN)-induced antiviral immunity is known to be the first-line defense against virus infection. Upon HEV infection in the cell, the virus genome is recognized by pathogen recognition receptors, leading to rapid activation of intracellular signaling cascades. Expression of type I IFN triggers induction of a barrage of IFN-stimulated genes, helping the cells cope with viral infection. Interestingly, some of the HEV-encoded genes seem to be involved in disrupting signaling cascades for antiviral immune responses, and thus crippling cytokine/chemokine production. Antagonistic mechanisms of type I IFN responses by HEV have only recently begun to emerge, and in this review, we summarize known HEV evasion strategies and compare them with those of other hepatitis viruses.
Herpes simplex virus types 1 and 2 (HSV-1 and HSV-2) are the most common cause of genital ulceration in humans worldwide. Typically, HSV-1 and 2 infections via mucosal route result in a lifelong latent infection after peripheral replication in mucosal tissues, thereby providing potential transmission to neighbor hosts in response to reactivation. To break the transmission cycle, immunoprophylactics and therapeutic strategies must be focused on prevention of infection or reduction of infectivity at mucosal sites. Currently, our understanding of the immune responses against mucosal infection of HSV remains intricate and involves a balance between innate signaling pathways and the adaptive immune responses. Numerous studies have demonstrated that HSV mucosal infection induces type I interferons (IFN) via recognition of Toll-like receptors (TLRs) and activates multiple immune cell populations, including NK cells, conventional dendritic cells (DCs), and plasmacytoid DCs. This innate immune response is required not only for the early control of viral replication at mucosal sites, but also for establishing adaptive immune responses against HSV antigens. Although the contribution of humoral immune response is controversial, $CD4^+$ Th1 T cells producing IFN-${\gamma}$ are believed to play an important role in eradicating virus from the hosts. In addition, the recent experimental successes of immunoprophylactic and therapeutic compounds that enhance resistance and/or reduce viral burden at mucosal sites have accumulated. This review focuses on attempts to modulate innate and adaptive immunity against HSV mucosal infection for the development of prophylactic and therapeutic strategies. Notably, cells involved in innate immune regulations appear to shape adaptive immune responses. Thus, we summarized the current evidence of various immune mediators in response to mucosal HSV infection, focusing on the importance of innate immune responses.
Lee, Hye-Ra;Choi, Un Yung;Hwang, Sung-Woo;Kim, Stephanie;Jung, Jae U.
Molecules and Cells
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v.39
no.11
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pp.777-782
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2016
The innate immune system has evolved to detect and destroy invading pathogens before they can establish systemic infection. To successfully eradicate pathogens, including viruses, host innate immunity is activated through diverse pattern recognition receptors (PRRs) which detect conserved viral signatures and trigger the production of type I interferon (IFN) and pro-inflammatory cytokines to mediate viral clearance. Viral persistence requires that viruses co-opt cellular pathways and activities for their benefit. In particular, due to the potent antiviral activities of IFN and cytokines, viruses have developed various strategies to meticulously modulate intracellular innate immune sensing mechanisms to facilitate efficient viral replication and persistence. In this review, we highlight recent advances in the study of viral immune evasion strategies with a specific focus on how Kaposi's sarcoma-associated herpesvirus (KSHV) effectively targets host PRR signaling pathways.
Upon viral infection, the host cell recognizes the invasion through a number of pattern recognition receptors. Melanoma differentiation associated gene 5 (MDA5) and retinoic acid-inducible gene-I (RIG-I) recognize RNA molecules derived from invading viruses, activating down-stream signaling cascades, culminating in the induction of the type I interferon. On the other hand, viruses have evolved to evade type I interferon-mediated inhibition. Hepatitis E virus has been shown to encode a few antagonists of type I interferon and it is not surprising that viruses encode multiple mechanisms of viral evasion. In the present study, we demonstrated that HEV PCP strongly down-regulates MDA5-mediated activation of interferon ${\beta}$ induction in a dose-dependent manner. Interestingly, MDA5 protein expression was almost completely abolished. In addition, polyinosinic polycytidylic acid (poly(I:C))- and Sendai virus-mediated activation of type I interferon responses were similarly abrogated in the presence of HEV PCP. Furthermore, HEV PCP down-regulates several molecules that play critical roles in the induction of type I IFN expression. Taken together, these data collectively suggest that HEV-encoded PCP is a strong antagonist of type I interferon.
Mohamed, Shereen H;Mahmoud, Nora F;Mohamed, Aly F;Kotb, Nahla S
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.16
no.14
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pp.5635-5641
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2015
Background: Cirrhosis is regarded as a possible end stage of many liver diseases, including viral infection. It occurs when healthy liver tissue becomes damaged and is replaced by scar tissue and finally may lead to hepatocellular carcinoma. Interferons (IFNs)are two general categories, type I and II. Type I includes one beta interferon and over 20 different alpha interferons. Alpha interferons are very similar in how they work, interacting with other proteins on cells like receptors. The main objective of this study was to compare Mx gene productivity post different cell line treatment with imported and Egyptian biosimilar locally produced IFNs, as well as the efficacy of those tested IFNs. Also, an assessment was made of sensitivity of different cell lines as alternatives to that recommended for evaluation of antiviral activity. Materials and Methods: Different cell lines (Vero, MDBK and Wish) were employed to evaluate cytotoxicity using the MTT assay. Antiviral activity was evaluated compared with standard IFN against VSV, Indiana strain -156, on tested rh-IFNs (imported; innovated and Egyptian biosimilar locally produced IFNs) in the pre-treated cell lines previously mentioned. The virus was propagated in the Wish cell line as recommended. Finally we estimated up-regulation of the Mx gene as a biomarker. Results: Data recorded revealed that test IFNs were safe in test cell lines. Viability was around 100%. Locally tested interferon did not realize the international potency limits, while the imported one was accepted compared with the standard IFN. These results were the same either using infectivity titer reduction assay or crystal violet staining of residual non- infected cells. Mx protein production was cell type related and confirmed by the detected Mx gene expressed in imported and locally produced IFN pre-treated cell lines. The expression of the gene was arranged in the order of Vero> wish > MDBK for the imported IFN, while for the Egyptian biosimillar locally produced one it was MDBK> Vero> wish. With regard to the antiviral activity there was a significant difference of imported IFN potency compared with the locally produced IFN (P<0.05), the IFN potential (antiviral activity) was not cell line related and showed non-significant difference for each separate product. Conclusions: Vero cells can be used as an alternative cell line for evaluation of IFN potency in case of unavailable USP recommended cell lines. Alternative potency evaluation assay could be used and proved significant difference in IFN potency in case of local and imported agents. Evaluation of antiviral activity could be used in parallel to viral infectivity reduction assay for better accuracy. Mx gene can be used as a marker for IFN potential.
Recognition of cytosolic DNA initiates a series of innate immune responses by inducing IFN-I production and subsequent triggering JAK1-STAT1 signaling which plays critical roles in the pathogenesis of infection, inflammation and autoimmune diseases through promoting B cell activation and antibody responses. The stimulator of interferon genes protein (STING) has been demonstrated to be a critical hub of type I IFN induction in cytosolic DNA-sensing pathways. However, it still remains unknown whether cytosolic DNA can directly activate the JAK1-STAT1 signaling or not. And the role of STING is also unclear in this response. In the present study, we found that dsDNA directly triggered the JAK1-STAT1 signaling by inducing phosphorylation of the Lyn kinase. Moreover, this response is not dependent on type I IFN receptors. Interestingly, STING could inhibit dsDNA-triggered activation of JAK1-STAT1 signaling by inducing SHP-1 and SHP-2 phosphorylation. In addition, compared with normal B cells, the expression of STING was significantly lower and the phosphorylation level of JAK1 was significantly higher in B cells from MRL/lpr lupus-prone mice, highlighting the close association between STING low-expression and JAK1-STAT1 signaling activation in B cells in autoimmune diseases. Our data provide a molecular insight into the novel role of STING in dsDNA-mediated inflammatory disorders.
Toll-like receptors (TLRs) play an important role in host defense by sensing invading microbial pathogens. The stimulation of TLRs by microbial components triggers the activation of the myeloid differential factor 88 (MyD88)- and toll-interleukin-1 receptor domain-containing adapter inducing interferon-$\beta$ (TRIF)-dependent downstream signaling pathways. TLR/MyD88 signaling pathway induces the activation of nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$) and the expression of inflammatory cytokine genes, including tumor necrosis factor-alpha, interleukin (IL)-6, IL-12, and IL-$1{\beta}$. On the other hand, TLR/TRIF signaling pathway induces the delayed-activation of NF-${\kappa}B$ and interferon regulatory factor 3 (IRF3), and the expression of type I interferons (IFNs) and IFN-inducible genes. The divalent heavy metal cadmium (Cd) is clearly toxic to most mammalian organ systems, especially the immune system. Yet, the underlying toxic mechanism(s) remain unclear. Cd inhibits the MyD88-dependent pathway by ceasing the activity of inhibitor-${\kappa}B$ kinase. However, it is not known whether Cd inhibits the TRIF-dependent pathway. Presently, Cd inhibited NF-${\kappa}B$ and IRF3 activation induced by lipopolysaccharide (LPS) and polyinosinic-polycytidylic acid. Cd inhibited LPS-induced IRF3 phosphorylation and IFN-inducible genes such as interferon inducible protein-10 and regulated on activation normal T-cell expressed and secreted (RANTES). These results suggest that Cd can modulate TRIF-dependent signaling pathways of TLRs.
Respiratory syncytial virus (RSV) infection is recognized by the innate immune system through Toll like receptors (TLRs) and retinoic acid inducible gene I. These pathways lead to the activation of type I interferons and resistance to infection. In contrast to TLRs, very few studies have examined the role of NOD-like receptors in viral recognition and induction of adaptive immune responses to RSV. Caspase-1 plays an essential role in the immune response via the maturation of the proinflammatory cytokines IL-$1{\beta}$ and IL-18. However, the role of caspase-1 in RSV infection in vivo is unknown. We demonstrate that RSV infection induces IL-$1{\beta}$ secretion and that caspase-1 deficiency in bone marrow derived dendritic cells leads to defective IL-$1{\beta}$ production, while normal RSV viral clearance and T cell responses are observed in caspase-1 deficient mice following respiratory infection with RSV. The frequencies of IFN-${\gamma}$ producing or RSV specific T cells in lungs from caspase-1 deficient mice are not impaired. In addition, we demonstrate that caspase-1 deficient neonatal or young mice also exhibit normal immune responses. Furthermore, we find that IL-1R deficient mice infected with RSV exhibit normal Th1 and cytotoxic T lymphocytes (CTL) immune responses. Collectively, these results demonstrate that in contrast to TLR pathways, caspase-1 might not play a central role in the induction of Th1 and CTL immune responses to RSV.
Thi Hao Vu;Jubi Heo;Yeojin Hong;Suyeon Kang;Ha Thi Thanh Tran;Hoang Vu Dang;Anh Duc Truong;Yeong Ho Hong
Journal of Veterinary Science
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v.24
no.1
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pp.13.1-13.11
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2023
Background: Highly pathogenic avian influenza viruses (HPAIVs) is an extremely contagious and high mortality rates in chickens resulting in substantial economic impact on the poultry sector. Therefore, it is necessary to elucidate the pathogenic mechanism of HPAIV for infection control. Objective: Gene set enrichment analysis (GSEA) can effectively avoid the limitations of subjective screening for differential gene expression. Therefore, we performed GSEA to compare HPAI-infected resistant and susceptible Ri chicken lines. Methods: The Ri chickens Mx(A)/BF2(B21) were chosen as resistant, and the chickens Mx(G)/BF2(B13) were selected as susceptible by genotyping the Mx and BF2 genes. The tracheal tissues of HPAIV H5N1 infected chickens were collected for RNA sequencing followed by GSEA analysis to define gene subsets to elucidate the sequencing results. Results: We identified four differentially expressed pathways, which were immune-related pathways with a total of 78 genes. The expression levels of cytokines (IL-1β, IL-6, IL-12), chemokines (CCL4 and CCL5), type interferons and their receptors (IFN-β, IFNAR1, IFNAR2, and IFNGR1), Jak-STAT signaling pathway genes (STAT1, STAT2, and JAK1), MHC class I and II and their co-stimulatory molecules (CD80, CD86, CD40, DMB2, BLB2, and B2M), and interferon stimulated genes (EIF2AK2 and EIF2AK1) in resistant chickens were higher than those in susceptible chickens. Conclusions: Resistant Ri chickens exhibit a stronger antiviral response to HPAIV H5N1 compared with susceptible chickens. Our findings provide insights into the immune responses of genetically disparate chickens against HPAIV.
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