This is the first study reporting the evaluation of transgenic lines of tomato harboring rice chitinase (RCG3) gene for resistance to two important fungal pathogens Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol) causing fusarium wilt and Alternaria solani causing early blight (EB). In this study, three transgenic lines TL1, TL2 and TL3 of tomato Solanum lycopersicum Mill. cv. Riogrande genetically engineered with rice chitinase (RCG 3) gene and their R1 progeny was tested for resistance to Fol by root dip method and A. solani by detached leaf assay. All the R0 transgenic lines were highly resistant to these fungal pathogens compared to nontransgenic control plants. The pattern of segregation of three independent transformant for Fol and A. solani was also studied. Mendelian segregation was observed in transgenic lines 2 and 3 while it was not observed in transgenic line 1. It was concluded that introduction of chitinase gene in susceptible cultivar of tomato not only enhanced the resistance but was stably inherited in transgenic lines 2 and 3.
The transgenic tomato plants showing the insecticidal activity against the coleopteran insect larvae have been bred to the 4th generation $(R_4)$. The Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis (B.t.t.)-toxin gene and the expression were detected in the $R_4$ transgenic plants. The expression of the toxin gene conferred a coleopteran insect larvae tolerance to the transgenic tomato plants. The ploidy levels of the $R_4$ transgenic plants were diploid. The results indicated that the toxin gene was inherrited to the next generation and expressed. Such a molecular breeding can provide a method for a permanent control of insects a agronomic relevance.
Chung, Mi-Young;Naing, Aung Htay;Vrebalov, Julia;Shanmugam, Ashokraj;Lee, Do-Jin;Park, In Hwan;Kim, Chang Kil;Giovannon, James
Journal of Plant Biotechnology
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v.47
no.2
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pp.172-178
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2020
Fruit-specific promoters play an important role in the improvement of traits, such as fruit quality through genetic engineering. In tomato, the development of fruit-specific promoters was previously reported, but less attention has been paid to the promoters involved in the fruit development stage. In this study, we characterized the gene expression patterns of tomato alcohol dehydrogenase 2 (SlAdh2) in various tissues of wild-type tomato (cv. Ailsa Craig). Our findings revealed that SlAdh2 expression levels were higher in the developing fruit than in the leaves, stems, and flowers. The ProSlAdh2 region, which is expressed at different stages of fruit development, was isolated from tomato genomic DNA. Following this, it was fused with a β-glucuronidase reporter gene (GUS) and introduced into wild-type tomato using Agrobacterium-mediated transformation to evaluate promoter activity in the various tissues of transgenic tomato. The ProSlAdh2:GUS promoter exhibited strong activity in the fruit and weak activity in the stems, but displayed undetectable activity in the leaves and flowers. Interestingly, the promoter was active from the appearance of the green fruit (1 cm in size) to the well-ripened stage in transgenic tomatoes, indicating its suitability for transgene expression during fruit development and ripening. Thus, our findings suggest that ProSlAdh2 may serve as a potential fruit-specific promoter for genetic-based improvement of tomato fruit quality.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.79.1-79
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2003
Two pathogen-induced hot pepper transcription factors (CaNACl and CapIfl) were introduced into‘MicroTom’tomato by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. We used to nptII containing kanamycin resistance gene as a selection marker. Both transformed and non-transformed plants were transferred to pot after rooting test in vitro. To approximate the levels of caNACl transcript in leaves of wild-type and transgenic plants, RNA blots were hybridized with double-stranded full-length CaNACl probe at moderate stringency, Although the relative signal strength for hybridization fluctuated among the samples on different blots, transgenic plant lines N-1, N-2 and N-3 consistently displayed increased levels of CaNACl transcript relative to other transgenic lines and wild-type plants. Of all the transgenic lines examined, line N-7 had the least amount of CaNACl transcript. Role of these transcription factors in pathogen defense will be examined by overexpression in tomato.
To ascertain the effect of over-expressed maize calreticulin in tomato plant on tobamovirus movement in addition to validating potentiality of the gene (ZmCRT) as a means for the virus-resistance resource, four ZmCRT-expressing homozygous lines were generated from the T0 plants as using an Agrobacterium-mediated transformation, nucleic acid analyses, and a conventional breeding method. Of them, a line was subjected to the bioassay for tolerances to tobacco mosaic virus-U1 (TMV-U1) and tomato mosaic virus (ToMV) followed by RT-PCR and a chlorophyll fluorescence quenching analyses. Both transgenic plants transcribing ZmCRT and wild-type plants showed no symptom by 20 days after viruses inoculation, however the photosystem II quantum yield parameter measured from the upper leaves of ToMV-inoculated plants revealed that ZmCRT transgenic plants have higher photosynthetic ability than wild-type ones at that time, which indirectly implies that over-expressed ZmCRT product acts as a barrier to the cell-to-cell and/or systemic movement of ToMV. Moreover, ZmCRT transgenic plants showed remarkably longer shoot length than wild-type ones in 40 days after TMV-U1 or ToMV inoculation each, which might be resulted from higher photosynthetic ability during the phase not yet showing any external symptoms. Collectively, over-expressed ZmCRT protein in tomato plants is able to interrupt the systemic movement of infected TMV-U1 and ToMV even though not perfect.
Tomato yellow leaf curl China virus is a species of the widespread geminiviruses. The infection of Nicotiana benthamiana by Tomato yellow leaf curl China virus (TYLCCNV) causes a reduction in photosynthetic activity, which is part of the viral symptoms. ${\beta}C1$ is a viral factor encoded by the betasatellite DNA ($DNA{\beta}$) accompanying TYLCCNV. It is a major viral pathogenicity factor of TYLCCNV. To elucidate the effect of ${\beta}C1$ on plants' photosynthesis, we measured the relative chlorophyll (Chl) content and Chl fluorescence in TY-LCCNV-infected and ${\beta}C1$ transgenic N. benthamiana plants. The results showed that Chl content is reduced in TYLCCNV A-infected, TYLCCNV A plus $DNA{\beta}$ (TYLCCNV A + ${\beta}$)-infected and ${\beta}C1$ transgenic plants. Further, changes in Chl fluorescence parameters, such as electron transport rate, $F_v/F_m$, NPQ, and qP, revealed that photosynthetic efficiency is compromised in the aforementioned N. benthamiana plants. The presense of ${\beta}C1$ aggravated the decrease of Chl content and photosynthetic efficiency during viral infection. Additionally, the real-time quantitative PCR analysis of oxygen evolving complex genes in photosystem II, such as PsbO, PsbP, PsbQ, and PsbR, showed a significant reduction of the relative expression of these genes at the late stage of TYLCCNV A + ${\beta}$ infection and at the vegetative stage of ${\beta}C1$ transgenic N. benthamiana plants. In summary, this study revealed the pathogenicity of TYLCCNV in photosynthesis and disclosed the effect of ${\beta}C1$ in exacerbating the damage in photosynthesis efficiency by TYLCCNV infection.
AL1-gene, necessary for the replication of the genome of a gemini virus TGMV, was inserted in the opposite direction to the promoter CaMV35S resulting in the construction of a plant transformation binary vector pAR35-2. The vector pAR35-2 contains the chimeric gene cassette involving the duplicated promoter CaMV35S, opposite direction of AL1-gene fusioned with hygromycin resistant gene, and the gene cassette of the neomycin phosphotransferase II gene. The plasmid was transferred to tobacco and tomato plants by leaf disk infection via Agrobacterium. The transgenic plants were selected and grown on the MS-agar medium containing kanamycin and hygromycin. The shoots induced from the calli were regenerated to the whole transgenic plants. The antisense AL1-gene was detected in the genomic DNA isolated from the leaves by using the PCR mediated Southern blot analysis. The expression of the antisense AL1-gene was also observed using the RT-PCR mediated Southern blot analysis. The observation of chloroplasts in guard cell pair indicated that the transgenic tomato plants were diploid.
Park, Eun-Jeong;Lee, Haeng-Soon;Kwon, Suk-Yoon;Choi, Kwan-Sam;Kwak, Sang-Soo
Journal of Plant Biotechnology
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v.29
no.1
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pp.7-13
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2002
Superoxide dismutase (SOD) plays an important role in cellular defense against oxidative stress in plants. We have developed transgenic tomato plants overexpressing a cassava SOD in fruits. Three transgenic tomato plants (one from cv. Pink forcer and two from cv. Koko) using a new vector system, ASOp :: . mSOD1/pBI101, harboring ascorbate oxidase promoter (ASOp) expressing dominantly in cucumber fruits, CuZnSOD cDNA (mSOD1) isolated from cultured cells of cassava, and nptll gene as a selectable marker were successfully developed. SOD specific activity (units/mg protein) in transgenic fruits of both cultivars was increased with maturation of the fruits. SOD specific activity of well-mature fruits in transgenic Pink forcer and Koko showed approximately 1.6 and 2.2 times higher than control fruits, respectively. The strength of SOD isoenzyme bands well reflected the SOD activity during the fruit maturation. These results suggested that SOD gene was properly introduced into tomato fruits in a fruit-dominant expression manner by ASO promoter.
Cotyledonary leaves of tomato cv. Megha were transformed with the hepatitis B virus 's' gene, which encodes surface antigen. Six plant expression cassettes (pHBS, pHER, pEFEHBS, pEFEHER, pSHER and pEFESHER) were used to assay the possible expression levels by agroinfiltration. The maximum transient expression level of 489.5 ng/g D.W. was noted in pEFEHER-infiltrated cotyledonary leaves. Transgenic tomato plants with pEFEHBS and pEFEHER expression cassettes were regenerated and characterized by molecular analysis. The expression of the antigen in the fruits was confirmed by RT-PCR and ELISA analysis. This is the first report on the expression of hepatitis B surface antigen in tomato.
$\textrm{T}_{5}$ progeny of one transgenic tomato line (To9) carrying antisense polygalacturonase (PG) cDNA was generated by selfing. Five $\textrm{T}_{5}$ plants were used to analyse in detail. The PG antisense gene was stably inherited through fifth generations. In all five $\textrm{T}_{5}$ plants, expression of the antisense transcripts were detected. In consequence, it led to a reduction of the PG enzyme activity in ripe fruit to between 37% and 65% that of normal. In two plants the expression of endogenous PG gene was inhibited in ripe fruit.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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