We screened promoters inducible by superoxide radical from Escherichia coli. For this. we constructed random promoter library from E. coli MG 1655 using a promoter-probing plasmid. pJAC4. Six hundred and sixty clones in this library were classified based on their promoter strength by ampicillin gradient plate assay. Three hundred and eighty three clones with relatively weak to medium promoter strength were selected and then screened for their inducibility by superoxide radical on ampicillin gradient plate containing paraquat. Three clones (clones 5. 15 and 34) were detected to be induced by paraquat treatment and the level of induction were between 1.4 and 4 folds. Comparison of nucleotide sequences of the cloned promoter fragment with registered sequences in GENBANK and EMBL databases suggests that the cloned DNA fragments have not been yet characterized in E. coli. Transcription start sites in these clones were determined by rrimer extension and S I nuclease protection analysis. S 1 analysis of clones 5 and IS indicated that the mRNA levels were increased by paraquat treatment. Especially. clone 5 \vas found to have two transcription start sites. the upstream start site of which was selectively used by paraquat treatment. Searching for promoter clements. we found that only the downstream promoter of clone 5 has -10 and - 35 promoter elements recognized by RNA polymerase ($E\sigma^{70}$) and the others have no conserved promoter elements. This suggests that these superoxideinducible promoters may require transcription initiation protein(s) other than $E\sigma^{70}$.
Kim, Ok-Soo;Kim, Yong-Man;Kim, Nam-Young;Lee, Eo-Jin;Jang, Min-Kyung;Lee, Dong-Geun;Lee, Sang-Hyeon
Journal of Life Science
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v.17
no.2
s.82
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pp.167-173
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2007
To study the transcriptional mechanisms by which expression of the murine glial cell-derived neurotrophic factor inducible transcription factor (mGIF) gene is regulated, a murine genomic clone was iso-lated using a mGIF cDNA as probe. A 13-kb genomic fragment, which comprises 4-kb upstream of the transcription initiation site was sequenced. The promoter region lacks a TATA box and CAAT box, is rich in G+C content, and has multiple putative binding sites for the transcription factor Spl. The mGIF gene also has consensus sequences for AP2 binding sites. The transcriptional activity of five deletion mutants of a 2.1-kb fragment was analyzed by modulating transcription of the heterologous luciferase gene in the promoterless plasmid pGL2-Basic. All mutants showed significant transcriptional activity in the murine neuroblastoma cell line NB41A3. Transient expression assays suggested the presence of a positive regulator between -213 and -129 while a negative regulator was found in the region between -806 and -214. Relatively strong transcriptional activity was observed in neuronal NB41A3, glial C6 cells and hepatic HepG2, but very weak activity in skeletal muscle C2C12 cells. These findings confirm the tissue-specific activity of the mGIF promoter and suggest that this gene shares structural and functional similarities with the dopamine receptor genes that it regulates.
A gene coding for xylanase from alkali-tolerant Bacillus alcalophilus AX2000 was cloned into Escherichia coli $DH5\alpha$ using pUC19. Among 2,000 transformants, one transformant showed clear zone on the detection agar plate containing oat-spells xylan. Its recombinant plasmid, named pXTY99, was found to carry 7.0 kb insert DNA fragment. When the nucleotide sequence of the cloned xylanase gene (xynT) was determined, xynT gene was found to consist of 1,020 base-pair open reading frame coding for a poly-peptide of 340 amino acids with a deduced molecular weight of 40 kDa. The coding sequence was preceded by a putative ribosome binding site, and the transcription initiation signals. The deduced amino acid sequence of xylanase is similar to those of the xylanases from Bacillus sp. Nl37 and B. stearothermophilus 21 with $61\%$ and $59\%$ identical residues, respectively.
The present study was aimed at investigating the metabolic regulation of insulin-like growth factor-I(IGF-I) expression in fasting animals. The expression of IGF-I gene was determined by a solution hybridization/RNase protection assay using total RNA from control, 4d-fasting, and 2d-fasting-refed rats. The levels of IGF-I transcripts were reduced in 4d-fasting than in control by decreasing its transcriptional rate, which was measured through nuclear nun-on assay. DNase I footprinting, which was performed using nuclear extracts from fasting rat, demonstrated protein binding to a sequence that extended from +179 to +210 (termed region B). These data suggest that the expression of IGF-I is transcriptionally regulated through DNA-liver enriched protein binding in a sequence which is located downstream from major transcription initiation site of IGF-I gene.
Flowering time is determined by florigens. These genes include, Heading date 3a (Hd3a) and Rice FT 1 (RFT1) in rice, which are specifically expressed in the vascular tissues of leaves at the floral transition stage. To study the cis-regulatory elements present in the promoter region of Hd3a, we generated transgenic plants carrying the 1.75-kb promoter fragment of Hd3a that was fused to the ${\beta}$-glucuronidase (GUS) reporter gene. Plants expressing this construct conferred a vascular cell-specific expression pattern for the reporter gene. However, GUS was expressed in leaves at all developmental stages, including the early seedling stage when Hd3a was not detected. Furthermore, the reporter was expressed in roots at all stages. This suggests that the 1.75-kb region lackings cis-elements that regulate leaf-specific expression at the appropriate developmental stages. Deletion analyses of the promoter region indicated that regulatory elements determining vascular cell-specific expression are present in the 200-bp region between -245 bp and -45 bp from the transcription initiation site. By transforming the Hd3a-GUS construct to rice cultivar 'Taichung 65' which is defective in Ehd1, we observed that Ehd1 is the major regulatory element that controls Hd3a promoter activity.
Kim, Su-Jung;Kim, Hong-Gyum;Kim, Byung-Chul;Kim, Kyunghoon;Park, Eun-Hee;Lim, Chang-Jin
Journal of Microbiology
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v.42
no.3
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pp.233-238
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2004
Transcriptional regulation of the Schizosaccharomyces pombe y-glutamylcysteine synthetase (GCS) gene was examined using the two GCS-lacZ fusion plasmids pUGCS101 and pUGCS102, which harbor 607 bp and 447 bp upstream regions, respectively. The negatively-acting sequence was located in the -607 - -447 bp upstream region of the GCS gene. The upstream sequence responsible for induction by menadione(MD) and L-buthionine-(S, R)-sulfoximine (BSO) resides in the -607 - -447 bp region, whereas the sequence which codes for nitric oxide induction is located within the -447 bp region, measured from the translational initiation point. Carbon source-dependent regulation of the GCS gene appeared to be dependent on the nucleotide sequence within -447 bp region. The transcription factor Papl is involved in the induction of the GCS gene by MD and BSO, but not by nitric oxide. Induction of the GCS gene occurring due to low glucose concentration does not depend on the presence of Pap1. These data imply that induction by MD and BSO may be mediated by the Pap1 binding site, probably located in the -607 - -447 region, and also that the nitric oxide-mediated regulation of the S. pombe GCS gene may share a similar mechanism with its carbon-dependent induction.
The P38 promoter of minute virus of mice (MVM) is a very weak promoter which is strongly transactivated by viral nonstructural proteins. To analyze the upstream sequence of the P38 promoter which is responsible for the transactivation by nonstructural proteins in MVM, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) reporter plasm ids containing a series of 5' deletion and internal deletion mutants of the P38 promoter were constructed. The wild type and mutant CAT constructs of P38 promoter were cotransfected into murine A92L fibroblast cells with a plasmid expressing viral nonstructural proteins by DEAE-dextran method. Each promoter activity was analyzed by CAT assay. As previously reported (Ahn et al., 1992), the proximal DNA cis-elements required for transactivation of the MVM P38 promoter are GC box and TATA box. However, the analysis of 5' deletion mutants showed that H-l tar like sequence (MVM TAR) which is located between -143 and -122 relative to the transcription initiation site is also required for transactivation of the P38 promoter by nonstructural proteins. Interestingly, even if the MVM TAR was removed by internal deletion, the level of the transactivation is still 70% of wild type level of transactivation. We also found that, in addition to the MVM TAR motif, there are two other motifs which are similar to the MVM TAR sequence. When these TAR like motifs were further deleted, the levels of transactivation were decreased further. Taken together, the MVM TAR sequence and TAR like motifs located upstream of P38 promoter are playing an important role for the transactivation of P38 promoter by nonstructural proteins in minute virus of mice.
Cho, Suhyung;Cho, Yoobok;Lee, Sooin;Kim, Jayoung;Yum, Hyeji;Kim, Sun Chang;Cho, Byung-Kwan
Genomics & Informatics
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v.11
no.2
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pp.76-82
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2013
Over the past decade or so, dramatic developments in our ability to experimentally determine the content and function of genomes have taken place. In particular, next-generation sequencing technologies are now inspiring a new understanding of bacterial transcriptomes on a global scale. In bacterial cells, whole-transcriptome studies have not received attention, owing to the general view that bacterial genomes are simple. However, several recent RNA sequencing results are revealing unexpected levels of complexity in bacterial transcriptomes, indicating that the transcribed regions of genomes are much larger and complex than previously anticipated. In particular, these data show a wide array of small RNAs, antisense RNAs, and alternative transcripts. Here, we review how current transcriptomics are now revolutionizing our understanding of the complexity and regulation of bacterial transcriptomes.
Grb2 is an adapter protein involved in the signal transduction and cell communication. The Grb2 is responsible for initiation of kinase signaling by Ras activation which leads to the modification in transcription. Ligand based pharmacophore approach was applied to built the suitable pharmacophore model for Grb2. The best pharmacophore model was selected based on the statistical values and then validated by Fischer's randomization method and test set. Hypo1 was selected as a best pharmacophore model based on its statistical values like high cost difference (182.22), lowest RMSD (1.273), and total cost (80.68). It contains four chemical features, one hydrogen bond acceptor (HBA), two hydrophobic (HY), and one ring aromatic (RA). Fischer's randomization results also shows that Hypo1 have a 95% significant level. The correlation coefficient of test set was 0.97 which was close to the training set value (0.94). Thus Hypo1 was used for virtual screening to find the potent inhibitors from various chemical databases. The screened compounds were filtered by Lipinski's rule of five, ADMET and subjected to molecular docking studies. Totally, 11 compounds were selected as a best potent leads from docking studies based on the consensus scoring function and critical interactions with the amino acids in Grb2 active site.
Proceedings of the Zoological Society Korea Conference
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1998.10b
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pp.113-113
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1998
In Saccharomyces cerevisiae UV irradiation and a variety of chemical DNA -damaging agents induce the transcription of specific genes, including several involved in DNA repair. One of the best characterized of DNA -damage inducible genes is PHRI, which encodes the apoenzyme for DNA photolyase. Basal-level and damage-induced expression of PHRI require an upstream activation sequence, UASPHRI. Here we report the identification of the UlvIE6 gene of S. cerevisiae as a regulator of UASPHRl activity. Surprisingly, the effect of deletion of UME6 is growth phase dependent. In wild-type cells PHRI is induced in late exponential phase, concomitant with the initiation of glycogen accumulation that precedes the diauxic shift. Deletion of UNIE6 abolishes this induction, decreases the steady-state concentration of photolyase molecules and PHRI mRNA, and increases the UV sensitivity of a rad2 mutant. The results suggest that UM E6 contributes to the regulated expression of a subset of damage-responsive genes in yeast. Furthermore, the upstream repression sequence, URSPHRI, is required for repression and damage-induced expression of PHRl. Here we show identification of YER169W and YDR096W as putative regulators acting through $URS_{PHRI}$. These open reading frames were designated as RPHI (YERl69W) and RPH2 (YDR096W) indicating regulator of PHRI. Simultaneous disruption of both genes showed a synergistic effect, producing a four-fold increase in basal level expression and a similar decrease m the induction ratio following treatment of methyl methanesulfonate(MMS). Mutation of the sequence ($AG_4$) bound by Rphlp rendered the promoter of PHRI insensitive to changes in RPHI or RPH2 status. The data suggest that RPHI and RPH2 act as damage-responsive negative regulators of PHRI. Surprisingly, the sequence bound by Rphlp in vitro is found to be $AG_4$ which is identical to the consensus binding site for the regulators Msn2p and Msn4p involved in stress-induced expression. Deletion of MSN2 and MSN4 has little effect on the induction$.$ ratio following DNA damage. However, all deletions led to a significant decrease in basal-level and induced expression of PHRI. These results imply that MSN2 and MSN4 are positive regulators of P HRI but are not required for DNA damage repression. [Supported by grant from NIH]om NIH]
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[게시일 2004년 10월 1일]
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