To make the genomic DNA probe of Theileria sergenti, the merozoites were purified from bovine erythrocytes. The infected erythrocytes were lysed by Aeromonas hydrophila(Ah-1) hemolysin, and the parasites were isolated by ultracentrifugation on a Percoll discontinuous density gradient. For construction of a T sergenti genomic DNA library, T sergenti DNA was digested with Pstl and the fragments were ligated into the PstI site of pUC19 before transformation of Escherichia coli JM83. Out of thousands of transformants obtained by transformation of E coli JM83 with the genomic library, three plasmids were chosen. The sizes of the inserted DNAs were 2.9kb(2.4kb and 0.5kb) in pKTS1, 4.3kb in pKTS2 and 1.5kb in pKTS3, respectively. The DNA fragments used as probe KTS1(2.4kb), KTS2(4.3kb) and KTS3(1.5kb) were labeled digoxigenin-11-dUTP for the Southern hybridization. In Southern hybridization, all of the probes(KTS1, KTS2 and KTS3) reacted specifically to T sergenti DNA, but not to bovine leucocyte DNA. In order to find out the sensitivities of the digoxigenin-11-dUTP-labeled KTS1 and KTS3 as the probes, purified merozoite DNA and bovine DNA (control) were checked by dot blot hybridization with the probes. Both of the probes, KTS1 and KTS3, detected as minimum amount of 975pg of the T sergenti DNA, but not bovine DNA even to 500ng.
We have evaluated a new mutagenesis strategy called random insertional mutagenesis with subtracted cDNA fragments. The cDNAs from long day Arabidopsis plants were subtracted by cDNAs from short day plants using PCR based cDNA subtraction. The subtracted cDNAs were inserted between 35S promoter and 3'-NOS terminator regardless of orientation. When the cDNA library was used for the random insertion into Arabidopsis genome by Agrobacterium-mediated transformation, approximately 15% of transformants showed abnormal development in leaf, floral organ, shoot apex. When 20 mutants were analyzed, 12 mutants showed single cDNA fragment insertion and 8 mutants showed more than 2 transgene insertions. Only two mutants among 12 mutants that have single cDNA insert showed consistent phenotype at T2 generation, suggesting the genetic instability of the mutants.
With the continual development of genetically modified (GM) crops, it has become necessary to develop detailed and effective molecular characterization methods to select candidate events from a large pool of transformation events. Relative to traditional molecular analysis methods such as the polymerase chain reaction (PCR) and Southern blot hybridization, next generation sequencing (NGS) technology for whole-genome sequencing of complex crop genomes had proven comparatively useful for in-depth molecular characterization. In this study, four transformation events, including one in Bacillus thuringiensis (Bt)-resistant rice, one in resveratrol-producing rice, and two in beta-carotene-enhanced soybeans, were selected for molecular characterization. To merge NGS analysis and Southern blot-hybridization results, we confirmed the transgene insertion sites, insertion construction, and insertion numbers of these four transformation events. In addition, the read-coverage depth assessed by NGS analysis for inserted genes might provide consistent results in terms of inserted T-DNA numbers in case of complex insertion structures and highly duplicated donor genomes; however, PCR-based methods can produce incorrect conclusions. Our combined method provides an effective and complete analytical approach for whole-genome visual inspection of transformation events that require biosafety assessment.
Delftia acidovorans 51-A isolated from river water degrades aniline. In order to clone genes involved in aniline degradation, transposon Tn5-B20 was inserted into the strain 51-A to generate a mutant strain 10-4-2 that cannot utilize aniline as a carbon source. The mutant strain was not an auxotroph but could not degrade aniline. Southern hybridization analysis indicated that the transposon was inserted into the mutant bacterial DNA as a single copy. Flanking DNA fragment of Tn5-B2O insertion was cloned and sequenced. DNA sequence analysis revealed three ORFs encoding TdnQ, TdnT, and TdnA 1 that arc responsible for catechol formation from aniline through oxidative deamination. The analysis also confirmed that Tn5-B2O was inserted at the immediate downstream of tdnA1. The result suggests that the transposon insertion behind tdirA1 disrupted the pathway of the catechol formation from aniline, resulting in the mutant phenotype, which cannot degrade aniline. A large plasmid over 100-kb in size was detected from D. acidovorans 51-A and Southern hybridization analysis with Tn5-B2O probe showed that the transposon was inserted on the plasmid named pTDN51. Our results indicated that the tdn genes on pTDN51 of D. acidovorans 51-A are involved in aniline degradation.
To identify unintended vertical gene-transfer rates from the developed transgenic plants, rapid and unequivocal techniques are needed to identify event-specific markers based on flanking sequences around the transgene and to distinguish zygosity such as homo- and hetero-zygosity. To facilitate evaluation of zygosity, a polymerase chain reaction technique was used to analyze a transgenic pepper line B20 (homozygote), P915 wild type (null zygote), and their F1 hybrids, which were used as transgene contaminated plants. First, we sequenced the 3'-flanking region of the T-DNA (1,277 bp) in the transgenic pepper event B20. Based on sequence information for the 3'- and 5'-flanking region of T-DNA provided in a previous study, a primer pair was designed to amplify full length T-DNA in B20. We successfully amplified the full length T-DNA containing 986 bp from the flanking regions of B20. In addition, a 1,040 bp PCR product, which was where the T-DNA was inserted, was amplified from P915. Finally, both full length T-DNA and the 1,040 bp fragment were simultaneously amplified in the F1 hybrids; P915 ${\times}$ B20, Pungchon ${\times}$ B20, Gumtap ${\times}$ B20. In the present study, we were able to identify zygosity among homozygous transgenic event B20, its wild type P915, and hemizygous F1 hybrids. Therefore, this novel zygosity identification technique, which is based on PCR, can be effectively used to examine gene flow for transgenic pepper event B20.
It is still difficult and time consuming to obtain cDNA sequences that contain the entire nucleotide sequence of the corresponding mRNA. A rapid and high efficient cloning method to obtain full-length cDNA segments is thus developed. The cloning procedure described here consists of the construction of oligo(dT)-tailed vector primer using pWR34 plasmid, polyadenylation of mRNA-cDNA heteroduplex using terminal deoxytransferase, and replacement of MRNA strand with DNA by RNase H and DNA polymerase I. The restriction endonuclease analysis shows that the size of inserted-cDNA is in the range of 1.5~4.0 kb long suggesting that most of cloned cDNA are full-length or nearly full-length cDNA. The plasmid-DNA recombinants obtained were 4$\times$$10^5$~$10^{6}$ per $\mu\textrm{g}$ of rat liver poly (A$^+$)mRNA, which is 4 to 10 fold higher cloning efficiency in comparison to the presently used methods for full-length cDNA cloning. The results indicate that the described cloning system is much simpler, less time consuming, and very efficient cloning method to construct a cDNA library.
Porcine transforming growth factor-$\beta$1 (TGF-$\beta$1) was expressed in Escherichia coli using cDNA of TGF-$\beta$1 and glutathione S-transferase (GST) fusion vector pGEX-1$\lambda$T. An ApoI-Tth111I fragment of cDNA which correspond to the amino acid residues from 123 to 390 of the precursor TGF-$\beta$1 was inserted into EcoRI-Tth111I digested pGEM#-l$\lambda$T and the recombined plasmid was named pGET-12. Gene products from the cloned regions of the recombinant plasmids pGET-12 was not detected in soluble fraction of cell free extract but detected in insoluble fraction. The solubilization of insoluble gene product was achieved by the treatment of N-laurylsarcosine. Molecular weight of partially purified proteins determined by electrophoresis was same as expected from cloned fragment. The ELISA test results of the purified proteins showed that immunologically detectable epitope was preserved in recombinant protein.
Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc) causes soft rot disease in various plants. Although many studies about Pcc have been going on, little is known yet about the defense genes from plants. To identify defense associated genes in response to Pcc, we screened about 20 thousand Arabidopsis T-DNA knock out lines by inoculation with Pcc. We obtained a line (Atspt1) showing more susceptible symptom compared to WT (Col-0) on 1 day after the inoculation of Pcc on leaves of Arabidopsis with toothpicks. In this study, we optimized the system to select resistant and susceptible lines to Pcc from T-DNA inserted pool of Arabidopsis and expect the system and Atspt1 might be used for molecular breeding to produce resistant vegetables against Pcc.
Four transgenic rice lines harboring insect-resistant gene cry3A showed ideal field performances characterized by high considerable resistance to rice water weevil (Lissorhoptrus oryzophilus Kuschel). In this study, we estimated the insertion number of foreign genes, and analyzed the flanking sequences of T-DNAs in rice genome. As a result, T-DNA of BT12R1 line was inserted in exon region of rice chromosome 10. Two copies of T-DNAs were inserted in line BT12R2. BT12R3 line was analyzed at only left border flanking sequence. BT12R4 line was confirmed one copy of foreign gene insertion at the position 24,516,607 ~ 24,516,636 of rice chromosome 5, accompanied by a deletion of 30 bp known genomic sequences. This intergenic position was confirmed none of expressed gene and any deletion/addition of T-DNA sequence. In conclusion, these molecular data of rice water weevil resistant Bt rice would be used to conduct the biosafety and environment risk assessment for GM crop commercialization.
In order to study the molecular mechanism of $\gamma$-aminobutyric acid (GABA) production in plants, we cloned and sequenced a partial glutamate decarboxylase (GAD) cDNA from the Arabidopsis thaliana cDNA library, using primers targeted at highly conserved sequences of the petunia GAD gene. The cDNA fragment was inserted into TA cloning vector with T7 promoter and the recombinant plasmid obtained was used to transform E. coli. The plasmid DNA purified from the transformed E. coli was digested with EcoRI and the presence of the insert was confirmed. Nucleotide sequence analysis showed that the fragment is a partial Arabidopsis thaliana GAD gene and that the sequence showed 98% and 78% identity to the region of the putative Arabidopsis thaliana GAD sequences deposited in GenBank, Accession nos: U46665 and U10034, respectively. The amino acid sequence deduced from the partial Arabidopsis thaliana GAD gene showed 99% and 91% identities to the GAD sequences deduced from the genes of the U46665 and U10034, respectively. The partial cDNA sequence determined may facilitate the study of the molecular mechanism of GABA metabolism in plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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