This report describes a case of coinfection of Sphingomonas paucimobilis meningitis and Listeria monocytogenes bacteremia in a 66-year-old immunocompetent female patient. The patient had undergone traditional procedures, including acupuncture, which possibly caused the coinfection. During treatment with susceptible antibiotics for bacterial meningitis, she developed hydrocephalus on the third day. Consequently, the patient recovered with a mild neurological deficit of grade 4 motor assessment in both upper and lower extremities at discharge. S. paucimobilis and L. monocytogenes are rare pathogens in developed countries, occurring only during environmental outbreaks. S. paucimobilis meningitis is rarely reported. Hence, the various presentations of S. paucimobilis meningitis and the antibiotic regimen for its treatment are hereby reported, in addition to a review of other similar reported cases. This case is a possible traditional procedure-related infection. Appropriate oversight and training should be emphasized regarding preventive measures of this kind of infection. A team approach with neurologists and neurosurgeons is imperative in treating patients with hydrocephalus-complicated meningitis.
Goker, Tuncer;Asik, Rahile Zulal;Yilmaz, Muhammet Bahadir;Celik, Ilhami;Tekiner, Ayhan
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.60
no.4
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pp.481-483
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2017
Sphingomonas paucimobilis (S. paucimobilis) is a gram negative bacillus. It has existed in soil, drinking water and plants. It has been isolated from distilled water tanks, respirators, and hemodialysis devices at the hospital setting. Patients with chronic disorders or immune suppression may be susceptible to infections with it. This microorganism has also been reported to infect healthy persons. Both nosocomial and community-acquired infections have been reported. So far, a variety of infections have been reported, including sepsis, septic pulmonary embolism, septic arthritis, peritonitis, and endophthalmitis. Only 2 cases of meningitis have been reported so far in the literature. So far, no previous reports of culture proliferation have been reported in patients with external ventricular drains, as was the case in our patient. Therefore, our case is the first to have S. paucimobilis proliferation in cerebrospinal fluid culture during intensive care unit stay for an external ventricular drain.
Lee Soo-Youn;Choi Jung-Do;Shin Malshick;Kim Young-Chang
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.1
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pp.8-12
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2005
Some genes, which are involved in the biosynthesis of polysaccharides, could be found by the genome project of Sphingomonas chungbukensis DJ77. In this study, we identified the complete nucleotide sequence of a gene, encoding the glucosyl-isoprenyl phosphate-transferase, which catalyzes the first step in the biochemical pathway for the synthesis of the sphingan type polysaccharide. This gene, named spsB, is initiated by the ATG codon and terminated by the TGA, and its open reading frame consists of 1392 bp, encoding 463 amino acids. The predicted amino acid sequence of this enzyme indicates $50\%$ similarity to SpsB of Sphingomonas spp S88, also produces sphingan, and $48\%$ to GelB of Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461.
An agar-degrading marine bacterium, strain AS-1 was isolated from the seawater. The strain AS-1 was identified as Sphingomonas paucimobilis (90% probability) by VITEK. The optimum medium for agarase activity of the isolated strain was determined to be marine medium, marine broth 2216 containing 0.1% agar as carbon source. An extracellular agarase was purified 104-fold from the culture supernatant by ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography and gel filtration methods. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 80 kDa by SDS-PAGE. The optimum pH and temperature for activity were 7.0 and $40^{\circ}C$, respectively. Antioxidative activity of the strain AS- was 72% in the supernatant cultured for 12 h. The culture supernatant of the strain AS-1 showed antibacterial activity against bacteria causing putrefaction and food poisoning such as Escherichia coli, Staphylococcus aureus and Proteus vulgaris. However, the cell growth of the lactic aicd forming strain, Lactobacillus plantarium was promoted by the treatment of 10% culture supernatant of an agar-degrading strain.
Seasonal variation of marine bacterial community was analyzed in the surface sea water collected from one of the stations locating at Tongyeoung coastal area, Korea. The results obtained by the culture method through identification with the VITEK Microbe ID system after pure culture in the selective medium were compared with those obtained by the DGGE based 16S rRNA PCR method. The composition of the marine bacterial community in the sea water samples harvested in September, 2004, November, 2004, January, 2005, May, 2005 and August, 2005 determined by the culture method showed 5, 5, 4, 6, and 10 strains respectively. Pseudomonas fluorescens and Acinetobacter lwoffii were detected in all seasons. The other strains were identified to be Pseudomonas stutzeri, Sphingomonas paucimobilis, Burkholderia mallei and Chryseobacterium indologenes. In contrast, the 16S rRNA PCR-DGGE method detected 10, 11, 6, 9 and 13 populations respectively in the same sea water samples and the strains were identified to be Acinetobacter lwoffii, Burkholderia mallei, Pseudomonas fluoresence, Actinobacillus ureae, Burkholderia sp., Pseudomonas stutzeri, Roseobacter sp., Vibrio parahaemolyticue, Sphingomonas paucimobilis and Rugeria algocolus. This results indicated that the DGGE based 16S rRNA PCR method was more efficient than the culture method for the grasp of the characteristics of the marine bacterial community.
Kim, Woo-Jung;Kim, Sung-Min;Lee, Yoon-Hee;Kim, Hyun-Guell;Kim, Hyung-Kwon;Moon, Seong-Hoon;Suh, Hyun-Hyo;Jang, Ki-Hyo;Park, Yong-Il
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.4
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pp.616-623
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2008
In spite of an increasing interest in fucoidans as biologically active compounds, no convenient commercial sources with fucoidanase activity are yet available. A marine bacterial strain that showed confluent growth on a minimal medium containing fucoidan, prepared from Korean Undaria pinnatifida sporophylls, as the sole carbon source was isolated and identified based on a 16S rDNA sequence analysis as a strain of Sphingomonas paucimobilis, and named Sphingomonas paucimobilis PF-1. The strain depolymerized fucoidan into more than 7 distinct low-molecular-mass fucose-containing oligosaccharides, ranging from 305 to 3,749 Da. The enzyme activity was shown to be associated with the whole cell, suggesting the possibility of a surface display of the enzyme. However, a whole-cell enzyme preparation neither released the monomer L-fucose from the fucoidan nor hydrolyzed the chromogenic substrate p-nitrophenyl-${\alpha}$-L-fucoside, indicating that the enzyme may be an endo-acting fucoidanase rather than an ${\alpha}$-L-fucosidase. Therefore, this would appear to be the first report on fucoidanolytic activity by a Sphingomonas species and also the first report on the enzymatic degradation of the Korean Undaria pinnatifida sporophyll fucoidan. Moreover, this enzyme activity may be very useful for structural analyses of fucose-containing polysaccharides and the production of bioactive fucooligosaccharides.
Kim Su Hwa;Hong Seung-Bok;Kang Hee Jeong;Ahn Jin-Chul;Jeong Jae Hoon;Son Seung-Yeol
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.201-207
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2005
A phenanthrene-degrading bacterium HS362, which is capable of using phenanthrene as a sole carbon and energy source, was isolated from oil contaminated soil. This strain is a gram negative, rod shaped organism that is most closely related to Sphingomonas paucimobilis based on biochemical tests, and belongs to the genus Sphingomonas based on fatty acids analysis. It exhibited more than $99.2{\%}$ nucleotide sequence similarity of 16S rDNA to that of Sphingomonas CF06. Thus, we named this strain as Sphingomonas sp. HS362. It degraded $98{\%}$ of phenanthrene after 10 days of incubation when phenanthrene was added at 500 ppm and $30{\%}$ even when phenanthrene was added at 3000 ppm. Sphingomonas sp. HS362 could also degrade low molecular weight PAHs(Polycyclic aromatic hydrocarbons) such as indole and naphthalene, but was unable to degrade high molecular weight PAHs such as pyrene and fluoranthene. The optimum temperature and pH for phenanthrene degradation were $30^{\circ}C$ and $4{\~}8$, respectively. Sphingomonas sp. HS362 could degrade phenanthrene effectively in the concentration range of NaCl of up to $1{\%}$. Its phenanhrene degrading ability was enhanced by preculture, suggesting the possibility of induction of phenanthrene degrading enzymes. Starch and surfactants such as SDS, Tween 85, and Triton X-100 were also able to enhance phenanthrene degradation by Sphingomonas sp. HS362. It carries five plasmids and one of them, plasmid p4, is considered to be involved in the degradation of phenanthrene according to the plasmid curing experiment by growing at $42^{\circ}C$.
LinA gene involving in the ${\gamma}$-benzenehexachloride degradation have been cloned from Sphingmonas paucimobilis UT26. This linA gene which catalyzes the first dechlorination step of ${\gamma}$-benzenehexachloride is known to play a key role in the ${\gamma}$-benzenehexachloride degradation pathway in UT26. In this study, the linA gene was designed to clean-up the ${\gamma}$-benzenehexachloride and its derivatives contaminated in soil, water and air using transgenic tobacco plants. The linA transgene was introduced into the chromosome of tobacco using leaf-disk transformation approach as revealed by Southern blot analysis. In addition, mRNA and protein produced by linA gene was expressed at a high level in the leaf tissue as demonstrated by both northern blot analysis and Western bolt analysis with polyclonal antibody against S. paucimobilis UT26. in vitro analysis using GC-MS showed that transgenic tobacco plant produced the linA protein which effectively degraded ${\gamma}$-benzenehexachloride into ${\gamma}$- pentachlorocyclohexene and 1,2,4-trichlobenzene compounds which are less toxic.
Kang Cheol-Hee;Lee Sang-Mhan;Lee Kyoung;Lee Dong-Hun;Kim Chi-Kyung
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.195-200
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2005
Comamonas sp. strain DJ-12 is a bacterial isolate capable of degrading of 4-chlorobiphenyl (4CB) as a carbon and energy source. The degradation pathway was characterized as being conducted by consecutive reactions of the meta-degradation of 4CB, hydrolytic dechlorination of 4-chlorobenzoate (4CBA), hydroxylation of 4-hydroxybenzoate, and meta-degradation of protocatechuate to product TCA metabolites. The 6.8 kb fragment from the chromosomal DNA of Comamonas sp. strain DJ-12 included the genes encoding for the meta-degradation of PCA; the genes of protocatechuate 4,5-dioxygenase alpha and beta subunits (pmcA and pmcB), 4-carboxy-2-hydroxymuconate-6-semialdehyde dehydrogenase (pmcC), 2-pyrone-4,6-dicarboxylate hydrolase (pmcD), 4-oxalomesaconate (OMA) hydratase(pmcE), 4-oxalocitramalate (OCM) aldolase (pmcF), and transporter gene (pmcT). They were organized in the order of pmcT-pmcE-pmcF-pmcD-pmcA-pmcB-pmcC. The amino acid sequences deduced from the nucleotide sequences of pmcABCDEFT genes from Comamonas sp. strain DJ-12 exhibited 94 to $98\%$ homologies with those of Comamonas testosteroni BR6020 and Pseudomonas ochraceae NGJ1, but only 52 to $74\%$ with homologies Sphingomonas paucimobilis SYK-6, Sphingomonas sp. LB126, and Arthrobacter keyseri 12B.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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