Apical meristems of Wasabia japonica were cultured on Murashige and Skoog's medium supplemented with cytokinins alone or together with 1.0 mg/L IAA. Shoot initials could be induced from leaf primordia on apical meristems. Calli and roots were formed on the medium containing cytokinins and 1.0 mg/L IAA in combination after 30 days of culture, but there were no callus proliferation. Shoot organogenesis began after 60 days of culture and these small shoots elongated when transferred to a medium containing 1.0 mg/L BA or kinetin. Shoots were formed directly without callus induction from apical meristems all the explants on the medium containing cytokinins variously, and most of the shoots proliferated multiple shoots which could be divided to obtain plantlets. Shoot multiplication rate in response to cytokinins was best on the medium containing 1.0 mg/L BA or 2.0 mg/L zeatin. Divided plantlets rooted well on MS medium containing 0.01 mg/L IBA after 15~30 days of subculture and the rooted plantlets developed into whole plants with multiple shoots. After rooting, the regenerated plants were washed and transferred to the pots containing sterilized soil.
Kim, Tae-Dong;Kim, Ji-Ah;Lee, Na-Nyum;Choi, Chang-Ho
Journal of Plant Biotechnology
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v.47
no.1
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pp.40-45
/
2020
An efficient protocol for multiple shoot induction and plant regeneration from axillary bud culture of Magnolia 'Vulcan' was developed in the present study. Primary shoots were obtained from axillary bud explants cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg/L 6-benzylaminopurine (BA). To induce multiple shoots effectively, primary shoot tips were cultured on MS medium supplemented with different concentrations of BA and zeatin at 0, 0.2, 0.5, and 1.0 mg/L. Of these treatments, the MS medium with 0.5 mg/L BA resulted in the highest number of shoots per explant with an average value of 5.9, and it produced the greatest shoot height at 4.8 cm after 12 weeks of culturing. In the rooting of in vitro produced shoots, the greatest percentage of explants forming roots (91.3%), number of roots per explant (9.7), and root length (2.8 cm) were obtained in half-strength MS medium supplemented with 6.0 mg/L indole-3-butyric acid (IBA). Regenerated plantlets were successfully acclimatized and hardened off inside the culture room with 87.5% survival rate. Plants were transferred to a greenhouse with a 97.2% survival rate. The highly efficient shoot multiplication and plant regeneration system reported herein can be used for large-scale clonal propagation of valuable Magnolia species or cultivars.
This study was conducted to examine the position effect of axillary buds on shoot multiplication and rooting with 1-year-old seedlings of Quercus acutissima. Shoot multiplication was greatly affected by axillary bud position: Productivity of multiple shoots were decreased in the order of top, mid and basal explants respectively. The best shoot multiplication (mean 6.1 shoots per explant) was obtained on WPM medium containing $1.0mg/{\ell}$ BAP and $0.1mg/{\ell}$ NAA using basal explant after 4-week-culture. Rooting was also greatly influenced by position. Its percentage was increased in the order of top, mid and basal explant respectively. Root initiation was better and more rapid on 1/2MS medium than GD medium. High rooting percentage (100%) was obtained on 1/2MS medium containing $0.2mg/{\ell}$ IBA after 15 days culture. Sucrose concentrations did not effect on rooting. However root development and shoot growth were greatly affected by them. Root was developed shortly on 1-2% levels and shoot growth was getting retarded, whereas both of them did not show significant difference at 3-6% levels. Rotting was decreased on 7-8% levels gradually, but shoot and leaf condition was better than any other concentrations. Survival rate of rooted explants in pot was varied according to the position of explants. Seedlings of top part were survived up to about 50% but most of mid and basal part seedlings did not survive over 4 weeks even in high humidity condition. Seedlings in pots showed normal growth over 10 months but most of them showed the condition of premature leaf shedding.
Park, Yun-Young;Cho, Moon-Soo;Lee, Young-Deuk;Chung, Jong-Bae;Park, Shin;Jeong, Byeong-Ryong;Park, Sang-Gyu
Journal of Plant Biotechnology
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v.34
no.1
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pp.1-6
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2007
Effect of BA concentrations and culture methods on in vitro plant multiplication from shoot-tip cultures of Wasabia japonica was studied. Shoot-tips with leaf primordia and apical meristem were cultured on MS basal medium for all the experiments. Liquid medium for 2 weeks followed by semi-solid medium for 4 weeks containing 1.0 mg/L BA was the best to number of shoots (22.8) and shoot length (3.5 cm). Shoots proliferated could be divided into ca. 5 to 11 of cultures for the multiplication of plantlets. Divided plantlets showed root formation (90%) well onto MS basal medium without growth regulators like IBA and NAA. After rooting, all the plantlets transferred into the pots containing composed soil (bio-media Co., peatmoss $8{\sim}10%$, coir dust $66{\sim}70%$, zeolite $13{\sim}17%$, vermiculite $3{\sim}7%$, perlite $2{\sim}4%$) and grown well into whole plants with multiple shoots.
Basal callus formation and leaf abscission is a problem in clonal micropropagation. We have described an in vitro clonal propagation protocol of Dalbergia sissoo Roxb (shisham) 'FRI-14' in which AgNO3 played important role not only in mitigating problem of leaf abscission and basal callus, but also improved shoot induction and multiplication. Best induction and shoot multiplication was obtained on MS media with 1.5 mg/l 6-BAP and 10 mg/l AgNO3 and half-strength MS media with 0.5 mg/l 6-BAP, 2 mg/l AgNO3 and 50 mg/l Adenine sulphate whereas best ex vitro rooting was obtained with 200 mg/l IBA in pulse treatment.
This communication describes for the first time an efficient and reproducible protocol for large-scale multiplication of Bambusa nutans. Nodal segments collected from field-grown clumps and cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $4.4{\mu}M$ benzylaminopurine (BA) and $2.32{\mu}M$ kinetin (Kin) gelled with 0.2% gelrite yielded 80% aseptic cultures with 100% bud-break. The in vitro-formed shoots obtained after bud-break were successfully multiplied in MS liquid medium supplemented with $13.2{\mu}M$ BA, $2.32{\mu}M$ Kin, and $0.98{\mu}M$ indole-3-butyric acid (IBA). Sub-culturing of shoots every 3 weeks on fresh multiplication medium yielded a consistent proliferation rate of 3.5-fold. Shoot clusters containing three to five shoots were successfully rooted with 100% success on half-strength MS liquid medium supplemented with $9.8{\mu}M$ IBA, $2.85{\mu}M$ indole-3-acetic acid (IAA), $2.68{\mu}M$ naphthaleneacetic acid (NAA), and 3% sucrose. Plantlets grown in vitro were acclimatized and subsequently transferred to the field. Inter-simple sequence repeat analysis has confirmed the genetic uniformity of the tissue-cultured plants up to 27 passages.
Shoot proliferation was obtained from shoot tips and nodal explants of Vitex negundo L. on MS medium supplemented with either BAP or KIN (0.1-2.0 mg/L) alone or in combination with NAA (0.1 mg/L). The concentrations of cytokinins combined with NAA produced multiple shoots from shoot tips and nodal explants. The highest mean percentage (84.3$\pm$8.0) of shoot multiplication's were observed on nodal explants in the presence of BAP (1.5 mg/L) and NAA (0.1 mg/L) followed by shoot tips (65.0$\pm$5.0). The regenerated shootlets were rooted on MS basal medium IAA, IBA, NAA (0.1-1.5 mg/L). The maximum number of roots (51.0$\pm$2.6) was achieved on the medium containing IBA (1.0 mg/L) followed by other auxins (NAA, IAA). The regenerated plants were successfully transferred to a mixture of vermiculate and soil. About 95% of the plantlets survived when transferred to the field.
Present study describes a method on the application of efficient tissue culture systems for the micro-propagation of juvenile and mature sawtooth oak(Quercus acutissima). Nodal segments with axillary buds were used as initial explant sources. WPM(Woody Plant Medium) was the best in growth and proliferation of shoot among the media tested. Although the single effect of zeatin revealed on two dorminant shoot elongation with normal growth until the elevation of levels up to 3.0mg/l, BAP($N^6$-benzyl amino purine) usually showed better response than zeatin on shoot multiplication and/or elongation. In addition, the incorporation of BAP and zeatin onto the culture media represents more effectiveness in shoot proliferation and its growth. Optimum concentrations of BAP and zeatin were 0.5 and 0.05~1.0mg/l, respectively. Ninety percent of the proliferated shoots was rooted on half-strength GD (Gresshoff and Doy, 1972) medium containing 0.5mg/l IBA(indole butyric acid) in 4 weeks after culture. More than 70% of the rooted plantlets survived after 5 months of transplanting into artificial soil mix containing equal amount of peatmoss and perlite. Among 27 plus tree clones which were grafted twice onto the juvenile rootstocks, only 4 clones revealed the possibility for shoot multiplication through tissue culture system. The capacity for the micropropagation using mature explant sources was highly depended on clonal differences compared with those of octet age. More than 90% of rooting ratio was obtained from the best responding clone. Among the 7 rooting media tested, GD medium was the best far rooting. The most effective rooting was obtained on half-strength GD medium containing 0.2 to 2.0mg/l IBA. More than 60% of rooted plantlets survived after 5 months of transplanting into the artificial soil mix.
The present study was carried out to assess the possibility of rapid multiplication of Zingiber mioga ROSC. through in vitro culture of shoot-apex. The factor investigated was effect of various growth regulators on shoot-apex culture. The shoot-apex cultured of M. S. (Murashige and Skoog) medium developed into plantlet in 12 Weeks. M. S. medium containing NAA at 05ppm and BA 5.0ppm was found to be optimal for growth of in vitro plantlet.
This study was conducted to determine the effect of a light-emitting diode (LED) on in vitro shoot growth and rooting in teak (Tectona grandis L.). In the experiments with apical bud explants, the greatest shoot elongation (3.2 cm) occurred when they were cultured on DKW medium under 50% blue and 50% red LED mixture (BR), whereas no differences in growth were observed in different light sources (florescent light [F] or BR) or media (MS or DKW). The highest number of shoot multiplication (2.4/explant) or elongation (4.94 cm) was achieved with 0.5 or 1.0 mg/L 6-Benzyladenine (BA) treatment under BR. In addition, the best rooting rate (93.8%) or root length (1.3 cm) was recorded with 0.5 mg/L indole-3-butyric acid (IBA) treatment under BR, and the highest root induction (3.1/explant) was observed in 0.2 mg/L IBA under BR. The in vitro rooted plantlets were hardened and survived well on soil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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