Fungal Virus에 대한 연구는 60년대말 double-stranded RNA(dsRNA)가 interferon의 생성을 촉진시킨다는 보고가 나온 이후 dsRNA를 많이 얻을수 있는 재료로써 이 virus에 대한 연구가 본격적으로 진행되었다. 현재까지 60여종 이상의 genus와 200가지 이상의 species에서 virus의 존재가 분리 또는 확인되어 있다. 여기서는 Ustilago maydis의 killer activity를 유발하는 virus에 대한 일반적인 특징과 이 virus의 transcription 과정에 대해 설명하고자 한다.
A hepadnaviruses replicates its DNA genome via reverse transcription of an RNA template (pregenomic RNA or pgRNA), which has a cap structure at the 5' end and a poly(A) tail at the 3' end. We have previously shown that the 5' cap is indispensable for encapsidation of the pgRNA. A speculative extension of the above finding is that the cap contributes to encapsidation via its interaction with the poly(A) tail, possibly involving eIF4E-eIF4G-PABP interaction. To test this hypothesis, poly(A)-less pgRNAs were generated via cleavage by a cis-acting hepatitis delta virus ribozyme sequence. We found that accumulation of the poly(A)-less pgRNA was markedly diminished, mostly likely due to its reduced stability. Importantly, however, the remaining poly(A)-less pgRNAs were nonetheless encapsidated and reverse transcribed normally when the reduced stability was taken account. Our finding clearly contradicts the notion that the poly(A) tail has any function in encapsidation and viral reverse transcription.
When DNA replication of simian virus 40 (SV40) is initiated on the replication origin, the regions containing the initiation sites of DNA primase, which participates in the transient RNA primer synthesis for formation of Okazaki fragments in the lagging strand, were chosen as the target sites of antisense RNA for studies of the inhibition of SV40 DNA replication. Four recombinant transcription vectors, pUC-PrI, pUC-PrII, pGEM-PrBS, and pGEM-PrSN, coding antisense RNA, were constructed. Four antisense RNAs (named as I, II, BS, and SN) having the size of 18, 19,58, and 123 nts, respectively, were made from the transcription vectors by in vitro transcription. And then, antisense RNA in the concentration of 2${\mu}m$ were added to COS cells transfected with pATSV-W which is a recombinant plasmid containing the SV40 origin of replication. The inhibitory extent of DNA replication was measured by DpnI resistance and was confirmed by measurement of transient RNA primer synthesis. The result shows that six combinations of antisense RNA (I, II, BS, SN, I+SN, and BS+SN) lead to the inhibition of SV40 DNA replication by up to 85%.
A simple, rapid, specific and sensitive method for the detection of serum hepatitis C virus (HCV) RNA using the reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) technique without conventional RNA extraction was developed. HCV template RNA from serum was obtained by boiling the serum at $95^{\circ}C$ for 2 min, cooling rapidly in ice and removing the proteins by cetrifugation. RT-PCR amplifications including the reverse transcription and first PCR amplification were performed in one vessel containing both of reverse transcriptase and Taq DNA polymerase. The detection of HCV RNA from $10^{-3}{\mu}l$. serum was possible with this method. The suitability of this method for clinical analysis was evaluated by assaying HCV RNA in 225 patient samples including anti-HCV antibody negatives (13 samples) and positives (212 samples) by enzyme-linked immunosorbent assay test (ELISA). Detections of HCV RNA with this method were in 4 of 13 anti-HCV antibody negative samples (30.8%) and 95 of 212 positive samples (44.8%). The present method can be completed in 1 hr and has a wide range of application for the clinical utilities to determine the viral RNAS.
The goal of this work was to investigate the correlations between MyHC mRNA transcription and their corresponding protein expressions in porcine longissimus muscle (LM) during postnatal growth of pigs. Five DLY ($Duroc{\times}Landrace{\times}Yorkshire$) crossbred pigs were selected, slaughtered and sampled at postnatal 7, 30, 60, 120, and 180 days, respectively. Each muscle was subjected to quantity MyHCs protein contents through an indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), to quantity myosin heavy-chains (MyHCs) mRNA abundances using real-time polymerase chain reaction. We calculated the proportion (%) of each MyHC to total of four MyHC for two levels, respectively. Moreover, the activities of several key energy metabolism enzymes were determined in LM. The result showed that mRNA transcription and protein expression of MyHC I, IIa, IIx and IIb in LM all presented some obvious changes with postnatal aging of pigs, especially at the early stage after birth, and their mRNA transcriptions were easy to be influenced than their protein expressions. The relative proportion of each MyHC mRNA was significantly positively related to that of its corresponding protein (p<0.01), and MyHC I mRNA proportion was positively correlated with creatine kinase (CK), succinate dehydrogenase (SDH), malate dehydrogenase (MDH) activities (p<0.05). These data suggested that MyHC mRNA transcription can be used to reflect MyHC expression, metabolism property and adaptive plasticity of porcine skeletal muscles, and MyHC mRNA composition could be a molecular index reflecting muscle fiber type characteristics.
Histone acetylation and deacetylation play central roles in the regulation of chromatin structure and transcription by RNA polymerase II (RNA Pol II). Although Hda1 histone deacetylase complex (Hda1C) is known to selectively deacetylate histone H3 and H2B to repress transcription, previous studies have suggested its potential roles in histone H4 deacetylation. Recently, we have shown that Hda1C has two distinct functions in histone deacetylation and transcription. Histone H4-specific deacetylation at highly transcribed genes negatively regulates RNA Pol II elongation and H3 deacetylation at inactive genes fine-tunes the kinetics of gene induction upon environmental changes. Here, we review the recent understandings of transcriptional regulation via histone deacetylation by Hda1C. In addition, we discuss the potential mechanisms for histone substrate switching by Hda1C, depending on transcriptional frequency and activity.
Sodium butyrate (NaBu) has been used to enhance protein expression levels in mammalian cell culture. To determine the clonal variability of recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cells in response to NaBu addition regarding specific antibody productivity $(q_{Ab})$, three rCHO clones were subjected to different concentrations of NaBu. For all three clones, NaBu addition inhibited cell growth and decreased cell viability in a dose-dependent manner. On the other hand, the enhancing effect of NaBu on $q_{Ab}$ varied significantly among the clones. NaBu addition enhanced the antibody production of only one clone. RT-PCR analysis revealed that the changes in $q_{Ab}$ correlated linearly with those of the mRNA transcription level. Thus, it was concluded that the different enhancing effects of NaBu on protein expression in rCHO cell clones resulted from their different mRNA transcription levels.
In situ detection of RNAs is becoming increasingly important for analysis of gene expression within and between intact cells in tissues. International genomics efforts are now cataloging patterns of RNA transcription that play roles in cell function, differentiation, and disease formation, and they are demon-strating the importance of coding and noncoding RNA transcripts in these processes. However, these techniques typically provide ensemble averages of transcription across many cells. In situ hybridization-based analysis methods complement these studies by providing information about how expression levels change between cells within normal and diseased tissues, and they provide information about the localization of transcripts within cells, which is important in understanding mechanisms of gene regulation. Multi-color, single-molecule fluorescence in situ hybridization (smFISH) is particularly useful since it enables analysis of several different transcripts simultaneously. Combining smFISH with immunofluorescent protein detection provides additional information about the association between transcription level, cellular localization, and protein expression in individual cells.
The regulation of gene expression in procaryotes is accomplished primarily at the level of transcription. Initiation of transcription is subject to numerous promoter-specific controls which act to ensure coordinate expression of disparate genes. The kinetics of formation of a functional("open") complex at a promoter, prior to the catalytic steps of RNA chain initiation and elongation, is thought to play a major role in controlling the efficiency of transcription of that promotor, since the subsequent processes of nucleotide binding and phosphodiester bond formation are rapid and are not promoter-specific (Mangel and Chamberlin, 1974 Shimamoto et al., 1981)
Ribosomes, acting as the cellular factories for protein production, are essential for all living organisms. Ribosomes are composed of both proteins and RNAs and are established through the coordination of several steps, including transcription, maturation of ribosomal RNA (rRNA), and assembly of ribosomal proteins. In particular, diverse factors required for ribosome biogenesis, such as transcription factors, small nucleolar RNA (snoRNA)-associated proteins, and assembly factors, are tightly regulated by various post-translational modifications. Among these modifications, small ubiquitin-related modifier (SUMO) targets lots of proteins required for gene expression of ribosomal proteins, rRNA, and snoRNAs, rRNA processing, and ribosome assembly. The tight control of SUMOylation affects functions and locations of substrates. This review summarizes current studies and recent progress of SUMOylation-mediated regulation of ribosome biogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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