SH2D4A, comprising a single SH2 domain, is a novel protein of the SH2 signaling protein family. We have previously demonstrated SH2D4A is expressed ubiquitously in various tissues and is located in the cytoplasm. In this study we investigated the function of SH2D4A in human embryonic kidney (HEK) 293 cells using interaction analysis, cell proliferation assays, and kinase activity detection. SH2D4A was found to directly bind to estrogen receptor $\alpha$ (ER$\alpha$), and prevent the recruitment of phospholipase C-$\gamma$ (PLC-$\gamma$) to ER$\alpha$. Moreover, we observed its inhibitory effects on estrogen-induced cell proliferation, involving the protein kinase C (PKC) signaling pathway. Together, these findings suggested that SH2D4A inhibited cell proliferation by suppression of the ER$\alpha$/PLC-$\gamma$/PKC signaling pathway. SH2D4A may be useful for the development of a new anti-cancer drug acting as an ER signaling modulator.
The neurotoxicity of amyloid $\beta(A\beta)$ is associated with an increased production of reactive oxygen species and apoptosis, and it has been implicated in the development of Alzheimer's disease. While(-)-epigallocatechin-3-gallate(EGCG) suppresses $A\beta$-induced apoptosis, the mechanisms underlying this process have yet to be completely clarified. This study was designed to investigate whether EGCG plays a neuroprotective role by activating cell survival system such as protein kinase C(PKC), extracellular-signal-related kinase(ERK), c-Jun N-terminal kinase(JNK), and anti-apoptotic and pro-apoptotic genes in SH-SY5Y human neuroblastoma cells. One ${\mu}M\;A{\beta}_{1-42}$ decreased cell viability, which was correlated with increased DNA fragmentation evidenced by DAPI staining. Pre-treatment of SH-SY5Y neuroblastoma cells with EGCG($1{\mu}M$) significantly attenuated $A{\beta}_{1-42}$-induced cytotoxicity. Potential cell signaling candidates involved in this neuroprotective effects were further examined. EGCG restored the reduced PKC, ERK, and JNK activities caused by $A{\beta}_{1-42}$ toxicity. In addition, gene expression analysis revealed that EGCG prevented both the $A{\beta}_{1-42}$-induced expression of a pro-apoptotic gene mRNA, Bad and Bax, and the decrease of an anti-apoptotic gene mRNA, Bcl-2 and Bcl-xl. These results suggest that the neuroprotective mechanism of EGCG against $A{\beta}_{1-42}$-induced apoptotic cell death includes stimulation of PKC, ERK, and JNK, and modulation of cell survival and death genes.
A membrane-bound phosphatidylinositol 4-kinase (PI 4-kinase) was separated in a sucrose gradient and solubilized with 1% Triton X-100 from mouse brain. The enzyme was purified 2,952-fold by various chromatographic techniques including DEAE-cellulose, PI-Sepharose and Sephacryl S-200 gel filtration. The molecular weight of PI 4-kinase was approximately 76 kDa by gel filtration and 70.8 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The purified enzyme exhibited specific activity of 11.2 nmol/min/mg protein and pi value of 4.7. Kinetic analysis of the PI 4-kinase indicated apparent $K_m$, values of 190 ${\mu}M$ and 120 ${\mu}M$ for phosphatidylinositol and ATP, respectively. The maximal activity of this purified enzyme was observed at pH 7.4 at an incubation temperature of $37^{\circ}C$. The enzyme activity was significantly activated by $Mg^{2+}$, $Mn^{2+}$ and $Fe^{2+}$, and inhibited severely by $Ca^{2+}$. PI 4-kinase was proved to be pure in its immunoblot test by polyclonal antibody prepared from immunized rabbit sera. By this test, we were able to detect the existence of the same type of PI 4-kinase from other mouse organ tissues, such as liver, heart, kidney and spleen. Furthermore, similar immunoblot analysis with the same antisera recognized the different epitopes of PI 4-kinase proteins from various organs of rabbit, chinese hamster and rat.
To characterize the biochemical properties of the PP2A regulatory B subunit, PPP2R5D, we analyzed its phosphorylation sites, stoichiometry and effect on holoenzyme activity. PPP2R5D was phosphorylated on Ser-53, Ser-68, Ser-81, and Ser-566 by protein kinase A, and mutations at all four of these sites abolished any significant phosphorylation in vitro. In HEK293 cells, however, the Ser-566 was the major phosphorylation site after PKA activation by forskolin, with marginal phosphorylation on Ser-81. Inhibitory tyrosine phosphorylation on Tyr-307 of the PP2A catalytic C subunit was decreased after forskolin treatment. Kinetic analysis showed that overall PP2A activity was increased with phosphorylation by PPP2R5D phosphorylation. The apparent Km was reduced from $11.25\;{\mu}M$ to $1.175\;{\mu}M$ with PPP2R5D phosphorylation, resulting in an increase in catalytic activity. These data suggest that PKA-mediated activation of PP2A is enabled by PPP2R5D phosphorylation, which modulates the affinity of the PP2A holoenzyme to its physiological substrates.
The molecular machinery controlling cell cycle is centered around the regulation of the activity of maturation-promoting factor (MPF), a complex composed of a catalytic Cdc2 and the cyclinB regulatory subunit. Cdc2 kinase is inactivated by phosphorylation of inhibitory kinase, Wee1. It has been known that there are three different Wee1 kinases in the mammalian cell, Wee1A, Wee1B and Myt1. To investigate the regulatory mechanism of Wee1 kinases, the phosphorylation and degradation of Wee1A and Wee1B were checked in the Xenopus oocyte cell cycle. When Wee1 kinases were injected into frog oocyte, Wee1B was more stable than Wee1A. Wee1A and Wee1B kinase were phosphorylated by many kinases such as PKA and Akt. The roles of amino or carboxyl terminal in mouse Wee1A or Wee1B kinase were investigated using chimeric constructs. The degree of protein phosphorylation, degradation and cell cycle progression were different between chimeric constructs. The amino domain of Wee1A was implicated in the protein phosphorylation and degradation while amino domain of Wee1B and carboxyl domain of Wee1A were involved in the activity regulation. These results suggested that the domains of Wee1 kinase have different and significant roles in regulating the Wee1 kinases in the cell cycle progression.
Chemotherapy-induced side effects affect the quality of life and efficacy of treatment of cancer patients. Current approaches for treating the side effects of chemotherapy are poorly effective and may cause numerous harmful side effects. Therefore, developing new and effective drugs derived from natural nontoxic compounds for the treatment of chemotherapy-induced side effects is necessary. Experiments in vivo and in vitro indicate that Panax ginseng (PG) and its ginsenosides are undoubtedly non-toxic and effective options for the treatment of chemotherapy-induced side effects, such as nephrotoxicity, hepatotoxicity, cardiotoxicity, immunotoxicity, and hematopoietic inhibition. The mechanism focus on anti-oxidation, anti-inflammation, and anti-apoptosis, as well as the modulation of signaling pathways, such as nuclear factor erythroid-2 related factor 2 (Nrf2)/heme oxygenase-1 (HO-1), P62/keap1/Nrf2, c-jun Nterminal kinase (JNK)/P53/caspase 3, mitogen-activated protein kinase (MEK)/extracellular signal-regulated kinases (ERK), AMP-activated protein kinase (AMPK)/mammalian target of rapamycin (mTOR), mitogen-activated protein kinase kinase 4 (MKK4)/JNK, and phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K)/AKT. Since a systemic review of the effect and mechanism of PG and its ginsenosides on chemotherapy-induced side effects has not yet been published, we provide a comprehensive summarization with this aim and shed light on the future research of PG.
The mammalian ste20-like kinase (MST) pathway is important in the regulation of apoptosis and cell cycle and emerges as a novel tumor suppressor pathway. MST-induced phosphorylation of Salvador homolog 1 (SAV1), which is a scaffold protein, has not been evaluated in detail. We performed a mass spectrometric analysis of the SAV1 protein that was co-expressed with MST2. Phosphorylation was detected at Thr-26, Ser-27, Ser-36 and Ser-269. Although single or double mutations had little effects, the mutation of all four residues in SAV1 to Ala (SAV1-4A) had inhibitory effects on the MST pathway. MST2-mediated induction of SAV1-4A protein levels, SAV1-4A interaction with MST2 and the self-dimerization of SAV1-4A were weaker compared to those of wild-type SAV1. SAV1-4A inhibited MST2- and K-RasG12V-induced cell death of MCF7 cells. These results suggest that MST-mediated phosphorylation of four residues within SAV1 may be important in the induction of cell death by the MST pathway.
We investigated whether SIRT1 is associated with reactive oxygen species (ROS) accumulation during CK2 downregulation-mediated senescence. SIRT1 overexpression suppressed ROS accumulation, reduced transcription of FoxO3a target genes, and nuclear export and acetylation of FoxO3a, which were induced by CK2 downregulation in HCT116 and MCF-7 cells. Conversely, overexpression of a dominant-negative mutant SIRT1 (H363Y) counteracted decreased ROS levels, increased transcriptional activity of FoxO3a, and increased nuclear import and decreased acetylation of FoxO3a, which were induced by CK2 upregulation. CK2 downregulation destabilized SIRT1 protein via an ubiquitin-proteasome pathway in human cells, whereas CK2 overexpression reduced ubiquitination of SIRT1. Finally, the SIRT1 activator resveratrol attenuated the accumulation of ROS and lipofuscin as well as lifespan shortening, and reduced expression of the DAF-16 target gene sod-3, which were induced by CK2 downregulation in nematodes. Altogether, this study demonstrates that inactivation of the SIRT1-FoxO3a axis, at least in part, is involved in ROS generation during CK2 downregulation-mediated cellular senescence and nematode aging.
Changes in the levels of prostaglandian F$_{2a}$ (PGF$_{2a}$) and E$_2$ (PGE$_2$) in culture medium during in vitro ovulation of Rana dybowskii follicles were examined. The ovulation was induced by frog pituitary homogenate (FPH) or TPA (12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate, a protein kinase activator) and the levels of PGs were measured by radioimmunoassay. When the ovarian follicles were cultured, only a few oocytes were ovulated by 12 h, but half of them were ovulated by 24 h in response to FPH, whereas around 30% of oocytes were ovulated by 12 h and maximum ovulation (around 50%) occurred by 24 h in response to TPA. Without any stimulation (control), no ovulation occurred. TPA elevated the level of PGF$_{2a}$ to high levels when compared to control (basal levels), but the increase by FPH was less evident. Likewise, the levels of PGE$_2$ increased markedly in response to TPA, but rather decreased by FPH treatment. Interestingly, PGF$_{2a}$ induced ovulation but PGE$_2$ suppressed FPH- or PGF$_{2a}$-induced oocyte ovulation. Basal levels of PGs Increased steadily during culture. When theca/epithelium (THEP) layer and granulosa cell-enclosed oocytes (GCEOs) were separated by microdissection and cultured independently, higher levels of both PGs were secreted by THEP than by GCEOS. Synthesis of PGs by follicle or follicular components was strongly suppressed by exogenous cAMP or indomethacin. These results suggest that: 1) PGF$_{2a}$ plays an important role in Rana ovulation, 2) protein kinase C is involved in PGs production, and 3) thecal epithelium layer is responsible for the PGs production in Rana.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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