A molecular imprinted polymer (MIP) using (+)catechin ((+)C) as a template and acrylamide (AM) as a functional monomer was prepared. Acetonitrile was used as the porogen with ethylene glycol dimethacrylate (EGDMA) as the crosslinker and 2,2'-azobis(isobutyronitrile) (AIBN) as the initiator. The adsorption isotherms in the MIP were measured and the parameters of the equilibrium isotherms were estimated by linear and nonlinear regression analyses. The linear equation for original concentration and adsorpted concentrations was then expressed, and the adsorption equilibrium data were correlated into Langmuir, Freundlich, quadratic, and Langmuir Extension isotherm models. The mixture compounds of (+)C and epicatechin (EC) show competitive adsorption on specific binding sites of the (+)catechin-MIP. The adsorption concentrations of (+)C, epicatechin (EC), epicatechin gallate (ECG), and epigallocatechin gallate (EGCG), on the (+)catechin-molecular imprinted polymer were compared. Through the analysis, the (+)catechin-molecular imprinted polymer showed higher adsorption ability than blank polymer which was synthesized molecular imprinted polymer without (+)catechin. Furthermore, the competitive Langmuir isotherms were applied to the mixture compounds of (+)C and EC.
Highly open porous polymer matrices are required for high density cell seeding, efficient nutrient, and oxygen supply to the cells cultured in the three dimensional matrices. However, there are severe problems of mass transfer limitations within the cell/scaffolds culture system. Thus we hypothesize that continuos-flow culture conditioning of cells with the scaffolds may improve the cell viability and the differentiated function. In this study, we fabricated porous PLGA scaffolds by using gas-foaming/salt-leaching method as previous described. Viscous PLGA gel paste contains ammonium bicarbonate particulates, acting as a gas-foaming agent as well as a salt-leaching porogen, were cast into Teflon mold and dried. Ammonium bicarbonate salt upon contact to an acidic aqueous solution evloves gaseous ammonia and carbon dioxide by itself. And we conjugated galactose moiety [AGA; $N-(aminobuty1)-O-{\beta}-D-galactopyranosyl-(1{\rightarrow}4)-D-glucoamide]$ to the terminal end group of a PLGA to increase the cell adhesion and matain the differentiated function of hepatocytes. Cell-seeded scaffolds were secured in a flow bioreactor chamber and exposed to continuous flow at 5 ml/min. As a result of our study, the high yield of hepatocytes attachment was accomplished by increasing the concentration of PLGA-AGA conjugate in polymer scaffolds and cells in the scaffolds under continuos flow condition maintained a high level of viability and albumin secretion rate of cultured hepatocytes showed a higher level that of control groups.
Cartilage injuries are frequent nowadays. The previous surgical treatment of cartilage defect was limited. Another approach in the treatment of cartilage injuries is the use of reconstitute cartilage consisting of chondrocytes cultured in suitable biodegradable scaffolds. Current studies have demonstrated the compatibility of chondrocytes with different biomaterials and the chondrogenesis in various types of porous scaffolds. The cell ingrowth into the porous scaffolds is modulated by initial cell loading efficiency. Therefore, well-interconnected pore structure and even pore distribution of the scaffolds are essential for efficient cell seeding. According to our previous work, well-interconnected macroporous scaffolds can be prepared by gas-foaming/salt-leaching method using ammonium bicarbonate salt as porogen additives. In this work, primary chondrocytes were cultured in PLGA 65/35 scaffolds fabricated by using our method. Cells seeded in the scaffolds showed well distribution by agitated seeding method. Histochemical staining of proteoglycans present in the scaffolds was used to visualize the chondrocyte ingrowth in the scaffolds. At 3 weeks, the population of chondrocytes was increased for the most part of the scaffolds, and extra cellular matrix (ECM) secretion was increased as culture periods progressed.
Park, Seung-Won;Kweon, Hae-Yong;Goo, Tae-Won;Kim, Seong-Ryul;Jo, You-Young;Choi, Gwang-Ho
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.25
no.1
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pp.75-79
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2012
Low-melting-temperature agarose gel solution, as a novel porogen was combined with a silk fibroin solution to generate interconnected porous networks. The porosity of the resultant silk fibroin-agarose scaffolds was greater than that of the scaffolds generated with agarose and deionized water. The porosities of silk fibroin scaffolds containing agarose gel at 0.5%, 1.0%, 1.5%, 2.0% [w/v] were 110.9%, 111.7%, 120.9%, and 123.0%, respectively. Lastly, the internal space generated in scaffolds after dissolution of the agarose gel provides a good environment for cell growth and movement within the scaffold.
Porous materials are useful in a wide range of applications including bio/electronic products. The preparation and processing of these materials are mainly progressed by using an organic solvent, which gives rise to air pollution by its emissions. Alternatively, supercritical fluids are well suited to the production of functional porous materials due to a number of specific physical, chemical, and toxicological advantages. In this review, we will introduce the preparation and processing techniques for the formation of the nano/macro pore structure and their morphology, which can be controled by using supercritical fluids.
Zakia, Neena;Zulfikar, Muhammad A.;Amran, Muhammad B.
Advances in materials Research
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v.9
no.4
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pp.251-263
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2020
α-mangostin imprinted polymers have been synthesized by a non-covalent imprinting approach with α-mangostin as a template molecule. The α-mangostin molecularly imprinted polymers (MIPs) prepared by radical polymerization using methacrylic acid, ethlylene glycol dimethacrylate, benzoyl peroxide, and acetonitrile, as a monomer, crosslinker, initiator, and porogen, respectively. The template was removed by using methanol:acetic acid 90:10 (v/v). The physical characteristics of the polymers were investigated by Fourier Transform Infrared spectroscopy (FTIR), scanning electron microscopy (SEM), and thermogravimetric analysis (TGA). The rebinding studies were carried out by batch methods. The results exhibited that the MIPs was able to adsorb the α-mangostin at pH 2 and the contact time of 180 min. The kinetic adsorption data of α-mangostin performed the pseudo-second order model and followed the Langmuir isotherm model with the adsorption capacity of 16.19 mg·g-1. MIPs applied as a sorbent material in solid-phase extraction, namely molecularly imprinted solid-phase extraction (MISPE) and it shows the ability for enrichment and clean-up of α-mangostin from the complex matrix in medicinal herbal product and crude extract of mangosteen (Garcinia mangostana L.) pericarp. Both samples, respectively, which were spiked with α-mangostin gives recovery more than 90% after through by MISPE in all concentration ranges.
The molded macroporous poly (glycidyl methacrylate-co-ethylene glycol dimethacrylate) rods produced by a facile molding process were polymerized in situ within a tubular mold, chromatographic column ($4.6{\times}100mm$) by free radical polymerization. It was complemented by epoxy derivatized monolithic column and chemical modification of the epoxide groups with the sulphuric acid. By variation of the polymerization conditions, such as the ratio of the monomers, the porogen (pore generating material), and the temperature, the pore size could be varied, so the retention time of the samples may be adjusted. For the mixture of caffeine and tryptophan in the prepared monolithic column, the influences of polymerization material compositions to the efficiency, selectivity, and resolution of the monolithic column were investigated.
Drug releasing porous poly($\varepsilon$-caprolactone) (PCL)-chitosan matrices were fabricated for bone regenerative therapy. Porous matrices made of biodegradable polymers have been playing a crucial role as bone substitutes and as tissue-engineered scaffolds in bone regenerative therapy. The matrices provided mechanical support for the developing tissue and enhanced tissue formation by releasing active agent in controlled manner. Chitosan was employed to enhance hydrophilicity and biocompatibility of the PCL matrices. PDGF-BB was incorporated into PCL-chitosan matrices to induce enhanced bone regeneration efficacy. PCL-chitosan matrices retained a porous structure with a 100-200 $\mu$m pore diameter that was suitable for cellular migration and osteoid ingrowth. $NaHCO_3$ as a porogen was incorporated 5% ratio to polymer weight to form highly porous scaffolds. PDGF-BB was released from PCL-chitosan matrices maintaining therapeutic concentration for 4 week. High osteoblasts attachment level and proliferation was observed from PCL-chitosan matrices. Scanning electron microscopic examination indicated that cultured osteoblasts showed round form and spread pseudopods after 1 day and showed broad cytoplasmic extension after 14 days. PCL-chitosan matrices promoted bone regeneration and PDGF-BB loaded matrices obtained enhanced bone formation in rat calvarial defect. These results suggested that the PDGF-BB releasing PCL-chitosan porous matrices may be potentially used as tissue engineering scaffolds or bone substitutes with high bone regenerative efficacy.
Fibroin is a biopolymer available in large quantity from silk fiber and has a long history of use as a suture proving biocompatibility. In this report, fibroin microspheres has been fabricated for biomaterial applications. W/O emulsion of regenerated fibroin droplets in a continuous phase of decane with mixed surfactants was dried to facilitate fibroin gelation and the condensed fibroin microspheres were harvested. The ratio of mixed surfactants and their proportions to decane were determined to prepare a stable W/O emulsion. A spherical form of fibroin gels was obtained from the W/O emulsion agitated at 600 rpm. Scanning electron microscopy revealed that number average sizes of the fibroin microspheres were 21.6 and 8.5 ${\mu}m$ when dried under ambient conditions or under vacuum, respectively. Tomography of the spheres revealed that their internal structures are packed or hollowed. Hollow and hemispherical forms of microspheres were also prepared by using porogen.
Porous chitosan and chitin membranes were prepared by using silica particles as porogen. Membrane preparation was achieved via the following three steps: (1) chitosan film formation by casting an chitosan solution containing silica particles, (2) preparation of porous chitosan membrane by dissolving the silica particles by immersing the film into an alkaline solution and (3) preparation of porous chitin membrane by acetylation of chitosan membrane with acetic anhydride. The optimum preparation conditions which could provide a chitosan and chitin membranes with good mechanical strength and adequate pure water flux were determined. To allow protein affinity, a reactive dye (Cibacron Blue 3GA) was immobilized on porous chitosan membrane. Binding capacities of affinity chitosan and chitin membranes for protein and enzyme were determined by the batch adsorption experiments of BSA protein and lysozyme enzyme. The maximum binding capacity of affinity chitosan membrane for BSA protein is about 22 mg/mL, and that of affinity chitin membrane for lysozyme enzyme is about 26 mg/mL. Those binding capacities are about $several{\sim}several$ tens times larger than those of chitosan and chitin-based hydrogel beads. Those results suggest that the porous chitosan and chitin membranes are suitable in affinity filtration chromatography for large scale separation of proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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