To determine whether the muc region of pKM101 and its mutant pSL4 is sufficient for the expression of these phenotypes, muc regions of pKM101 and pSL4 were subcloned onto the highcopy number vector pKB354 and were selected the cloned pJB200 and pJB210. The recombinant plasmids pJB200 and pJB210 were introduced into umu $C36^{-}$ uvr $A6^{-}$ (TK610) strain and determined the protection effect and mutagenecity for UV and MMS. The protection effect and mutagenecity of umu $C36^{-}$ uvr $A6^{-}$ (TK610) were supressed by muc gene of the recombinant plasmids. The muc gene of pSL4 has higher effect than that of pKM101. The recombiant plasmid pJB210(inclued muc gene of pKM101) did not affect uv-mutagenesis in the $recA^{-}$ (JC2926) mutant.
Park, Dong-Chul;Kim, Hyun-Jeong;Kim, Ok-Mi;Bae, Jun-Tae;Park, Sun-Hee;Lee, Byeung-Hun;Lee, Kap-Rang
The Korean Journal of Mycology
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v.26
no.1
s.84
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pp.103-107
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1998
The trp2 gene encoding trifunctional enzyme in Coprinus cinereus was investigated the expression in the heterothallic mushroom species. To identify the homology of trp2 gene to Schizophyllum commune and Pleurotus ostreatus, southern hybridization was performed with plasmid pHIONA8 containing C. cinereus trp2 gene as a probe, which resulted in a strong signal indicating an homologous sequence to the chromosomal DNA of S. commune. About 50 transformants per dish was appeared in the complementation test by pHIONA8 using S. commune tryptophan auxotroph as host. In the mating test between transformants and other mating type alleles, the fruiting body of S. commune was formed at $30^{\circ}C$ in $2{\sim}3$ weeks.
Unfortunately, there is no technique which is stable and repetitive to produce transgenic chicken, although various ways of gene transfer including PGC-and embryonic cell-mediated gene transfer, DNA microinjection, virus inoculation and sperm cells have been employed. The aims of this study were 세 develop and establish such a stable, repetitive and efficient way of gene transfer giving a faithful gene expression during development after the reconstruction of embryo in an UV-irradiated egg. A dual reporter plasmid (pJJ9), a fusion gene containing lacZ and GFP driven by a CMV promoter was used to exploit either merits of both reporting markers. lacZ with strong signal or GFP with vital marking. Electroporated embryonic blastodermal cells (EBCs) in the presence of the pJJ9 DNA faithfully showed 377 bp PCR product and lacZ or GFP expressions in the identical cells in vitro of in vivo. Furthermore, analyses of expression pattern of the foreign DNA demonstrated that microinjected EBCs cells into the UV-irradiated recipient egg should participate in normal developmental process, for example, proliferation and differentiation into various tissues. Thirty percentages of the manipulated eggs showed lacZ expression in their tissues. These results together with the specific procedures used in this study should facilitate avian transgenesis.
More and more available fungal genome sequence data reveal a large amount of secondary metabolite (SM) biosynthetic 'dark matter' to be discovered. Heterogeneous expression is one of the most effective approaches to exploit these novel natural products, but it is limited by having to clone entire biosynthetic gene clusters (BGCs) without errors. So far, few effective technologies have been developed to manipulate the specific large DNA fragments in filamentous fungi. Here, we developed a fungal BGC-capturing system based on CRISPR/Cas9 cleavage in vitro. In our system, Cas9 protein was purified and CRISPR guide sequences in combination with in vivo yeast assembly were rationally designed. Using targeted cleavages of plasmid DNAs with linear (8.5 kb) or circular (8.5 kb and 28 kb) states, we were able to cleave the plasmids precisely, demonstrating the high efficiency of this system. Furthermore, we successfully captured the entire Nrc gene cluster from the genomic DNA of Neosartorya fischeri. Our results provide an easy and efficient approach to manipulate fungal genomic DNA based on the in vitro application of Cas9 endonuclease. Our methodology will lay a foundation for capturing entire groups of BGCs in filamentous fungi and accelerate fungal SMs mining.
Kang, Ho Bum;Ryoo, Seung Heui;Lee, Sang Hoon;Jeon, Byung Soon;Sang, Byung Chan
Korean Journal of Agricultural Science
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v.25
no.1
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pp.79-88
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1998
This study was performed in order to apply to effective breeding of Korean native cattle on the molecular genetic level obtained from PCR and nucleotide sequencing analysis of BoLA DRB3 exon2 that has important roles in host immune defence. Genomic DNA used in this study was prepared from the blood of Korean native cattle in Korean Native Cattle Improvement Center of National Livestock Cooperation. The results obtained from this study are summarized as follows: 1. Genomic DNA extracted from the blood of Korean native cattle was subjected to electrophoresis on 1.5% agarose gel. Major band was bigger than 12.2kb, indicating that genomic DNA was well prepared for PCR. Amplified products of 284bp fragments was obtained the amplification of BoLA DRB3 exon2 gene by PCR. 2. Cloning of BoLA DRB3 exon2 of Korean native cattle with pCR2.1 vector was conformed by 300bp fragment from recombinent plasmid that restricted with enzyme digestion of EcoRI. 3. Homology of BoLA DRB3 exon2 alleles of parent was 82.0% between sire's alleles and 90.1% between dam's alleles. 4. In pedigree analysis using BoLA DRB3 exon2 gene, sequencing result of BoLA DRB3 exon2 genes showed inheritance by Mendelian mode through the parents to their offspring. 5. Taking together those experimental results, pedigree was confirmed on the basis of sequencing for the alleles of parents and offspring. This knowledge by the molecular biological approach could be served for the improvement of Korean native cattle.
The HIS5 gene of Saccharomyces cerevisiae host was encoded histidinol phosphate aminotransferase(E.C.: 2.6. 1.9). The HIS5 gene of Saccharomyces cerevisiae was cloned on plasmid pSH 530. This gene mighted be transcripted from a promoter of yeast gene both in E. coli and yeast hosts. We have determined the nucleotide sequence of the yeast HIS5 gene and its 5' and 3' flanking sequences. There are no large differences between the relative levels of HIS5 mRNA molecules with different 5' termini in represent and derepressed cell. In the DNA sequence upstream from the 5' termini of HIS5 mRNA we have found live closely related copies of a 9 base pair sequence. The sequence is also repeated in the 5' noncoding regions of HIS1, HIS3, HIS4, HIS5 and TRP5. Closely related sequence are not found flanking repeat sequence plays a role in the regulation of amino acid biosynthetic genes subject to the general amino acid control.
Kim, Jin-Yong;Wang, Yan;Park, Myeong-Soo;Ji, Geun-Eog
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.6
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pp.1022-1026
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2010
The different cleavage patterns of pYBamy59 plasmid isolated from E. coli $DH5{\alpha}$ and B. longum MG1 by the cell extract of B. longum MG1 suggested that the main reason for its low transformation efficiency was related to the restriction modification (R-M) system. To confirm the correlation between the R-M system and transformation efficiency, in vitro methylation and site-directed mutagenesis were performed in pYBamy59. Sequence analysis of pYBamy59 fragments digested by the cell extract of B. longum MG1 revealed that all fragments were generated by restriction of the sequence recognized by SacII endonuclease. When pYBamy59 from E. coli was methylated in vitro by CpG or GpC methyltransferase, it was protected from SacII digestion. Site-directed mutagenesis, which removed SacII sites from pYBamy59, or in vitro methylation of pYBamy59 showed 8- to 15-fold increases in the transformation efficiency over intact pYBamy59. Modification of the SacII-related R-M system in B. longum MG1 and in vitro methylation in pYBamy 59 can improve the transformation efficiency in this strain. The results showed that the R-M system is a factor to limit introduction of exogenous DNA, and in vitro modification is a convenient method to overcome the barrier of the R-M system for transformation.
Forty-seven Salmonella Typhimurium (33 zoonotic, 14 clinical) strains were tested for antimicrobial resistance using the standard disk diffusion method. The presence of relevant resistance genes and class 1 integrons were investigated by using PCR. Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) and plasmid profiling were carried out to determine the genomic diversity of Salmonella Typhimurium. Approximately 57.4% of the S. Typhimurium strains were multidrug resistant (MDR) and showed high resistance rates to tetracycline (70.2%), sulfonamides (57.4%), streptomycin (53.1%), ampicillin (29.7%), nalidixic acid (27.6%), kanamycin (23.4%), chloramphenicol (21.2%), and trimethoprim (19.1%). Resistance towards cephalosporins was noted for cephalothin (27.6%), cephradine (21.2%), amoxicillin clavulanic acid (17.0%), and cephalexin (17.0%). Resistance genes, $bla_{TEM}$, strA, aadA, sul1, sul2, tetA, tetB, and tetC, were detected among the drug-resistant strains. Thirtythree strains (70.2%) carried class 1 integrons, which were grouped in 9 different profiles. DNA sequencing identified sat, aadA, pse-1, and dfrA genes in variable regions on class 1 integrons. Thirty-five strains (74.4%) were subtyped to 22 different plasmid profiles, each with 1-6 plasmids (2.0 to 95 kb). PFGE subtyped the 47 strains into 39 profiles. In conclusion, high rates of multidrug resistance were found among the Malaysian Salmonella Typhimurium strains. The emergence of multidrug-resistant Salmonella Typhimurium to cephalosporin antibiotics was also observed. The strains were very diverse and no persistent clone was observed. The emergence of MDR Salmonella Typhimurium is a worldwide problem, and this report provides information for the better understanding of the prevalence and epidemiology of MDR S. Typhimurium in Malaysia.
The conditions required for plant transformation through the electroporation system and for the electrofusion of the prtoplasts were investigated for geranium (Pelargonium zonale hybrids). The optimum condition for electroporation was 1.77 kV/cm for $40\;{\mu}sec$ under which 70% of the protoplasts were viable and 58% of the viable protoplasts were stained with methylene blue. The pBin19 DNA plasmid used as a carrier vector was isolated from E.coli $DH5{\alpha}$ strain, purified, identified by the electrophoresis on agarose gel and electroporated into the protoplasts. The KM8 liquid medium gave better cell division than any other media. One MHz of AC frequency with 40 V/cm of amplitude for 15 sec followed by 0.5 kV/cm of DC amplitude for $60\;{\mu}sec$ was most efficient for the electrofusion of protoplasts.
The thr operon of Escherichia coli TF427, an $\alpha$-amino-$\beta$-hydroxyvaleric acid (AHV)-resistant threonine overproducer, was cloned in a pBluescriptII $KS^+$ plasmid by complementation of E. coli mutants. All clones contained a common 8.8 kb HindIII-generated DNA fragment and complemented the thrA, thrB, and thrC mutants by showing that these clones contained the whole thr operon. This thr operon was subcloned in the plasmid vectors pBR322, pUC18, and pECCG117, an E. coli/Corynebacterium glutamicum shuttle vector, to form recombinant plasmids pBTF11, pUTF25 and pGTF18, respectively. The subcloned thr operon was shown to be present in a 6.0 kb insert. A transformant of E. coli TF125 with pBTF11 showed an 8~11 fold higher aspartokinase I activity, and 15~20 fold higher L-threonine production than TF125, an AHV-sensitive methionine auxotroph. Also, it was found that the aspartokinase I activity of E. coli TF125 harboring pBTF11 was not inhibited by threonine and its synthesis was not repressed by threonine plus isoleucine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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