Ha, Jeong-Chul;Kim, Gu-Taek;Kim, Sung-Koo;Yu, Ju-Hyun;Kong, In-Soo
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.23
no.6
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pp.665-670
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1995
A marine bacterium which produces extracelluar agarase was isolated from sea water. Isolated strain was identified as Pseudomonas sp. by the morphological and biochemical properties (1). HindIII restriction fragment of 3.2 kb from Pseudomonas genomic DNA was cloned into pUC19 to obtain recombinant plasmid pJA1 which enables E. coli JM83 to produce agarase. Most of agarase produced in E. coli was secreted into the culture medium. The enzyme (pJA1) showed the highest agarase activity during the stationary phase (20 hrs) of E. coli. The optimum temperature and pH were 40$\circ$C and 7.8, respectively. Restriction gene map anlaysis revealed that it has different restriction pattern with three kind of agarase gene reported.
The expression of a pullulanase gene in Pichia pastoris was investigated. The gene encoding pullulanase was cloned by PCR using the chromosomal DNA of Bacillus naganoensis as the template. The expression vector pPIC9K-Pu was constructed by inserting the pullulanase gene into plasmid pPIC9K and then transformed into Pichia pastoris SMD 1168 by electroporation. Activity determination, SDS-PAGE, and PCR amplification indicated that the gene of the pullulanase from B. naganoensis had successfully been expressed in SMD 1168 and the molecular size of the expressed recombinant product was about 119.9 kDa. This is the first report on the successful expression of the pullulanase from B. naganoensis in P. pastoris. The transformant secreted recombinant pullulanase with the activity of 350.8 IU/ml in shake-flask culture. The properties of the recombinant pullulanase were characterized.
A gene encoding the mannanase of Bacillus subtilis WL-3, which had been isolated from Korean soybean paste, was cloned into Escherichia coli and the nucleotide sequence of a 2.7-kb DNA fragment containing the mannanase gene was subsequently determined. The mannanase gene, designated manA, consisted of 1,080 nucleotides encoding a polypeptide of 360 amino acid residues. The deduced amino acid sequence was highly homologous to those of mannanases belonging to glycosyl hydrolase family 26. The manA gene was strongly expressed in B. subtilis 168 by cloning the gene downstream of a strong B. subtilis promoter of plasmid $pJ27{\Delta}88U$. In flask cultures, the production of mannanase by recombinant B. subtilis 168 reached maximum levels of 300 units/ml and 450 units/ml in LB medium and LB medium containing 0.3% locust bean gum, respectively. Based on the zymogram ofthe mannanase, it was found that the mannanase produced by recombinant B. subtilis could be maintained stably without proteolytic degradation during the culture time.
In developing a useful tool to detect parasitic dynamics in an estuarine ecosystem, a denaturing high-performance liquid chromatography (DHPLC) assay was optimized by cloning plasmid DNA from the grass shrimp Palaemonetes pugio, and its two parasites, the trematode Microphallus turgidus and bopyrid isopod Probopyrus pandalicola. The optimal separation condition was an oven temperature of $57.9^{\circ}C$ and 62-68% of buffer B gradient at a flow rate of 0.45 mL/min. A peptide nucleic acid blocking probe was designed to clamp the amplification of the host gene, which increased the amplification efficiency of genes with low copy numbers. Using the DHPLC assay with wild-type genomic, the assay could detect GC Gram positive bacteria and the bopyrid isopod (P. pandalicola). Therefore, the DHPLC assay is an effective tool for surveying parasitic dynamics in an estuarine ecosystem.
Kim, Ji-Young;Kim, Chi-Kyung;Ka, Jong-Ok;Min, Kyung-Hee;Park, Yong-Keun
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.24
no.6
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pp.657-663
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1996
Pseudomonas sp. P20 isolated from the polluted environment is capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl. The pcbABCD genes responsible for degradation of biphenyl and 4-chlorobiphenyl were cloned using pBluescript SK(+) from the chromosomal DNA of Pseudomonas sp. P20 to construct pCK1 and pCK102, harbouring pcbABCD and pcbCD, respectively. The 2, 3-DHBP dioxygenase gene, pcbC, was cloned again from pCK102 by using pKT230 which is known as a shuttle vector and pKK1 hybrid plasmid was constructed. The E. coli KK1 transformant obtained by transforming the pKK1 into E. coli XL1-Blue showed 2, 3-DHBP dioxygenase activity. The specific 2, 3-DHBP dioxygenase activity of E. coli KK1 was similar to that of the E. coli CK102, but much higher than those of the natural isolates, Pseudomonas sp. DJ-12 and Pseudomonas sp. P20.
Pullorum disease affecting poultry is caused by Salmonella enterica serovar Pullorum and results in severe economic loss every year, especially in countries with a developing poultry industry. The pathogenesis of S. Pullorum is not yet well defined, as the specific virulence factors still need to be identified. Thus, to isolate specific DNA fragments belonging to S. Pullorum, this study used suppression subtractive hybridization. As such, the genome of the S. Pullorum C79-13 strain was subtracted from the genome of Salmonella enterica serovar Gallinarum 9 and Salmonella enterica serovar Enteritidis CMCC(B) 50041, respectively, resulting in the identification of 20 subtracted fragments. A sequence homology analysis then revealed three types of fragment: phage sequences, plasmid sequences, and sequences with an unknown function. As a result, several important virulence-related genes encoding the IpaJ protein, colicin Y, tailspike protein, excisionase, and Rhs protein were identified that may play a role in the pathogenesis of S. Pullorum.
pMB4 is a 2.4-kilobase plasmid of Staphylococcus aureus TR-1 that confers inducible resistance to the macrolide-lincosamide-streptogramin B(MLS) antibiotics. By subcloning studies, it was found that the MLS resistance determinant was located at 1.0Kb fragment between Sau3AI and TaqI sites. DNA sequence of the MLS resistant determinant, named ermC-4 was determined, and found to be highly homologous with that of ermC. Because the leader peptide sequence of ermC-4 was identical with that of ermC, the expression of the resistance gene is thought to be controlled by posttranscriptional attenuation in S. aureus TR-1.
Pseudomonns putida BCNU171 had the tolerant ability to several other organic solvents headed by toluene and xylene. Several mutants were made by mating of BCNUl71, pJFF350 to clarify the structure tolerance gene related. From this mutants the 7 of mutants related with toluene sensitive mutants were selected. pBCNUT-2, pBCNUT-4, pBCNUT-9 was transformed, and from this separated plasmid DNA sequences the gene having high homology was searched. In the case of toluene sensitive mutant it was todX gene (pBCNU4) related with cell membrane, ttgE gene (pBCNU2, pBCNU9) and ttgF gene (pBCNU2, pBCNU9).
A 6.9-kb DNA fragment including the minimal Bacillus pasteurii urease gene cluster was subcloned into a high-copy-number plasmid vector, pUC19, and the recombinant B. pasteurii urease was overexpressed in Escherichia coli. The recombinant urease was purified 25.9-fold by using combinations of anion-exchange and gel-filtration chromatography followed by Mono-Q chromatography on a FPLC. N-terminal peptide sequencing analyses revealed that two distinct smaller peptide bands resolved on a 10-18% gradient SDS-PAGE corresponded to UreA and UreB peptides, respectively. It was also shown that the ureB gene was translated from a GUG codon and the first methionine residue was post-translationally cleaved off. The native molecular weight of the recombinant urease was 176,000 and 2 nickel atoms were present per catalytic unit. pH stability studies of the purified enzyme showed that the recombinant Bacillus pasteurii urease is stable in alkaline pH range, which is similar to the enzyme of the evolutionarily related bacterium, Sporosarcina ureae.
As a research for developing biofertilizers, Klebsiella oxytoca, an associative nitrogen fixer in the rhizosphere of rice plant in the soil of paddy field, was subjected to molecular breeding. The results obtained were as followings. 1). By transforming pbIC71A, Nif A overproducing plasmid, into Klebsiella oxytoca NGl3, Klebsiell6f oxytoca SH3l, and Klebsiella oxytoca SH161, nitrogenase activities in the absence of nitrogen source in the medium were increased 6.4, 17.2, and 13.5 times, respectively, in comparison with the parent strains. 2). Nitrogenase activity of Klebgiella oxytoca NGl3, Klebsiella oxytoca SH3l, and Klebsiella oxytoca SH161 was completely repressed In the presence of 15mM NH4+. But, nitrogenase activities of Klebsiella oxytoca NGl3/PMC71A, Klebsiella oxytoca SH3l /PMC71A, and Klebsiella oxytoca SH 161/pMC714 harboring PMC71A, were 13.7%, 7.7%, and 6.2% of the nitrogenase activities in the absence of nitrogen source in the medium, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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