Mi-Jin Kim;Hyun Su Kang;Yong Ho Shin;Yong Chull Jeun
Research in Plant Disease
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v.29
no.4
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pp.433-439
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2023
Bacterial leaf blight in carrot is one of the most important diseases in the worldwide. In the past decade, its introduction into Korea is causing great concern due to the potential damage to carrot crops domestically. This bacterial disease is caused by Xanthomonas hortorum pv. carotae (Xhc). This study aimed to isolate and identify bacterial strains from the soil of carrot farms in Jeju Island. The bacterial isolates showing characteristics similar with those of Xhc were selected when cultured on artificial media. Through DNA sequencing and analysis based on NCBI data, some of the selected bacterial strains were identified as Xhc. Furthermore, the bacterial strains caused the typical symptom of bacterial leaf blight after inoculation on carrot leaves. The results of this study showed the potential establishment of Xhc in the soil of Jeju Island and it may be valuable data for establish a strategy preventing the domestic spread of carrot bacterial leaf blight in the future.
In this study, a new triplex real-time quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (tqRT-PCR) assay was developed for the rapid and differential detection of three feline viral pathogens including feline calicivirus (FCV), feline herpesvirus 1 (FHV-1), and influenza A virus (IAV) in a single reaction. The assay specifically amplified three targeted viral genes with a detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with intra- and inter-assay coefficients of variation of less than 1%. Based on the diagnostic results of the assay using 120 clinical samples obtained from cats with feline respiratory disease complex (FRDC)-suspected signs, the prevalence of FCV, FHV-1, or IAV was 43.3%, 22.5%, or 0%, respectively, indicating that the diagnostic sensitivity was comparable or superior to those of previously reported monoplex qRT-PCR/qPCR assays. The dual infection rate for FCV and FHV-1 was 8.3%. These results indicate that FCV and FHV-1 are widespread and that co-infection with FCV and FHV-1 frequently occur in the Korean cat population. The developed tqRT-PCR assay will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of these three bacterial pathogens, and the prevalence data for three feline viruses obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of FRDC in the current Korean cat population.
Carnation is considered to be one of the top three cutting flowers in the world, which is a main crop with 21 billion annual volume of manufacture. The four carnation items such as cuttings, seed, plant and unrooted cuttings are imported and exported. Viruses can be easily transmitted during vegetative propagation of carnation. Carnation necrotic fleck virus (CNFV) and Carnation ringspot virus (CRSV) are designated as Korea plant quarantine viruses and inspected. This study was aimed to develop specific primer sets for easy and rapid detection of CNFV and CRSV. Two RT-PCR primer sets were efficiently amplified 288 and 447 bp fragments for CNFV and 503 549 bp fragments for CRSV. Furthermore, developed nested primer sets make possible to high sensitive detection and verification. CNFV nested PCR primer sets all produced band of 147 bp and CRSV nested PCR primer sets did bands of 395 and 347 bp. In addition, plasmid inserted 6 sequences in amplicon were used as a positive control to improve inspection confidence. The successful application of PCR module newly developed in this study will be highly useful for detect of CNFV and CRSV for quarantine inspections.
Shin, Seung Won;Cha, Seung Bin;Lee, Won-Jung;Shin, Min-Kyoung;Jung, Myunghwan;Yoo, Anna;Jung, Byeng Yeal;Yoo, Han Sang
Korean Journal of Veterinary Research
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v.53
no.1
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pp.25-28
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2013
The aim of this study was to applicate and evaluate a SYBR Green real-time PCR for the specific detection of Salmonella spp. Specificity of the PCR method was confirmed with 48 Salmonella spp. and 5 non-Salmonella strains using invA gene primer. The average threshold cycle ($C_T$) of Salmonella spp. was $11.83{\pm}0.78$ while non-Salmonella spp. was $30.86{\pm}1.19$. Correlation coefficients of standard curves constructed using $C_T$ versus copy number of Salmonella Enteritidis ATCC 13076 showed good linearity ($R^2=0.993$; slope = 3.563). Minimum level of detection with the method was > $10^2$ colony forming units (CFU)/mL. These results suggested that the SYBR Green real-time PCR might be applicable for the specific detection of Salmonella spp. isolates.
Kim, Jeong-Soo;Lee, Su-Heon;Choi, Hong-Soo;Cho, Jeom-Deog;Noh, Tai-Whan;Kim, Jin-Young
Research in Plant Disease
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v.15
no.2
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pp.57-62
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2009
Genetic diagnosis method of Virion Captured (VC)/RT-PCR for Rice stripe virus (RSV) and Rice black-streaked dwarf virus (RBSDV), Korean major rice viruses transmitted by small brown plant hopper, Laodelphax striatellus, was developed. Virion extraction buffer for rice plant was 0.01M potassium phosphate buffer, pH 7.0, containing 0.5% sodium sulfite. However, the extraction buffer for L. striatellus was 0.01M potassium phosphate buffer, pH 7.0, containing 0.5% sodium sulfite and 2% polyvinylpyrrolidone wt 40,000 (PVP-40). Specific primers for detection of RSV and RBSDV were selected for VC/RT-PCR method. The specific primers were used as a duplex primer to detect viruliferous small brown plant hopper collected from Gimpo, Pyeongtaek and Siheung areas in Gyeonggi province. The genetic diagnosis methods of single and duplex VC/RT-PCR for RSV and RBSDV could be used easily and economically, especially on the diagnosis of L. striatellus. The rate of viruliferous insect (RVI) for RSV was compared with ELISA and VC/RT-PCR for L. striatellus collected from fields. RVI by ELISA was same as 9.2% with RVI by VC/RT-PCR. However, there were some different detection results between the methods. It could be suggested that there is a possibility of serological and/or genomic differences among RSV isolates. The portion of RVI detected simultaneously by ELISA and VC/RT-PCR was 71.0%, and the detection rate from VC/RT-PCR was higher as 3.2% than that from ELISA, which had a reason of simultaneous detection ability both RSV and RBSDV of VC/RT-PCR.
A rapid, user-friendly and simple immune-chromatographic dipstick kit named 'rapid immune-gold strip' (RIGS) kit was developed in a novel single strip format to detect on-site detection of Tomato spotted wilt virus (TSWV). Immunoglobulin G (IgG) from polyclonal antisera raised in rabbits against TSWV was purified through protein-A affinity chromatography and then the purified TSWV-IgG was conjugated to colloidal gold nano-particles which served as a test line on nitrocellulose membrane. Protein A that non-specifically binds to TSWV antibody was used as a control line on the same strip. The diagnosis process with the TSWV-RIGS involves simply grinding the suspect plant sample in a bag that contains the extraction buffer and inserting the strip the bag. Results can be seen in 2-5 minutes. The flow of the complexes of gold particles coated with TSWV-IgG and a crude sap from TSWV-infected pepper, tobacco and tomato plants resulted in intensive color formed on the test lines proportional to the concentrations of TSWV. The RIGS-TSWV kit did not show any cross-reactions against other tomato-infecting viruses unrelated to TSWV. These results indicate that the TSWV-RIGS kit is highly sensitive and is not required for laboratory training and experience prior to testing. The TSWV-RIGS kit is suitable for on-site detection of suspect TSWV-infected plants as well as for laboratory diagnosis.
A PCR method that combines biological and enzymatic amplification of PCR targets was developed for the detection of Pseudomonas syringae pv. actinidiae on kiwifruit leaves. A nested PCR was performed with primers designes from the coding sequence of the cfl gene, which is involved in production of the phytotoxin coronatine. The first and second primer sets efficiently amplified expected 665 and 310-bp fragments, respectively. With two successive amplifications, as few as 20 CFU/ml of P. syringae pv. actinidiae could be detected on ethidium bromide-stained agarose gel. Leaf samples were collected from 4 kiwifruit trees showing yellow halo spots on leaves and incubated in pepton-sucrose broth for 12 h at $16^{\circ}$C before PCR amplification. Positive detection was obtained with one sample, which was proved as a diseased plant in the next spring.
Volatiles exist ubiquitously in nature. Volatile compounds produced by plants and microorganisms confer inter-kingdom and intra-kingdom communications. Autoinducer signaling molecules from contact-based chemical communication, such as bacterial quorum sensing, are relayed through short distances. By contrast, biogenic volatiles derived from plant-microbe interactions generate long-distance (>20 cm) alarm signals for sensing harmful microorganisms. In this review, we discuss prior work on volatile compound-mediated diagnosis of plant diseases, and the use of volatile packaging and dispensing approaches for the biological control of fungi, bacteria, and viruses. In this regard, recent developments on technologies to analyze and detect microbial volatile compounds are introduced. Furthermore, we survey the chemical encapsulation, slow-release, and bio-nano techniques for volatile formulation and delivery that are expected to overcome limitations in the application of biogenic volatiles to modern agriculture. Collectively, technological advances in volatile compound detection, packaging, and delivery provide great potential for the implementation of ecologically-sound plant disease management strategies. We hope that this review will help farmers and young scientists understand the nature of microbial volatile compounds, and shift paradigms on disease diagnosis and management to aromatic (volatile-based) agriculture.
Pseudomonas syringae pv. actinidiae is the causative agent of bacterial canker in kiwifruit. A nested PCR detection method that uses primers designed from the cfl gene, involved in production of the phytotoxin coronatine, was applied on soil samples. These primers yielded 665 and 310-bp fragments in consecutive PCR amplification step with DNA from soil inoculated with Korean strain of P. syringae pv. actinidiae. This system was applied to survey soil samples from a kiwifruit orchard destroyed by bacterial canker. A specific 310-bp PCR product was obtained from all six samples of soil tested.
Papaya ringspot virus (PRSV) causes the most widespread and devastating disease in papaya. Isolates of PRSV originating from different geographical regions in south India were collected and maintained on natural host papaya. The entire coat protein (CP) gene of Papaya ringspot virus-P biotype (PRSV-P) was amplified by RTPCR. The amplicon was inserted into pGEM-T vector, sequenced and sub cloned into a bacterial expression vector pRSET-A using a directional cloning strategy. The PRSV coat protein was over-expressed as a fusion protein in Escherichia coli. SDS-PAGE gel revealed that CP expressed as a ~40 kDa protein. The recombinant coat protein (rCP) fused with 6x His-tag was purified from E.coli using Ni-NTA resin. The antigenicity of the fusion protein was determined by western blot analysis using antibodies raised against purified PRSV. The purified rCP was used as an antigen to produce high titer PRSV specific polyclonal antiserum. The resulting antiserum was used to develop an immunocapture reverse transcription-polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) assay and compared its sensitivity levels with ELISA based assays for detection of PRSV isolates. IC-RT-PCR was shown to be the most sensitive test followed by dot-blot immunobinding assay (DBIA) and plate trapped ELISA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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