Park, Mi-Rung;Cho, Seong-Keun;Lee, Eun-Kyeong;Joo, Young-Kuk;Park, Young-Ho;Kim, Hyung-Joo;Do, Chang-Hee;Kim, Jin-Hoi
Proceedings of the KSAR Conference
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2004.06a
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pp.216-216
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2004
Genetically modified domestic animals have many potential applications ranging from basic research to production agriculture. One of the goals in transgenic animal production schemes is to reliably predict the expression pattern of the foreign gene. Establishing a method to screen genetically modified embryos for transgene expression before transfer to surrogates may improve the likelihood of producing offspring with the desired expressing pattern. (omitted)
Nucleotide metabolism in endothelium is variable between different species. Recent studies demonstrated that this variability could contribute coagulation dysfunction, even though organs of the alpha 1,3-galactosyltransferase gene knockout pig were transplanted into the primate. CD73 (ecto-5'-nucelotidase) is an enzyme at cell surface catalyzing the hydrolysis of adenosine triphosphate to adenosine, which plays role on a substance for anti-inflammatory and anti-coagulant. Thus, overexpression of CD73 in endothelial cells of the pig is considered as an approach to reduce coagulopathy. In this study, we constructed a human CD73 expression vector under control of porcine Icam2 promoter (pIcam2-hCD73), which is expressed specifically at endothelial cells, and of CMV promoter as a control (CMV-CD73). First, we transfected the CMV-CD73 vector into HEK293 cells, and then confirmed CD73 expression at cell surface by flow cytometry analysis. Next, we transfected the pIcma2-CD73 and CMV-CD73 vectors into primary porcine fibroblasts and endothelial cells. Consequence was that the pIcma2-CD73 vector was expressed only at the porcine endothelial cells, meaning that the pIcam2 promoter lead to endothelial cell-specific expression of CD73 in vitro. Finally, we nucleofected the pIcam2-hCD73 vector into passage 3 fibroblasts, and enforced hygromycin selection of 400mg/ml. We were able to obtain forty three colonies harboring pIcam2-CD73 to provide donor cells for transgenic cloned porcine production.
Lee, Gunsup;Park, Sang Hyoun;Lee, Haesun;Ji, Soo-Jeong;Lee, Joo Yung;Byun, Sung-June;Hwang, Seongsoo;Kim, Kyung Woon;Ock, Sun A;Oh, Keon Bong
Journal of Embryo Transfer
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v.32
no.3
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pp.73-79
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2017
Transplantation is considered to be a very useful approach to improve human welfare and to prolong life-span. Heterologous organ transplantation using pig organs which are similar to human beings and easy to make mass-production has known as one of the alternatives. To ensure potential usage of the pig organ for transplantation application, it is essentially required to generate transgenic pig modifying immuno-related genes. Previously, we reported production of heterozygous ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase (GalT) knock-out and human membrane cofactor protein (MCP) expressing pig ($GalT^{-MCP/+}$), which is enforced for suppression of hyperacute and acute immunological rejection. In this study, we reported generation of homozygous pig ($GalT^{-MCP/-MCP}$) by crossbreeding $GalT^{-MCP/+}$ pigs. Two female founders gave birth to six of $GalT^{-MCP/-MCP}$, and seven $GalT^{-MCP/+}$ pigs. We performed quantitative real-time PCR, western blot, and flow cytometry analyses to confirm GalT and MCP expression. We showed that fibroblasts of the $GalT^{-MCP/-MCP}$ pig do not express GalT and its product Gal antigen, while efficiently express MCP. We also showed no expression of GalT, otherwise expression of MCP at heart, kidney, liver and pancreas of transgenic pig. Taken together, we suggest that the $GalT^{-MCP/-MCP}$ pig is a useful candidate to apply xenotransplantation study.
Early cleavage is a reliable prognostic tool for successful embryo transfer in assisted reproduction because early cleaved embryo show better pregnancy rate after transfer. There for, preparation of good embryo recipient is important factor to optimize efficiency of pig cloning. The present study was performed to evaluate the effect of early cleavage on the in vivo development of cloned embryos and to analyze breed, parity and estrous synchrony to optimize recipient for pig cloning. In vitro matured porcine oocytes derived from local slaughterhouse and fibroblasts derived from miniature pig fetuses were used for somatic cell nuclear transfer (SCNT). Reconstructed embryos were transferred to recipient pigs on the same day of SCNT or after 1~2 days of in vitro culture for selecting early cleaved embryos. Breed, parity and date of standing estrous of recipients were recorded for analysis. After 25~35 days after embryo transfer pregnancy was diagnosed using ultrasonography, and pregnant recipients were monitored till delivery. Between purebred and crossbred, no significant difference was founded in both pregnancy and delivery rates. However, early cleaved embryos showed significantly higher pregnancy (46.2%) and delivery (12.8%) rates compared to non-selectively transferred group (24.8% and 4.5%, respectively). The results also showed that the recipients showing standing estrous on the same day of SCNT and less than 4 parities were most suitable for pig cloning.
To better define the relationship between dermal regeneration and wound contraction and scar formation, the effects of epidermal growth factor (EGF) loaded in collagen sponge matrix on the fibroblast cell proliferation rate and the dermal mechanical strength were investigated. Collagen sponges with acid-soluble fraction of pig skin were prepared and incorporated with EGF at 0, 4, and 8 $\mu$g/1.7 $cm^{2}$. Dermal fibroblasts were cultured to 80$\%$ confluence using DMEM, treated with the samples submerged, and the cell viability was estimated using MTT assay. A deep, $2^{nd}$ degree- burn of diameter 1 cm was prepared on the rabbit ear and the tested dressings were applied twice during the 15-day, post burn period. The processes of re-epithelialization and dermal regeneration were investigated until the complete wound closure day and histological analysis was performed with H-E staining. EGF increased the fibroblast cell proliferation rate. The histology showed well developed, weave-like collagen bundles and fibroblasts in EGF-treated wounds while open wounds showed irregular collagen bundles and impaired fibroblast growth. The breaking strength (944.1 $\pm$ 35.6 vs. 411.5 $\pm$ 57.0 Fmax, $gmm^{-2}$) and skin resilience (11.3 $\pm$ 1.4 vs. 6.5 $\pm$ 0.6 mJ/$mm^{2}$) were significantly increased with EGFtreated wounds as compared with open wounds, suggesting that EGF enhanced the dermal matrix formation and improved the wound mechanical strength. In conclusion, EGF-improved dermal matrix formation is related with a lower wound contraction rate. The impaired dermal regeneration observed in the open wounds could contribute to the formation of wound contraction and scar tissue development. An extraneous supply of EGF in the collagen dressing on deep, $2^{nd}$ degree-burns enhanced the dermal matrix formation.
Galactose-${\alpha}1,3$-galactose (${\alpha}1,3$-Gal) epitope is synthesized at a high concentration on the surface of pig cells by ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase gene (GGTA1). The ${\alpha}1,3$-Gal is responsible for hyperacute rejection in pig-to-human xenotransplantation. The generation of transgenic pigs as organ donors for humans is necessary to eliminate the GGTA1 gene that synthesize $Gal{\alpha}$(1,3)Gal. To prevent hyperacute graft rejection in pig-to-human xenotransplantation, previously, we developed ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase gene-knock-out somatic cell by homologous recombination. In this study, we established cell lines of ${\alpha}1,3$-GT knock-out expressing hDAF and hHT gene from minipig fibroblasts to apply somatic cell nuclear transfer. The hDAF and hHT mRNA were expressed in the knock-in somatic cells and ${\alpha}1,3$-GT mRNA was suppressed. However, the knock-in somatic cells were increased resistance to human serum-mediated cytolysis.
Park, K-W.;Yoo, J.Y.;Choi, K.M.;Yang, B.S.;Im, G.S.;Seol, J.G.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.22
no.1
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pp.20-25
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2009
Xenotransplantation of pig organs into humans is a potential solution for the shortage of donor organs for transplantation. However, multiple immune barriers preclude its clinical application. In particular, the initial type of rejection in xenotransplantation is an acute cellular rejection by host $CD8^+$ cytotoxic T lymphocyte (CTL) cells that react to donor major histocompatibility complex (MHC) class I. The human cytomegalovirus (HCMV) glycoprotein Unique Short (US) 2 specifically targets MHC class I heavy chains to relocate them from the endoplasmic reticulum (ER) membrane to the cytosol, where they are degraded by the proteasome. In this study we transfected the US2 gene into minipig fetal fibroblasts and established four US2 clonal cell lines. The integration of US2 into transgenic fetal cells was confirmed using PCR and Southern blot assay. The reduction of Swine Leukocyte Antigen (SLA)-I by US2 was also detected using Flow cytometry assay (FACS). The FACS analysis of the US2 clonal cell lines demonstrated a substantial reduction in SLA-I surface expression. The level (44% to 76%) of SLA-I expression in US2 clonal cell lines was decreased relative to the control. In cytotoxicity assay the rate of $CD8^+$ T cell-mediated cytotoxicity was significantly reduced to 23.8${\pm}$15.1% compared to the control (59.8${\pm}$8.4%, p<0.05). In conclusion, US2 can directly protect against $CD8^+$-mediated cell lysis. These results indicate that the expression of US2 in pig cells may provide a new approach to overcome the CTL-mediated immune rejection in xenotransplantation.
This study was conduct to compare the efficacy to produce male and female somatic cloned piglets. Maturation of porcine COCs was accomplished by incubation in NCSU-23 medium supplemented with 0.6 mM cysteine, 10% porcine follicular fluid, 1mM dibutyryl cyclic adenosine monophosphate (dbc-AMP, Sigma, USA), and 0.1 IU/ml human menopausal gonadotrophin (hMG, Teikokuzoki, Japan) for 20h and then cultured without dbcAMP and hMG for another 18 to 24 h. Female and male fetal cells were isolated from each fetus, cultured in ES-DMEM medium containing 10% FCS. Enucleated oocytes were fused with fetal fibroblasts (passage 4 to 15). Reconstructed embryos were cultured in NCSU-23 with 4 mg/ml BSA under mineral oil at 39$^{\circ}C$ in 5% $CO_2$ in air. A total of 12,328 nuclear-transferred embryos (1- to 4-cell stage) were surgically transferred into 69 surrogate gilts. Three recipients aborted during the period of conception. Three gilts delivered eleven female piglets, and five recipients gave rise to birth 22 male piglets. The average birth weigh of the cloned piglets was 1.52 kg (1.38~1.83 kg) in female piglets and 0.84 kg (0.45~1.25 kg) in male piglets. Alive cloned pigs was seven in female piglets (63.6%) and four in male piglets (18.2%). The other two recipients is ongoing. This study suggests that female-derived fetal cell as a nuclear donor has more capability on production of cloned piglets than male.
MicroRNAs (miRNAs) are approximately 22 nucleotides of small noncoding RNAs that control gene expression at the posttranscriptional level through translational inhibition and destabilization of their target mRNAs. The miRNAs are phylogenetically conserved and have been shown to be instrumental in a wide variety of key biological processes including cell cycle regulation, apoptosis, metabolism, imprinting, and differentiation. Recently, a paper has shown that expression of the miRNA-302/367 cluster expressed abundantly in mouse and human embryonic stem cells (ESCs) can directly reprogram mouse and human somatic cells to induced pluripotent stem cells (iPSCs) efficiently in the absence of any of the four factors, Oct4, Sox2, c-Myc, and Klf4. To apply this efficient method to porcine, we analyzed porcine genomic sequence containing predicted porcine miRNA-302/367 cluster through ENSEMBL database, generated a non-replicative episomal vector system including miRNA-302/367 cluster originated from porcine embryonic fibroblasts (PEF), and tried to make porcine iPSCs by transfection of the miRNA-302/367 cluster. Colonies expressing EGFP and forming compact shape were found, but they were not established as iPSC lines. Our data in this study show that pig miRNA-302/367 cluster could not satisfy requirement of PEF reprogramming conditions for pluripotency. To make pig iPSC lines by miRNA, further studies on the role of miRNAs in pluripotency and new trials of transfection with conventional reprogramming factors are needed.
The objective of this study was to investigate the effects of implanted chitosan applied to surgically created wound in pigs. Six healthy $2{\sim}3$ months old Landrace and Yorkshire mixed breeds of both genders were used. A 2 cm straight skin incision was made and undermined skin ($2{\times}2cm$) over on the each pig's both sides of dorsal midline at 0, 7. 14 and 18 days. One wound (left side) was implanted 0.4 mg of cotton type chitosan and other wound was treated saline (3 ml). Each wound was closed with two interrupted suture of 2-0 sutures. The wounds created at 18, 14.7 and 0 days were named post-wounding day (PWD) 3, 7, 14 and 21, respectively. At 21 days after initial wounding, each wound was taken for histological observations. Reepithelialization tended to be greater in the chitosan group than in the control group at PWD 3 and 14. Granulation tissue formation did not show especial differences in two groups. Number of inflammatory cells was lesser statistically in level in the chitosan group than those in the control group at 21 days after wounding (p<0.05). Fibroblasts and neovasculature tended to be greater in the chitosan group than in the control group at PWD 3 and 7, and tended to be lesser in the chitosan group than in the control group at PWD 14 and 21. Collagen and fibrin were observed to be evenly distributed around the wound in the chitosan group. But collagen and fibrin were observed to be converged along the wound in the control group.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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