Equine chorionic gonadotropin (eCG), produced by the endometrial cups of the placenta after the first trimester, is a specific glycoprotein that displays dual luteinizing hormone (LH)-like and follicle-stimulating hormone (FSH)-like effects in non-equid species. However, in equidaes, eCG exhibits only LH-like activity. To identify the specific biological functions of glycosylated sites in eCG, we constructed the following site mutants of N- and O-linked glycosylation: eCGβ/αΔ56, substitution of α-subunit56 N-linked glycosylation site; eCGβ-D/α, deletion of the O-linked glycosylation sites at the β-subunit, and eCGβ-D/αΔ56, double mutant. We produced recombinant eCG (rec-eCG) proteins in Chinese hamster ovary suspension (CHO-S) cells. We examined the biological activity of rec-eCG proteins in CHO-K1 cells expressing the eLH/CG receptor and found that signal transduction activities of deglycosylated mutants remarkably decreased. The EC50 levels of eCGβ/αΔ56, eCGβ-D/α, and eCGβ-D/αΔ56 mutants decreased by 2.1-, 5.6-, and 3.4-fold, respectively, compared to that of wild-type eCG. The Rmax values of the mutants were 56%-80% those of wild-type eCG (141.9 nmol/104 cells). Our results indicate that the biological activity of eCG is greatly affected by the removal of N- and O-linked glycosylation sites in cells expressing eLH/CGR. These results provide important information on rec-eCG in the regulation of specific glycosylation sites and improve our understanding of the specific biological activity of rec-eCG glycosylation sites in equidaes.
Solakyildirim, Kemal;Li, Lingyun;Linhardt, Robert J.
Mass Spectrometry Letters
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제9권3호
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pp.67-72
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2018
Alkaline phosphatase (AP) is a membrane-bound glycoprotein that is widely distributed in the plasma membrane of cells of various organs and also found in many organisms from bacteria to humans. The complete amino acid sequence and three-dimensional structure of human placental alkaline phosphatase have been reported. Based on the literature data, AP consists of two presumptive glycosylation sites, at Asn-144 and Asn-271. However, it only contains a single occupied N-linked glycosylation site and no occupied O-linked glycosylation sites. Hydrophilic interaction chromatography (HILIC) has been primarily employed for the characterization of the glycan structures derived from glycoproteins. N-glycan structures from human placental alkaline phosphatase (PLAP) were investigated using HILIC-Orbitrap MS, and subsequent data processing and glycan assignment software. 16 structures including 10 sialylated N-glycans were identified from PLAP.
This study was to investigate the effects of maternal diabetes on the lung tissue of the fetal rat using lectin histochemistry and electron microscope technique. Maternal diabetes was induced by intraperitoneal injection of streptozotocin (75 mg/kg the body weight) into pregnant Sprague-Dawley rats on the 7th day of gestation. Fetuses of streptozotocin induced diabetic rats exhibited delayed lung maturation and reduced air space. In lectin histochemistry, the binding of Maclura pomifera (MPA) to fetal lungs from diabetic mothers was reduced, but no significant changes in the bindings of Concanavalin A (Con A), Wheat germ agglutinin (WGA), Ricinus communis I (RCA I) and Griffonia simplicifolia (GSI-$B_4$) were noted. Because the MPA has affinity to terminal N-acetyl-D-galactosamine residues constantly linked O-glycosidically to serine or threonine, the present findings may indicates that maternal diabetes interfere with the processes of O-linked glycosylation in fetal rat lung.
Protein glycosylation is the most common posttranslational modification in mammalian cells. Aberrant protein glycosylation has been reported in various diseases, including cancer. We identified and quantified the glycan structures of O-linked glycoprotein from cholangiocarcinoma (CCA) cell lines from different histological types and compared their profiles by nanospray ionization-linear ion trap mass spectrometry (NSI-$MS^n$). Five human CCA cell lines, K100, M055, M139, M213 and M214 were characterized. The results showed that the O-linked glycans of the CCA cell lines comprised tri- to hexa-saccharides with terminal galactose and sialic acids: NeuAc1Gal1GalNAc1, Gal2GlcNAc1GalNAc1, NeuAc2Gal1GalNAc1 NeuAc1Gal2GlcNAc1GalNAc1 and NeuAc2Gal2GlcNAc1GalNAc1 All five CCA cell lines showed a similar glycan pattern, but with differences in their quantities. NeuAc1Gal1GalNAc1 proved to be the most abundant structure in poorly differentiated adenocarcinoma (K100; 57.1%), moderately differentiated adenocarcinoma (M055; 42.6%) and squamous cell carcinoma (M139; 43.0%), while moderately to poorly differentiated adenocarcinoma (M214; 40.1%) and adenosquamous cell carcinoma (M213; 34.7%) appeared dominated by $NeuA_{c2}Gal_1GalNA_{c1}$. These results demonstrate differential expression of the O-linked glycans in the different histological types of CCA. All five CCA cell lines have abundant terminal sialic acid (NeuAc) O-linked glycans, suggesting an important role for sialic acid in cancer cells. Our structural analyses of glycans may provide important information regarding physiology of disease-related glycoproteins in CCA.
O-linked N-acetylglucosamine (O-GlcNAc) is an abundant posttranslationally modified compound in eukaryotic cells. Human O-GlcNAc transferase (OGT) was produced as a maltose binding protein (MBP) fusion protein, which showed significant catalytic activity to modify recombinant Sp1, transcription factor. To facilitate the production of O-GlcNAc modified proteins, instead of using the tedious in vitro glycosylation reaction or expression in eukaryotic cells, a MBP-fusion OGT expression vector (pACYC184-MBPOGT) was constructed using pACYC184 plasmid, which could coexist with general prokaryotic expression vectors containing ColE1 origin. By cotransforming pACYC184-MBPOGT and pGEX-2T vectors into Escherichia coli BL21, intracellular O- GlcNAcylated proteins could be obtained by a simple purification procedure. It is expected that this may be a useful tool for production of O-GlcNAc modified proteins.
Sclerotinia sclerotiorum fungus has three endoxylanases induced by wheat bran. In the first part, a partial xylanase sequence gene (90 bp) was isolated by PCR corresponding to catalytic domains (${\beta}5$ and ${\beta}6$ strands of this protein). The high homology of this sequence with xylanase of Botryotinia fuckeliana has permitted in the second part to amplify the XYN1 gene. Sequence analysis of DNA and cDNA revealed an ORF of 746 bp interrupted by a 65 bp intron, thus encoding a predicted protein of 226 amino acids. The mature enzyme (20.06 kDa), is coded by 188 amino acid (pI 9.26). XYN1 belongs to G/11 glycosyl hydrolases family with a conserved catalytic domain containing $E_{86}$ and $E_{178}$ residues. Bioinformatics analysis revealed that there was no Asn-X-Ser/Thr motif required for N-linked glycosylation in the deduced sequence however, five O-glycosylation sites could intervene in the different folding of xylanses isoforms and in their secretary pathway.
The pathogenic free-living amoeba Naegleria fowleri causes primary amoebic meningoencephalitis, a fatal infection, by penetrating the nasal mucosa and migrating to the brain via the olfactory nerves. N. fowleri can induce host cell death via lytic necrosis. Similar to phosphorylation, O-linked β-N-acetylglucosamine (O-GlcNAc) glycosylation (O-GlcNAcylation) is involved in various cell-signaling processes, including apoptosis and proliferation, with O-GlcNAc addition and removal regulated by O-GlcNAc transferase and O-GlcNAcase (OGA), respectively. However, the detailed mechanism of host cell death induced by N. fowleri is unknown. In this study, we investigated whether N. fowleri can induce the modulation of O-GlcNAcylated proteins during cell death in Jurkat T cells. Co-incubation with live N. fowleri trophozoites increased DNA fragmentation. In addition, incubation with N. fowleri induced a dramatic reduction in O-GlcNAcylated protein levels in 30 min. Moreover, pretreatment of Jurkat T cells with the OGA inhibitor PUGNAc prevented N. fowleri-induced O-deGlcNAcylation and DNA fragmentation. These results suggest that O-deGlcNAcylation is an important signaling process that occurs during Jurkat T cell death induced by N. fowleri.
당사슬은 당단백질과 단백당에 결합하며, 일반적으로 세포의 최외각 표면에서 발견된다. O-연결 당사슬과 N-연결 당사슬은 진핵세포에 흔히 존재하는 당사슬이며 원핵세포에서도 발견된다. 세포 표면에 존재하는 당사슬과 주변에 동일한 종류의 세포막에 노출된 당사슬 결합 단백질과의 상호작용, 전혀 다른 종류의 세포와의 상호작용, 또는 질병 유발 균주와 바이러스와의 상호작용은 생물학 및 의생명과학에 있어서 질병원인물질 인식, 세포 이동, 세포간의 결합, 발생, 그리고 감염 등과 같은 과정에 있어서 매우 중요한 역할을 담당한다. 각종 질병 상황에서의 당사슬의 프로파일의 변화와 역할은 당사슬이 질병 진단 마커로 활용할 가능성을 제시한다. 이에 더하여, 기존의 많은 선행 연구들에서, 재조합 단백질 의약품에 결합된 당사슬은 재조합 단백질 의약품의 용해도, 약동역학, 약물 활성, 생체활성, 안전성을 적절하게 유지하고 결정짓는데 중요한 요소가 된다. 게다가, 암의 발생과 진전의 영향으로 인해 당사슬 가지 끝에 결합하는 시알릭산의 당질화 양상의 변화는 세포와 세포간 상호작용, 인식 그리고 면역 반응에 매우 중요한 요소로 작용한다. 본 총설에서는 당사슬의 생물학적인 기능에 대한 전반적인 이해를 돕고, 당질화 현상과 질병 진단 및 질병 치료 기법간의 상호 연관성을 간략히 설명하고자 한다. 추가적으로 혈액 내 혈청에 존재하는 당사슬의 프로파일의 변화를 분석하는 대량효능검색 방법과 이로 인해 유도되는 생화학적 작용 기작을 살펴보았다.
A leucine aminopeptidase has been isolated from the culture medium of the soil fungus, Aspergillus flavus. The enzyme was found to be a glycoprotein, as judged by electrophoresis analysis and the subsequent staining by the periodic acid-Schiff's reagent. Carbohydrate moieties could be cleaved by N-glycosidase, but not by O-glycosidase, indicating that the glucans are linked to the asparagine residue in the protein. Removal of N-glucans was observed without prior denaturation of the protein, implying that the N-glycosidic linkage is exposed and accessible to glycosidase. When the activity of native or deglycosylated enzyme was measured in the presence of various metal ions, removal of carbohydrates increased the aminopeptidase activity of the enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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