Experiments were carried out to determine the role of Raf-1 kinase in the development of drug resistance to paclitaxel in v-H-ras transformed NIH 3T3 fibroblasts (Ras-NIH 3T3). We established a multidrug-resistant cell line (Ras-NIH 3T3/Mdr) from Ras-NIH 3T3 cells by stepwise increases in paclitaxel. Drug sensitivity assays indicated that the $IC_{50}$ value for drug-resistant Ras-NIH 3T3/Mdr cells was more than 1 ${\mu}M$ paclitaxel, 10- or more-fold higher than for the parental Ras-NIH 3T3 cells. Western blot and RT-PCR analysis showed that the drug efflux pump a P-glycoprotein were highly expressed in Ras-NIH 3T3/Mdr cells, while not being detectable in Ras-NIH 3T3 cells. Additionally, verapamil, which appears to inhibit drug efflux by acting as a substrate for P-glycoprotein, completely reversed resistance to paclitaxel in Ras-NIH 3T3/Mdr cell line, indicating that resistance to paclitaxel is associated with overexpression of the multidrug resistance gene. Interestingly, Ras-NIH 3T3/Mdr cells have higher basal Raf-1 activity compared to Ras-NIH 3T3 cells. Unexpectedly, however, the colocalization of Raf-1 and its negative regulator Spry2 was less observed in cytoplasm of Ras-NIH 3T3/Mdr cells due to translocation of Spry2 around the nucleus in the perinuclear zone, implying that Raf-1 may be released from negative feedback inhibition by interacting with Spry2. We also showed that shRNA-mediated knockdown of Raf-1 caused a moderate increase in cell susceptibility to paclitaxel. Thus, the results presented here suggest that a Raf-1-dependent pathway plays an important role in the development of acquired drug-resistance.
Recently, we reported that defective autophagy may contribute to the inhibition of the growth in response to PP2 (4-amino-5-(4-chlorophenyl)-7-(t-butyl)pyrazolo[3,4-d]pyrimidine), a selective SFK inhibitor, in multidrug-resistant v-Ha-ras-transformed NIH 3T3 cells (Ras-NIH 3T3/Mdr). In this study, we demonstrated that PP2 induces LC3 conversion via a mechanism that is uncoupled from autophagy and increases apoptosis in Ras-NIH 3T3/Mdr cells. PP2 preferentially induced autophagy in Ras-NIH 3T3 cells rather than in Ras-NIH 3T3/Mdr cells as determined by LC3-I to LC3-II conversion and GFP-LC3 fluorescence microscopy. Beclin 1 knockdown experiments showed that, regardless of drug resistance, PP2 induces autophagy via a Beclin 1-dependent mechanism. PP2 induced a conformational change in Beclin 1, resulting in the enhancement of the pro-autophagic activity of Beclin 1, in Ras-NIH 3T3 cells. Further, PI3K inhibition induced by wortmannin caused a significant increase in apoptosis in Ras-NIH 3T3 cells, as demonstrated by flow cytometric analysis of Annexin V staining, implying that autophagy inhibition through PI3K increases apoptosis in response to PP2 in Ras-NIH 3T3 cells. However, despite the fact that wortmannin abrogates PP2-induced GFP-LC3 punctae formation, some LC3 conversion remains in Ras-NIH 3T3/Mdr cells, suggesting that LC3 conversion may occur in an autophagy-independent manner. Taken together, these results suggest that PP2 induces LC3 conversion independent of PI3K, concomitant with the uncoupling of LC3 conversion from autophagy, in multidrug-resistant cells.
The plasmid pKOneo, containing SV40 transcriptional promoter, has been used in the mouse tumorigenicity assay for oncogene studies. This assay employs a cotransfection of NIG3T3 fibroblast cells with the desired DNA and the plasmid pKOneo. This oncogene assay, however, has been speculated due to the SV40 transcriptional promoter in the plasmid pKOneo. This research was designed to investigate if the plasmid pKOneo alone is capable of transforming NiH3T3 fibroblast cells. The NIH3T3 subclones were established after the NIH3T3 cells were transfected with the plasmid pKOneo alone. The estabilished NIH3T3 subclones, containing the exogeneous plasmid pKOneo in their chromosomes, were examined for their expression of transformation-associated parameters. The results indicate that this plasmid pKOneo alone has positive effects on transformation of NIH3T3 cells after integration into cellular chromosomes.
Dynamin plays a key role in the scission event common to various types of endocytosis. It has been previously reported that the SH3 domain-mediated association of Grb2 with dynamin-2 was dominantly found in Ras transformed cells. However, whether this association results from the increased expression of dynamin-2 and Grb2 in Ras transformed cells or not is still unknown. So in this study we first analyzed the expression levels of dynamin-2 and Grb2 and found that the expression of dynamin-2 protein was dramatically increased in Ras-transformed NIH3T3 (NIH3T3(Ras)) cells. Furthermore competitive PCR data revealed that the mRNA transcripts for dynamin-2 were increased about 100-fold in NIH3T3(Ras) compared to those of NIH3T3 cells. However, the protein level and mRNA transcript of Grb2 were not changed in these two cells. We also examined promoter activity of dynamin-2 in NIH3T3(Ras) cells and suggest the existence of Ras-responsive sequence in promoter region -300 to -200.
It has been known that ras signaling transduction leads to cell proliferation and migration including various adaptor molecules. Dynamin protein has been implicated in the formation of nascent vesicles in both the endocytic and secretory pathways. Dynamin was classified into three isoforms: dynamin I is only expressed in neuronal tissue, dynamin II is expressed ubiquitously in all tissue but that of dynamin III is confined to testis. We have reported in previous study that Grb2, binding to ras, was associated with dynamin II in NIH3T3 cells. Therefore we have tried to identify the relative expression of dynamin II according to overexpressed ras protein in ras oncogene transfected cells (NIH3T3 (ras)). For the detection of differential expression of dynamin II, we have used immunofluorescent staining and western blot methods in NIH3T3 and NIH3T3 (ras) cells. Next we have described the morphological differences between NIH3T3 and NIH3T3 (ras) cells using SEM and TEM. From these experiments dynamin II was highly expressed in NIH3T3 (ras) cells. NIH3T3 cells was transformed to more spindle shape with many cell process by transfection of ras oncogene. Moreover dynamin II was more concentrated in endocytotic membrane of the NIH3T3 (ras) cells compared to that of NIH3T3 cells. The present results suggested that dynamin II may involve the intermediate messenger in Ras signaling transduction pathway.
Over-expression of phospholipase D (PLD) 1 or PLD2 down-regulated CKII activity in NIH3T3 cells. The same results were found with catalytically inactive mutants of PLD isozymes, indicating that the catalytic activity of PLD is not required for PLD-mediated CKII inhibition. Consistent with this, 1-butanol did not alter CKII activity. The reduction in CKII activity in PLD-over-expressing NIH3T3 cells was due to reduced protein level, but not mRNA level, of the $CKII{\beta}$ subunit. This PLD-induced $CKII{\beta}$ degradation was mediated by ubiquitin-proteasome machinery, but MAP kinase and mTOR were not involved in $CKII{\beta}$ degradation. PLD isozymes interacted with the $CKII{\beta}$ subunit. Immunocytochemical staining revealed that PLD and $CKII{\beta}$ colocalize in the cytoplasm of NIH3T3 cells, especially in the perinuclear region. PLD binding to $CKII{\beta}$ inhibited $CKII{\beta}$ autophosphorylation, which is known to be important for $CKII{\beta}$ stability. In summary, the current data indicate that PLD isozymes can down-regulate CKII activity through the acceleration of $CKII{\beta}$ degradation by ubiquitin-proteasome machinery.
In this study we have investigated the effect of Caesalpina sappann L. extracts on the apoptosis in NIH3T3 cells exposed to methylmethan sulfonate (MMS), an alkylating agent. MTT assay study showed that Caesalpina sappan L. extracts potentiate the MMS-induced viability. Cell morphology studies, acridine orange (AO) staining, and DNA fragmentation analysis indicated that the postincubation of Caesalpina sappan L. extracts increase the nuclear condensation of MMS-induced apoptotosis. These results suggest that Caesalpina sampan L. extracts contain components potentiating MMS-induced apoptosis of NIH3T3 cells.
Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2002.05a
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pp.81-81
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2002
The recent development of cDNA microarray or cDNA chip technology has made it possible to analyze the expression of thousands of genes at once. In present study, we made radioresistant clones (#1 and #4) from NIH3T3 cells which are not tumorigenic and we identified 4 genes using microarray system, cdk6, cdc25B, mdm-2 and nidogene, which were altered in radiaiton resistanct NIH3T3 cells.(omitted)
Kim, Su-Jung;Kim, Hong-Gyum;Lim, Hye-Won;Park, Eun-Hee;Lim, Chang-Jin
Molecules and Cells
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v.19
no.1
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pp.131-136
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2005
The ETV6-NTRK3 gene fusion, first identified in the chromosomal translocation in congenital fibrosarcoma, encodes a chimeric protein tyrosine kinase with potent transforming activity. ETV6-NTRK3-dependent transformation involves the joint action of NTRK3 signaling pathways, and aberrant cell cycle progression resulting from activation of Mek1 and Akt. The level of glutathione (GSH) was found to be markedly increased in ETV6-NTRK3-transformed NIH3T3 cells. The activities of the two GSH biosynthetic enzymes as well as of glutathione peroxidase, together with their mRNAs, were also higher in the transformed cells. The transformed cells were able to grow in the presence of GSH-depleting agents, whereas the control cells were not. L-Buthionine-(S,R)-sulfoximine (BSO) inhibited activation of Mek1 and Akt in the transformed NIH3T3 cells. These observations imply that up-regulation of GSH biosynthesis plays a central role in ETV6-NTRK3-induced transformation.
Park, Sang-Rye;Kim, Young-Min;Choi, Byul-Bora;Kim, Ji-Young
Journal of Korean society of Dental Hygiene
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v.15
no.4
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pp.719-725
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2015
Objectives: The purpose of this study was to determine the toxic effects of sodium lauryl sulfate(SLS) in human keratinocyte HaCaT cells and mouse fibroblast NIH-3T3 cells. Methods: The effect of sodium lauryl sulfate(SLS) cell viability and proliferation were determined by WST-1 assay and changes shape of nucleus were evaluated by Hoechst staining under fluorescence microscopy. Additionally, observation of cell morphological changes under light microscopy. Results: SLS induced cytotoxicity and a marked apoptosis in both HaCaT and NIH-3T3 cell lines. With the result of the WST-1 assay, SLS induced the cytotoxicity of 0.005% and 0.0075%, 0.01% SLS for 24 h after HaCaT and NIH-3T3 cells in time and dose-dependent manner(p<0.005). SLS inhibited cell growth and caused apoptosis as evidenced by nuclear fragmentation and condensation. Thus, determination of the morphological changes to define apoptosis was visualized using inverted phase contrast microscopy. Conclusions: SLS had toxicity of the human keratinocyte cells and mouse fibroblast cells and this study will provide the basic data for the development of proper SLS concentration in dentifrice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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