Liquid chromatography mass spectrometry is widely employed in proteomics studies. One of such instruments is the Liquid Chromatography (LC)-Matrix-assisted laser desorption ionisation (MALDI)-Time of flight (TOF) or LC-MALDI-TOF/TOF. In this study, this instrument was used to identify the membrane proteins of a protozoan parasite namely Entamoeba histolytica. It causes amoebiasis in human. The E. histolytica trophozoites were cultured prior to the membrane protein extraction using the conventional method, $ProteoPrep^{(R)}$ and $ProteoExtract^{(R)}$ kits. Then, the membrane protein extracts were trypticdigested and analysed by LC-MALDI-TOF/TOF. Approximately, 194 proteins were identified and 27.8% (54) were predicted as membrane proteins having 1 to 15 transmembrane regions and signal peptides by combining all three extraction methods. Also, this study has discovered 3 unique proteins as compared to our previous study which merit further investigation.
Membrane proteins are involved in many common diseases, including heart disease and cancer. In various disease states, such as cancer, abnormal signaling pathways that are related to the membrane proteins cause the cells to divide out of control and the expression of membrane proteins can be altered. Membrane proteins have the hydrophobic environment of a lipid bilayer, which makes an analysis of the membrane proteins notoriously difficult. Therefore, this study evaluated the efficacy of two different methods for optimal membrane protein extraction. High-speed centrifuge and reagent-based method with a -/+ filter aided sample preparation (FASP) were compared. As a result, the high-speed centrifuge method is quite effective in analyzing the mitochondrial inner membranes, while the reagent-based method is useful for endoplasmic reticulum membrane analysis. In addition, the function of the membrane proteins extracted from the two methods were analyzed using GeneGo software. GO processes showed that the endoplasmic reticulum-related responses had higher significance in the reagent-based method. An analysis of the process networks showed that one cluster in the high-speed centrifuge method and four clusters in the reagent-based method were visualized. In conclusion, the two methods are useful for the analysis of different subcellular membrane proteins, and are expected to assist in selecting the membrane protein extraction method by considering the target subcellular membrane proteins for study.
The objective of this study was to investigate technical methods for extraction of mucopolysachharide-protein containing chondroitin sulfate from keel cartilage of chickens. The chemical composition of chicken keel cartilage was determined. For the preparation of mucopolysaccharide-protein from lyophilized chicken keel cartilage, hot water extraction and alcalase hydrolysis methods were examined. Results showed that the optimum condition of hot water extraction was incubation for 120 min with a yield of 40.09% and chondroitin sulfate content of 28.46%. For alcalase hydrolysis, the most effective condition was 2% alcalase in 10 volumes of distilled water for 120 min. The yield of hydrolysate was 75.87%, and chondroitin sulfate content was 26.61%. For further separation of chondroitin sulfate from the alcalase hydrolysate, which has a higher yield than that of hot water, 60% ethanol precipitation was performed. The yield of the ethanol precipitate was 21.41% and its chondroitin sulfate content was 46.31%. The hot water extract, alcalase hydrolysate and ethanol precipitate showed similar electrophoretic migration with standard chondroitin sulfate (chondroitin sulfate A), using cellulose acetate membrane electrophoresis. These results indicated that a significant amount of mucopolysaccharide-protein containing chondroitin sulfate could be acquired form chicken keel cartilage. Therefore, keel cartilage in chicken may provide an inexpensive source of chondroitin sulfate for commercial purposes.
Solubilization phenomena of a protein in a reversed micellar solution were investigated and a hollow fiber membrane extractor was tested for reversed micellar protein extraction equipment. Alkaline protease was used as a model protein compound and the reversed micellar solution was consisted of AOT and isooctane. It was found that protein solubilization was strongly influenced by ionic strength and pH. The distribution coefficient of the protease between the aqueous solution and the AOT/isooctane solution was also observed to be as high as 4.0 within the scope of this experiment. A hollow fiber membrane extractor was constructed and tested for the protein extraction. The overall mass transfer coefficient at a typical experimental condition of this study was observed to be $6.7{\times}10^{-5}cm/s$. It was also found that the mass transfer resistance on reversed micellar solution was the dominant resistance for the protein transfer.
Proceedings of the Membrane Society of Korea Conference
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2004.05a
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pp.179-182
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2004
This study reports the extraction behavior of $\alpha$-lactalbumin using bis(2-ethylhexyl) sulfosuccinate sodium (AOT) reverse micelles. Forward extraction of $\alpha$-lactalbumin in the reverse micellar organic phase from aqueous feed solutions was strongly dependent on the AOT concentration and the complete forward extraction of 0.03 mM $\alpha$-lactalbumin was successfully achieved at an AOT concentration of ca. 100 mM. A similar dependency of the forward extraction on the AOT concentration was obtained in isooctane, n-hexane, and n-octane systems. In the backward extraction from the micellar organic phase, the recovery of the protein as high as ca. 90% was obtained with pH control and/or salt addition.
Inonotus obliquus mushroom, which is a fungus belonging to Hymenochaetaceae family, is known to grow on birth trees in colder northern climates and to be a fungal parasite that draws nutrients out of living trees rather than from the ground. For the separation of protein-bound polysaccharide (PBP) from the culture broth and mycelium of Inonotus obliquus, three well known extraction methods namely hot water, ultrasound and microwave were used. The best extraction conditions to separate the PBP (64.94 mg/g) from mycelium by microwave were found to be for 1 hour and $150^{\circ}C$. The possibility for concentration of extracted PBP solution by using membrane was also studied. The extracted PBP solution was concentrated effectively by using an ultrafiltration membrane and the molecular weight cut off (MWCO) is 30 KDa. It was observed that a concentration by the ultrafiltration membrane is essential not only for the development of clean separation technology but also for enhanced production of PBP. As a result, we have shown that PBP in the final concentrated solution showed approximately 10 times higher than that in the crude solution by application of the developed separation systems. The separation yield of PBP was about 89.79% by gel filtration of purification steps and the purified product was confirmed to be PBP by using FT-IR.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.30
no.3
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pp.186-192
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2004
Purpose: Human tooth proteins are highly heterogeneous, comprising diverse proteins derived from a number of genes. The attempts to identify protein for activity of tooth matrix proteins have been defied by several factors. First, the amount of proteins within teeth is very small relative to many extracellular matrix proteins of other tissues. Second, the bioassay system is tedious and needed for long time. Therefore we tried to find easy techniques, which increase the product rate, and an assay of small proteins, with which amino acid sequence is possible without additional procedures. Materials and Methods: Total protein were extracted from 300 g enamel removed teeth and 600 g teeth with 4 mol/L guanidine HCl and purified by gel chromatography. Aliquot of proteins was implanted into muscle pouches in Sprague-Dawley rats for bioassay. By SDS-PAGE and membrane blotting, molecular weight of each protein was estimated and a partial amino acid sequence was obtained. Each fraction blotted on the membrane was cut out and inserted in rat ectopic model. Results: In dissociative method, total tooth proteins were obtained 1mg/ml from enamel removed teeth and 3.5 mg/ml from teeth. In SDS-PAGE, four clear bands at the sites corresponding to 66, 40, 20 and 18 kD. Especially The 66 kD band was clearly exhibited. Amino acid sequencing from tooth could be possible using PVDF membrane blotting technique. In amino acid sequencing, 66 kD protein was identified as albumin. Conclusion: Compared with conventional method for extraction of teeth protein and bioassay of proteins, the methods in this study were easy, time-saving and more productive technique. The matured tooth proteins omitting additional procedure of mechanical removal of enamel were simply analyzed using blotted PVDF membrane. This method seems to make a contribution as a technique for bioassay and amino acid sequencing of protein.
Lecithin-free egg yolk protein (EYP), the by-product of lecithin extraction from egg yolk, which is denatured with an organic solvent, would normally be discarded. In this study, the denatured protein was renatured with alkali, and hydrolyzed with Alcalase in order to utilize by-product. The hydrolysate was separated through a series of ultrafiltration membranes with molecular weight cut-off (MWOO) of 10, 5 and 1 kDa, and the antioxidative activities of the hydrolysates was investigated. The 5K hydrolysate, permeate from 5 kDa membrane, showed stronger antioxidative activity than 10 K and 1 K hydrolysate which were permeated from 10 kDa and 1 kDa membrane, in a linoleic acid autoxidation system. In addition, the optimum concentration of antioxidative activity for 5 K hydrolysate was 1%, and the activity was about 37% higher as compared with α-tocopherol. The synergistic effect was also increased by using the hydrolysates with α-tocopherol.
Defatted sesame flour is the by-products obtained after oil extracting process. Although this flour has high quality and quantity of protein its use is limited only for animal feed and fertilization. Sesame seeds contain antinutrients such as oxalate, phytate and phenol compounds and these compounds lower their nutritive value. recently, ultrafiltration(UF) has been used to concentrate protein from various food sources. This study was carried out to examine the effects of UF with different membrane pore size on the components of sesame protein concentrates including antinutrients and to compare with that of conventional acid-precipitated sesame protein isolate. The protein contents of sesame protein concentrates prepared by JF using 10K, 30K, 100K were 84.2%, 82.7%, 76.4% and the protein yields were 36.44%, 34.69, 31.43% and the protein contents was 88.7% Alkali extraction process at pH 9.0 followed by UF technique reduced oxalate and phytate content. There were 85% and 94% reduction of oxalate and phytate content by UF with membrane pore size of 100K daltons, respectively. However, the content of total phenol compounds was not reduced by this method. About 99% of calcium and 50% of zinc were removed by UF with membrane of 100K daltons. total essential amino acid contents of sesame protein concentrates prepared by UF were decreased slightly when compared with acid-precipitated sesame protein concentrate.
Journal of Korean Academy of Oral and Maxillofacial Radiology
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v.27
no.2
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pp.63-81
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1997
This study was performed in order to identify changes of the plasma membrane proteins in rat submandibular gland tumors induced by 7,12-dimethylbenz[a]anthracene [DMBA] and X-irradiation. Two kinds of tumor associated membrane proteins (protein A and B) were isolated with 3 M KCl extraction from rat submandibular gland tumors induced by DMBA and X-irradiation. To identify their antigenicities, immunoelectrophoresis and double immunodiffusion was carried out with various proteins extracted from liver, heart, skin and pancreas of adult rats and from embryonic liver, heart and skin. The rabbit antisera against the protein A did not cross-react with any of the proteins extracted from the above mentioned tissues, suggesting that protein A might be tumor specific antigen. However, the rabbit antisera against protein B was precipitated with proteins extracted from the liver of adult and embryonic rats. Polyacrylamide gel electrophoresis of these two proteins (A and B) showed that protein A was a dimer with molecular weights of 69,000 and 35,000 dalton, whereas protein B was a monomer with molecular weight of 50,000 dalton.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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