A novel Chryseobacterium sp. JK1 strain producing extracellular protease had been isolated from soil. The largest clear zones were observed on nutrient agar plates supplemented with 1% skim milk at $30-35^{\circ}C$ along with the growth of Chryseobacterium sp. JK1. The cell growth of JK1 strain was maximal at 24 h and maximum protease activity was reached up to 560 unit/ml at the stationary phase in liquid culture. In the presence of maltose, glucose or mannitol in Nutrient broth, cells grew well, but protease were produced poorly with lower production yields of 64-77% than in NB broth only. Similarly, the addition of skim milk, beef extract, yeast extract, malt extract or tryptone showed good growth and poor enzyme production. On the contrary, the addition of $(NH_4)_2HPO_4$ or $(NH_4)_2SO_4$ gave poor growth and good enzyme production of 121-146%.
In the present study, overexpression, purification, and characterization of Aeropyrum pernix K1 chaperonin B in E. coli were investigated. The chaperonin $\beta$-subunit gene (ApCpnB, 1,665 bp ORF) from the hyperthermophilic archaeon A. pernix K1 was amplified by PCR and subcloned into vector pET21a. The constructed pET21a-ApCpnB (6.9 kb) was transformed into E. coli BL21 Codonplus (DE3). The transformant cell successfully expressed ApCpnB, and the expression of ApCpnB (61.2 kDa) was identified through analysis of the fractions by SDS-PAGE (14% gel). The recombinant ApCpnB was purified to higher than 94% by using heat-shock treatment at $90^{\circ}C$ for 20 min and fast protein liquid chromatography on a HiTrap Q column step. The purified ApCpnB showed ATPase activity and its activity was dependent on temperature. In the presence of ATP, ApCpnB effectively protected citrate synthase (CS) and alcohol dehydrogenase (ADH) from thermal aggregation and inactivation at $43^{\circ}$ and $50^{\circ}$, respectively. Specifically, the activity of malate dehydrogenase (MDH) at $85^{\circ}$ was greatly stabilized by the addition of ApCpnB and ATP. Coexpression of pro-carboxypeptidase B (pro-CPB) and ApCpnB in E. coli BL21 Codonplus (DE3) had a marked effect on the yield of pro-CPB as a soluble and active form, speculating that ApCpnB facilitates the correct folding of pro-CPB. These results suggest that ApCpnB has both foldase and holdase activities and can be used as a powerful molecular machinery for the production of recombinant proteins as soluble and active forms in E. coli.
Massive reserves of methane ($CH_4$) remain unexplored as a feedstock for the production of liquid fuels and chemicals, mainly because of the lack of economically suitable and sustainable strategies for selective oxidation of $CH_4$ to methanol. The present study demonstrates the bioconversion of $CH_4$ to methanol mediated by Type I methanotrophs, such as Methylomicrobium album and Methylomicrobium alcaliphilum. Furthermore, immobilization of a Type II methanotroph, Methylosinus sporium, was carried out using different encapsulation methods, employing sodium-alginate (Na-alginate) and silica gel. The encapsulated cells demonstrated higher stability for methanol production. The optimal pH, temperature, and agitation rate were determined to be pH 7.0, $30^{\circ}C$, and 175 rpm, respectively, using inoculum (1.5 mg of dry cell mass/ml) and 20% of $CH_4$ as a feed. Under these conditions, maximum methanol production (3.43 and 3.73 mM) by the encapsulated cells was recorded. Even after six cycles of reuse, the Na-alginate and silica gel encapsulated cells retained 61.8% and 51.6% of their initial efficiency for methanol production, respectively, in comparison with the efficiency of 11.5% observed in the case of free cells. These results suggest that encapsulation of methanotrophs is a promising approach to improve the stability of methanol production.
In this study, we synthesized a glycosylated derivative of caffeic acid phenethyl ester (CAPE) using the amylosucrase from Deinococcus geothermalis with sucrose as a substrate and examined its solubility, chemical stability, and anti-inflammatory activity. Nuclear magnetic resonance spectroscopy showed that the resulting glycosylated CAPE (G-CAPE) was the new compound caffeic acid phenethyl ester-4-O-${\alpha}-{\small{D}}$-glucopyranoside. G-CAPE was 770 times more soluble than CAPE and highly stable in Dulbecco's modified Eagle's medium and buffered solutions, as estimated by its half-life. The glycosylation of CAPE did not significantly affect its anti-inflammatory activity, which was assessed by examining lipopolysaccharide-induced nitric oxide production and using a nuclear factor erythroid 2-related factor 2 reporter assay. Furthermore, a cellular uptake experiment using high-performance liquid chromatography analysis of the cell-free extracts of RAW 264.7 cells demonstrated that G-CAPE was gradually converted to CAPE within the cells. These results demonstrate that the glycosylation of CAPE increases its bioavailability by helping to protect this vital molecule from chemical or enzymatic oxidation, indicating that G-CAPE is a promising candidate for prodrug therapy.
Biogenic Mn oxides are expected to have great potential in the control of water pollution due to their high catalytic activity, although information on biological Mn oxidation is not currently sufficient. In this study, the growth of a Mn oxidizing microorganism, Pseudomonas putida MnB1, was examined, with the Mn oxides formed by this strain characterized. The growth of P. putida MnB1 was not significantly influenced by Mn(II), but showed a slightly decreased growth rate in the presence of Pb(II) and EE2, indicating their insignificant adsorption onto the cell surface. Mn oxides were formed by P. putida MnB1, but the liquid growth medium and resulting biogenic solids were poorly crystalline, nano-sized particles. Biogenic Mn oxidation by P. putida MnB1 followed Michaelis-Menten kinetics, with stoichiometric amounts of Mn oxides formed, which corresponded with the initial Mn(II) concentration. However, the formation of Mn oxides was inhibited at high initial Mn(II) concentration, suggesting mass transfer obstruction of Mn(II) due to the accumulation of Mn oxides on the extracellular layer. Mn oxidation by P. putida MnB1 was very sensitive to pH and temperature, showing sharp decreases in the Mn oxidation rates outside of the optimum ranges, i.e. pH 7.43-8.22 and around 20-$26^{\circ}C$.
Kim, Jong-Jin;Kim, Jae-Won;Lee, Chang-Won;Chung, Young-Ryun
Korean Journal Plant Pathology
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v.13
no.4
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pp.225-231
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1997
Activities of polygalacturonase, laccase, and intra- and extra-cellular $\beta$-glucosidase produced by 20 Botrytis cinerea isolates in liquid culture media containing cucumber cell was as a carbon source were measured and their relationships to the pathogenicity were analyzed. No significant correlations between these enzyme activities and the pathogenicity of B. cinerea were found. Mycelial growth rate on Bayendamm media, however, was higthly correlated with the pathogenicity (r=0.522) anong these isolates. Immuno-blot analysis of the culture filtrate using antibody against against exo-polygalacturonase revealed that only one band with molecular weight of 66 kDa was detected amone 34 tested isolates. It appears that these enzymes may not be primary factors in dermining the pathogenicity of B. cinerea.
Soil column experiments were evaluated effects of silver nanoparticles (i.e., 0, 2.5, 5, and 10 mg/L) on the microbial viability which is strongly associated with the degradation of organic matter, pharmaceutically active compounds(PhACs) and biological oxidation of nitrogenous compounds during river bank filtration. The addition of silver nanoparticles resulted in almost no change in the aqueous matrix. However, the intact cell concentration decreased with addition of silver nanoparticles from 2.5 to 10 mg/L, which accounted for 76% to 82% reduction compared to that of control (silver nanoparticles free surface water). The decrease in adenosine triphosphate was more pronounced; thus, the number and active cells in aqueous phase were concurrently decreased with added silver nanoparticles. Based on the florescence excitation-emission matrix and liquid chromatograph - organic carbon detection analyses, it shows that the removal of protein-like substances was relatively higher than that of humic-like substances, and polysaccharide was substantially reduced. But the extent of those substances removed during soil passage was decreased with the increasing concentration of silver nanoparticles. The attenuation of ionic PhACs ranged from 55% to 80%, depending on the concentration of silver nanoparticles. The attenuation of neutral PhACs ranged between 72% and 77%, which was relatively lower than that observed for the ionic PhACs. The microbial viability was affected by silver nanoparticles, which also resulted in inhibition of nitrifiers.
Immature flower buds of 'Desio' carnation were cultured on MS agar medium supplemented with 1 ㎎/L 2,L-D. Embryogenic calli were formed from 5-10% of the buds less than 20 ㎜ in length, but only non-embryogenic calli were produced from explants of shoot apex leaf, internode, and flowere buds larger than 20 ㎜. The same method was applied to 16 cultivars of cut Sower carnation and embryogenic calli were obtained in 7 cultivars. Several embryogenic callus lines were selected and maintained through subcultures over 120 weeks without loss of embryogenic competence. The embryogenic cultures were also proliferated rapidly in liquid agitation cultures using MS medium supplemented with 1mg/L 2,4-D. Numerous embryos were formed on the periphery of the cell aggregates upon transfer to auxin-free MS agar medium. Plantlets were transplanted in potting soil and grown to bloom in six months.
Kim, Sung Bong;Yoo, Hah-Young;Lee, Sang Jun;Lee, Ja Hyun;Choi, Han Seok;Kim, Seung Wook
한국신재생에너지학회:학술대회논문집
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2011.11a
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pp.114.2-114.2
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2011
Furfural is a versatile derivative. It can be utilized for a building-block of furfuryl alcohol production and a component of fuels or liquid alkanes. But in bio-process, furfural is a critical compound because it inhibits cell growth and metabolism. Furfural could be converted from xylose and usually produced from biomass in which hemicellulose is abundant. In this study, furfural production from miscanthus was performed and utilization of miscanthus residue was consequently conducted. At first, hydrolysis for investigation of miscanthus composition and furfural production was performed using sulfuric acid. Previously, we optimized dilute acid pretreatment condition for miscanthus pretreatment and the condition was found to be about 15 min of reaction time, 1.5% of acid concentration and about $140^{\circ}C$ of temperature and 60% (about 7 g/L) of xylose was solubilized from miscanthus. Using the xylose, furfural production was conducted as second step. Approximately $160{\sim}200^{\circ}C$ of temperature was accompanied with the hydrolysis for pyrolysis of biomass. When the investigated condition; $180^{\circ}C$ of temperature, 20 min of reaction time and 2% of acid concentration was operated for furfural production, furfural productivity was reached to be 77% of theoretical maximum. After reaction, residue of miscanthus was utilized as feedstock of ethanol fermentation. Residue was well washed using water and saccharified using hydrolysis enzymes. Hydrolysate (glucose) from saccharification was utilized for the carbon source of Saccharomyces cervisiae K35.
The present experirnents on cryopreservation were carried out to investigate effect of solution toxicity, equilibration time and cell stages on the post-thaw survival of mouse morulae and blastocyst embryos cryopreserved by vitrification in EFS solution. The mouse embryos were exposed to the EFS solution in one step at room temperature, kept in the EFS solution during different period for toxicity test, vitrified in liquid nitrogen and thawed rapidly. After the mouse morulae embryos were exposed to EFS solution for 2 and 5 ruin. at room temperature and then they were washed in 0.5 M sucrose solution and basal mediurn(D-PBS + 10% FCS), they were cultured to examined cryoprotectant toxicity induced injury during exposure, most of embryos developed to expanded blastocysts(100 and 90.0%). However, when the exposure time was extended to 10 and 20 min, these development rates dropped dramatically in 10 ruin. (75.0%) and 20 ruin. (4.5%), respectively. When the compacted morulae were vitrified in EFS solution after equilibration for 2 and 5 min, the embryos have developed to normal blastocyst following thawing, washing and culture processes was 89.3 and 89.6%. However, when the exposure time was expanded to 10 ruin, this survival rate dropped to 68.8%. When the blastocyst were vitrified in EFS solution after equilibration for 2, 5 and 10 minutes, the survival rate of embryos which developed to normal blastocyst following thawing and culture processing were 58.5, 46.7 and 22.4%, respectively. The optimal time of equilibration of mouse morula and blastocysts in EFS solution seemed o be 2 and 5 ruin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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