Many reports have stated that some of the pathogenic bacteria can obtain iron from ferroproteins, such as cytochrome C, ferritin, hemin, hemoglobin, and myoglobin. These reports prompted us to determine if an opportunistic pathogenic fungus, Candida albicans, can utilize ferroproteins to circumvent the iron-regulatory effect of transferrin. The following assays were carried out to measure in vitro growth stimulation by the ferroproteins: as an initial step, C. albicans was cultured in iron-free (pretreated with apotransferrin for 24h) culture medium. Once Candida albicans yeast cell growth reached stasis from iron starvation, individual ferroproteins were added to the culture media. Results showed that hemin, hemoglobin, and myoglobin supported a partial growth recovery. Additional studies with haptoglobin, a serum protein that interacts with the globin moiety of certain ferroproteins, established that C. albicans could obtain iron from the haptoglobin-ferroprotein complexes. These data indicate that the heme part of the ferroproteins is the source of iron. This implies that heme oxygenase, CaHMX1 might be involved in bringing about dissociation of heme-containing protein for iron-acquisition. In addition, anticandidal activity of transferrin takes place not only by the process of iron regulation, but also by direct interaction with the yeast cells.
The conformational dynamics of heme pocket, a small vacant site near the binding site of heme proteins -myoglobin (Mb) and hemoglobin (Hb), was investigated after photolysis of carbon monoxide from MbCO and HbCO in D$_2$O solution at 283 K by probing time-resolved vibrational spectra of photolyzed CO. Two absorption bands, arising from CO in the heme pocket, evolve nonexponentially in time. The band at higher energy side blue shifts and broadens with time and the one at lower energy side narrows significantly with a negligible shift. These spectral evolutions are induced by protein conformational changes following photolysis that modify structure and electric field of heme pocket, and ligand dynamics in it. The conformational changes affecting the spectrum of photolyzed CO in heme pocket likely modulates ligand-binding activity.
Cytochrome c peroxidase (CcP) is a yeast mitochondrial enzyme which catalyzes the reduction of hydrogen peroxide to water using two equivalents of ferrocytochrome c. The CcP/cytochrome c system has many features which make it a very useful model for detailed investigation of heme protein structure/function relationships including activation of hydrogen peroxide, protein-protein interactions, and long-range electron transfer. Both CcP and cytochrome c are single heme, single subunit proteins of modest size. High-resolution crystallographic structures of both proteins, of one-to-one complexes of the two proteins, and a number of active-site mutants are available. Site-directed mutagenesis studies indicate that the distal histidine in CcP is primarily responsible for rapid utilization of hydrogen peroxide implying significantly different properties of the distal histidine in the peroxidases compared to the globins. CcP and cytochrome c bind to form a dynamic one-to-one complex. The binding is largely electrostatic in nature with a small, unfavorable enthalpy of binding and a large positive entropy change upon complex formation. The cytochrome c-binding site on CcP has been mapped in solution by measuring the binding affinities between cytochrome c and a number of CcP surface mutations. The binding site for cytochrome c in solution is consistent with the crystallographic structure of the one-to-one complex. Evidence for the involvement of a second, low-affinity cytochrome c-binding site on CcP in long-range electron transfer between the two proteins is reviewed.
The heme assignment of the 1H NMR spectrum of cytochrome c3 of Desulfovibrio vulgaris Hildenborough within the X-ray structure were fully cross established according to their redox potential. The major reduction of the heme turned out to take place in the order of hemes Ⅳ,Ⅰ,Ⅱ and Ⅲ(the heme numbers indicating the order of bonding to the primary sequence). This assignment can provide the physicochemical basis for the elucidation of electron transfer of this protein.
Background: Fraxetin (7,8-dihydroxy-6-methoxy coumarin), a coumarin derivative, has been reported to possess antioxidative, anti-inflammatory and neuroprotective effects. A number of recent observations suggest that the induction of heme oxygenase-1 (HO-1) inhibits inflammation and tumorigenesis. In the present study, we determined the effect of fraxetin on HO-1 expression in HaCaT human keratinocytes and investigated its underlying molecular mechanisms. Methods: Reverse transcriptase-PCR and Western blot analysis were performed to detect HO-1 mRNA and protein expression, respectively. Cell viability was measured by the MTS test. The induction of intracellular reactive oxygen species (ROS) by fraxetin was evaluated by 2′,7′-dichlorofluorescin diacetate staining. Results: Fraxetin upregulated mRNA and protein expression of HO-1. Incubation with fraxetin induced the localization of nuclear factor-erythroid-2-related factor-2 (Nrf2) in the nucleus and increased the antioxidant response element-reporter gene activity. Fraxetin also induced the phosphorylation of Akt and AMP-activated protein kinase $(AMPK){\alpha}$ and diminished the expression of phosphatase and tensin homolog, a negative regulator of Akt. Pharmacological inhibition of Akt and $AMPK{\alpha}$ abrogated fraxetin-induced expression of HO-1 and nuclear localization of Nrf2. Furthermore, fraxetin generated ROS in a concentration-dependent manner. Conclusions: Fraxetin induces HO-1 expression through activation of Akt/Nrf2 or $AMPK{\alpha}/Nrf2$ pathway in HaCaT cells.
Scutellaria baicalensis GEORGI(SB) is used in oriental medicine for the treatment of incipient strokes. Although it has been reported that SB is neuroprotective in a hypoxia model, its mechanism is poorly understood. Here, we investigated the effect of SB on the modulation of heme oxygenase-1(HO-1), which has important biological roles in regulating mitochondrial heme protein turnover and in protecting against conditions such as hypoxia, neurodegenerative diseases, or sepsis. Rat cerebrocortical day In vitro(DIV)12 cells were grown in neurobasal medium. On DIV12 cells were treated with SB($20{\mu}g/ml$) and given a hypoxic shock ($2%\;O_2/5%\;CO_2,\;3\;hr$) on DIV14. In situ hybridization results revealed that SB upregulated HO-1 mRNA in neuronal dendrites in both normoxia and hypoxia(38.5% and 59.2%, respectively). At the protein level, SB upregulated HO-1 in the neuronal soma in both normoxia and hypoxia(22.4% and 15.7%, respectively). Interestingly, most significant increase was associated with astrocytes, which increased HO-1 protein by 77.5% compared to SB-untreated culture. These results indicate that SB upregulates both neuronal and glial HO-1 expression, which contributes to the neuroprotection efficacy in hypoxia).
Heme oxygenase (HO)-1 is an inducible enzyme that catalyzes the first and rate-limiting step in the oxidative degradation of free heme into ferrous iron, carbon monoxide (CO), and biliverdin (BV), the latter being subsequently converted into bilirubin (BR). HO-1, once expressed during inflammation, forms high concentrations of its enzymatic by-products that can influence various biological events, and this expression is proven to be associated with the resolution of inflammation. The degradation of heme by HO-1 itself, the signaling actions of CO, the antioxidant properties of BV/BR, and the sequestration of ferrous iron by ferritin all concertedly contribute to the anti-inflammatory effects of HO-1. This review focuses on the anti-inflammatory mechanisms of HO-1 actions and its roles in inflammatory diseases.
Hemoglobin is oxygen carrier protein within erythrocyte in blood. Apoprotein of this, globin, is synthesized in the cytosol but it's cofactor, heme, is synthesized in the mitochondria. It has not been known very well how globin receives the heme from mitochondria and folds to hemoglobin. In this folding process, the initial structure of globin seems to be very important. A small volume of globin at acid pH was added rapidly into the bulk of an egg phosphatidylcholine $60\%$ liposome, containing hemins, at neutral pH according to the Rapid Dilution method. It was observed that an acid-induced unfolding structure of globin is initially needed to receive hemins from the lipid bilayer of liposomes. Also, this conclusion was confirmed with the absorption spectrum of the refolded globin separated by centrifugation.
Seungki Lee;Ahyoung Choi;Kyung-Hoon Park;Youngjin Cho;Hyunjin Yoon;Pil Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.12
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pp.1648-1656
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2023
We have previously observed that feeding with single-cell hemoprotein (heme-SCP) in dogs (1 g/day for 6 days) and broiler chickens (1 ppm for 32 days) increased the proportion of lactic acid bacteria in the gut while reducing their body weights by approximately 1~2%. To define the roles of heme-SCP in modulating body weight and gut microbiota, obese C57BL/6N mice were administered varied heme-SCP concentrations (0, 0.05, and 0.5% heme-SCP in high fat diet) for 28 days. The heme-SCP diet seemed to restrain weight gain till day 14, but the mice gained weight again later, showing no significant differences in weight. However, the heme-SCP-fed mice had stiffer and oilier bodies compared with those of the control mice, which had flabby bodies and dull coats. When mice were dissected at day 10, the obese mice fed with heme-SCP exhibited a reduction in subcutaneous fat with an increase in muscle mass. The effect of heme-SCP on the obesity-associated dyslipidemia tended to be corroborated by the blood parameters (triglyceride, total cholesterol, and C-reactive protein) at day 10, though the correlation was not clear at day 28. Notably, the heme-SCP diet altered gut microbiota, leading to the proliferation of known anti-obesity biomarkers such as Akkermansia, Alistipes, Oscillibacter, Ruminococcus, Roseburia, and Faecalibacterium. This study suggests the potential of heme-SCP as an anti-obesity supplement, which modulates serum biochemistry and gut microbiota in high-fat diet-induced obese mice.
Heme oxygenase (HO), the rate limiting enzyme in the breakdown of heme into carbon monoxide (CO), iron and bilirubin, has recently received overwhelming research attention. To date three mammalian HO isozymes have been identified, and the only inducible form is HO-1 while HO-2 and HO-3 are constitutively expressed. Advances in unveiling signal transduction network indicate that a battery of redox-sensitive transcription factors, such as activator protein-1 (AP-1), nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$) and nuclear factor E2-related factor-2 (Nrf2), and their upstream kinases including mitogen-activated protein kinases play an important regulatory role in HO-1 gene induction. The products of the HO-catalyzed reaction, particularly CO and biliverdin/bilirubin have been shown to exert protective effects in several organs against oxidative and other noxious stimuli. In this context, it is interesting to note that induction of HO-1 expression contributes to protection against liver damage induced by several chemical compounds such as acetaminophen, carbon tetrachloride and heavy metals, suggesting HO-1 induction as an important cellular endeavor for hepatoprotection. The focus of this review is on the significance of targeted induction of HO-1 as a potential therapeutic strategy to protect against chemically-induced liver injury as well as hepatocarcinogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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