Gene therapy is emerging as a treatment option for inherited genetic diseases. The success of this treatment approach greatly depends upon gene delivery vectors. Researchers have attempted to harness the potential of viral vectors for gene therapy applications over many decades. Among the viral vectors available, gutless adenovirus (GLAd) has been recognized as one of the most promising vectors for in vivo gene delivery. GLAd is constructed by deleting all the viral genes from an adenovirus. Owing to this structural feature, the production of GLAd requires a helper that supplies viral proteins in trans. Conventionally, the helper is an adenovirus. Although the helper adenovirus efficiently provides helper functions, it remains as an unavoidable contaminant and also generates replication-competent adenovirus (RCA) during the production of GLAd. These two undesirable contaminants have raised safety concerns and hindered the clinical applications of GLAd. Recently, we developed helper virus-free gutless adenovirus (HF-GLAd), a new version of GLAd, which is produced by a helper plasmid instead of a helper adenovirus. Utilization of this helper plasmid eliminated the helper adenovirus and RCA contamination in the production of GLAd. HF-GLAd, devoid of helper adenovirus and RCA contaminants, will facilitate its clinical applications. In this review, we discuss the characteristics of adenoviruses, the evolution and production of adenoviral vectors, and the unique features of HF-GLAd as a new platform for gene therapy. Furthermore, we highlight the potential applications of HF-GLAd as a gene delivery vector for the treatment of various inherited genetic diseases.
We have developed a modified gene replacement method using PCR products containing short homologous sequences of 40- to 50-nt. The method required $\lambda$-Red recombination functions provided under the control of a temperature-sensitive CI857 repressor expressed from the $P_{lac}$ promoter in the presence of IPTG on an easily curable helper plasmid. The method promoted the targeted gene replacements in the Escherichia coli chromosome after shifting cultures of the recombinogenic host, which carries the helper plasmid, to $42^{\circ}C$ for 15 min. Since this method employs $\lambda$-Red recombination functions expressed from the easily curable helper plasmid, multiple rounds of gene replacements in the E. coli chromosome would be possible. The procedures described herein are expected to be widely used for metabolic engineering of E. coli and other bacteria.
Using a Tn5-Mob system, pEA9 was characterized as a self-transmissible plasmid carrying a kanamycin resistance marker. The self-transfer frequencies of pEA9 varied greatly depending on pH values. The transfer frequency was about $4\times 10^{-5}$ at pH 5, that was 10 times higher than one at pH 6.5. With a helper plasmid, transfer frequencies were increased about $10^{4}$ times than the frequencies obtained without it.
TOL plsmid size of Flavobacterium odoratum SUB53 was estimated as 83 Md and the optimum concentration of m-toluate degradation by TOL plasmid was 5 mM. $H_{2}$ production by Rhodopseudomonas sphaeroides KCTC1425 was largely dependent on nitrogenase activity and showed the highest at 30 mM malate with 7 mM glutamate as nitrogen source. Nitrogenase activities were inhibited by 0.3 mM $NH_{4}^{+}$ions, to be appeared the decrease of $H_{2}$ production. Conjugation of TOL plasmids from F. odoratum SUB53 and Pseudomonas putida mt-2 to R. sphaeroides showed the optimum at the exponential stage of recipient cells in presence of helper plasmid pRK2013. According to the investigation of catechol-1,2-oxygenase (C-1, 2-O) and catechol-2,3-oxygenase (C-2,3-O) activities of R. sphaeroides C1 (TOL SUB53) and C2 (TOL mt-2), the gene for C-2,3-O is located on TOL plasmid and gene for C-1, 2-O on the chromosome of R. sphaeroides. m-Toluate was biodegraded by TOL plasmid in R. sphaeroides C1 and C2, presumably to be produced $H_{2}$ gas from the secondary metabolites of m-toluate.e.
The cell growth inhibitor effect of cervical cancer cells was investigated by liposome mediated transfection (pRcCMVp53/lipofectin) and by transfection using adenovirus (AdCMVp57). The papilloma virus cancer cell lines we used in this study were HPV16 positive, having inhibiter gene, wild p53 gene, CaSki, SiHa, HPV18 positive HeLa, HeLaS3 and HPV negative C33A, HT3. LacZ gene of E.coli was used as the marker gene for the transfection efficiency. The effect on the inhibition of tumor cell growth was measured by cell count and cell viability though ELISA analysis and MTT assay. The inhibition of tumor cell growth was confirmed by measuring each assay for six days, comparing with the normal control cell growth. The cell growth of cervical cancer calls by transfection was significantly reduced and showed tittle differences among the cell lines. To eliminate the potential problem of Ad(adenovirus) contamination during rAAV production, rAAV can be produced by a triple transfection of vector plasmic, packaging plasmid, and adenovirus helper plasmid. To examine the helper functions of Ad plasmids on the production of rAAV vector, we carried out cotransfection of three plasmids, AAV vector, packaging construct, and Ad helper plasmids. The optimized transfection condition for calcium phosphate method is 25ug of total DNA per 10-cm-diameter plate of 293 cell. We found that rAAV yields peaked at 48hr after Ad infection. The titer of rAAV was measured by the dot blot analysis to measure the number of particles/ml based on the quantification of viral DNA. Recent1y, Kombucha(fungi) was identified as a very potent antileukefic agent. In the present study, effect of natural toxin(plankton) and Kombucha is PSP(GTXI-3, neoSTX), on various MTT assay cervical cancer cell line. Toxin(GTX 1-3, neoSTX) also inhibited the proliferation in primary cervical cancer calls in a dose-dependent toxin concentration. These results showed that toxin was very potent in inhibiting the proliferation of cervical cancer calls in vitro. Toxins and Kombuoha exhibited a dose dependent inhibition of cellular proliferation in cancer cell line.
Two kinds of mutants were isolated to clone a cluster of genes essential for zooglan biosynthesis. Zoogloea ramigera 115 strains produce capsular polysaccharide. To achieve conjugation in strain 115 and to facilitate recovery of product, a capsule non-forming strain was isolated via successive centrifugation and screening. The other kind of mutants devoid of or producing altered exopolysaccharides were obtained using classical transposon(Tn5) technique and screened for altered colony morphology and celluflour binding properties. Complementation of these mutants was achieved with Z. ramigera 115 slime gene library constructed in a broad host range cosmid vector and helper plasmid by triparental conjugation.
These studies were carried out to obtain the transformant from carrot cells by using binary vector pGA472 with NPT II gene to confer kanamycin resistance in the plant cells. The binary vector pGA472 was mobilized from E. coli MC1000 into A. tumefaciens strains isolated in the Korea, C23-1. K29-1, and disarmed Ti-plasmid PC2760, and A28l using a tri-parental mating method with E. coli HB101/pRK2013. Transconjugants, C23-1/pGA472, K29-1/pGA472, PC2 760/pGA472 and A28l/pGA472 were obtaind on the minimum AB media containing tetracycline and kanamycin, were comfirmed to hold the Ti-plasmid and pGA472 binary vector on the 0.7% agarose gel. Transformed carrot calli were initiated on the MS media supplemented with l00$\mu\textrm{g}$/ml kanamycin and 250$\mu\textrm{g}$/ml carbenicillin after co-cultivation of carrot explant and transconjugant Agrobacteria. Selected callus was grown vigouousley for subculture on the medium containing 100$\mu\textrm{g}$/ml kanamycin, thus indication that the selected callus was transformed with NPT II gene.
While bacteriophage P2-P4 system is very useful experimental tool for the study of viral capsid assembly, there is no useful plasmid vector for the DNA manipulation in bacteriophage P2-P4 system. In this study, a new vector plasmid, P4 ash8 (sid71) kmr, was constructed by swapping the non-essential region of P4 DNA for kanamycin resistance(kmr) gene cassette of plasmid pUC4-K. P4 ash8 sid71 was starting material for the construction, since it tends to be maintained as a plasmid in the absence of the helper phage. The total size of this chimera was designed to be packaged into P4 or P2 size heads with induction by P2 infection. The conversion of plasmid P4 ash8 (sid71) kmr to bacteriophage was proved by burst size determination experiment and CsCl buoyant equilibrium density gradient experiment. Integrase destructed P4 derivative, P4 ash8 sid71 kmr intS, was able to be constructed easily by in vitro DNA manipulation of P4 ash8 sid71 kmr. The plasmid stability experiment with P4 ash8 sid71 kmr if/tS showed that the integrase of P4 affects the stable maintenance of plasmid P4 state.
We have used two kinds of P element constructs, Pc[(ry+)B] and p[(ry+)$\Delta$SX9], for genetic transformation by microinjection of D. melanogaster. Pc[(ry+)B] construct carrying the rosy gene within an autonomous P element was injected into a true M strain caring the ry506. mutation. The source of transposase for microinjection and transformation was provided by a P element helper plasmid designated p-$\Delta$2-3hs$\pi$, which was co-injected with nonautonomous P[(ry+)$\Delta$SX9] construct into same ry506 M strains. A dechorination method was adopted and 35 independent transformed lines were obtained froin 1143 G0 Injected (35/1143). About 20% of the injected embryos eclosed as adults. Among G0 eclosed flies, approximately 40% exhibited eye color that was similar to wild-type (ry+), but about 60% of fertile G0 transformed lines appeared to have no G1 transformants. Therefore it is unlikely that G0 expression requires integration of the rosy transposon into chromosomes. Pc[(ry+)B] and P[(ry+)$\Delta$SX9] constructs were found to be nearly same in the frequency of element-mediated transformation. On the basis of these results, nonautonomous P elements constructs could he used as same effective vectors in P element-mediated transformation for introducing and fixing genes in insect populations.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.15
no.1
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pp.35-38
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2007
In this study, ORF 46 of Bombyx mod nucleopolyhedrovirus(Bm46) fused with EGFP was expressed in Bombyx mod cell lines, larvae and pupae by BmNPV Bacmid system. Bm46 and EGFP were cloned into donor plasmid pFastBacHTb, which was transformed to competent DH10B cells containing helper and BmNPV bacmid by site-specific transposition. Recombinant bacmid was used to transfected BmN-4 cells to produce the recombinant baculovirus vBm-Bm46-EGFP. Recombination virus was injected into silkworm larvae and pupae. The expression of the fusion protein was monitored by examining green fluorescence using a fluorescent microscope. Intense fluorescence in cells and silkworm was observed at 4 days post-infection, indicating the Bm46-EGFP fusion gene was expressed successfully.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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