Bacteriophage T7 gp4A' is a ring-shaped hexameric DNA helicase that catalyzes duplex DNA unwinding using dTTP hydrolysis as an energy source. To investigate the effect of single-stranded DNA (ssDNA) on the kinetic pathway of dTTP hydrolysis by the T7 DNA helicase complexed with ssDNA, we have first determined optimal concentration of long circular M13 single-stranded DNA and pre-incubation time in the absence of $Mg^{2+}$ which is necessary for the helicase-ssDNA complex formation. Steady state dTTP hydrolysis in the absence of $Mg^{2+}$ by the helicase-ssDNA complex provided $k_{cat}$ of $8.5\;{\times}\;10^{-3}\;sec^{-1}$. Pre-steady state kinetics of the dTTP hydrolysis by the pre-assembled hexameric helicase was monitored by using the rapid chemical quench-flow technique both in the presence and absence of M13 ssDNA. Pre-steady state dTTP hydrolysis showed distinct burst kinetics in both cases, indicating that product release step is slower than dTTP hydrolysis step. Pre-steady state burst rates were similar both in the presence and absence of ssDNA, while steady state dTTP hydrolysis rate in the presence of ssDNA was much faster than in the absence of ssDNA. These results suggest that single-stranded DNA stimulates dTTP hydrolysis reaction by T7 helicase by enhancing the rate of product release step.
T7 bacteriophage gp4 is the replicative DNA helicase that unwinds double-stranded DNA by utilizing dTTP hydrolysis energy. The quaternary structure of the active form of T7 helicase is a hexameric ring with a central channel. Single-stranded DNA passes through the central channel of the hexameric ring as the helicase translocates $5'\rightarrow3'$ along the single-stranded DNA. The DNA unwinding was measured by rapid kinetic methods and showed a lag before the single-stranded DNA started to accumulate exponentially. This behavior was analyzed by a kinetic stepping model for the unwinding process. The observed lag phase increased as predicted by the model with increasing double-stranded DNA length. Trap DNA added in the reaction had no effect on the amplitudes of double-stranded DNA unwound, indicating that the $\tau7$ helicase is a highly processive helicase. Global fitting of the kinetic data to the stepping model provided a kinetic step size of 10-11 bp/step with a rate of $3.7 s^{-1}$ per step. Both the mechanism of DNA unwinding and dTTP hydrolysis and the coupling between the two are unaffected by temperature from $4∼37^{\circ}C$. Thus, the kinetic stepping for dsDNA unwinding is an inherent property of tile replicative DNA helicase.
Severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV) helicase separates the double-stranded nucleic acids using the energy from ATP hydrolysis. We have measured ATPase activity of SARS-CoV helicase in the presence of various types of nucleic acids. Steady state ATPase analysis showed that poly(U) has two-times higher turnover number than poly(C) with lower Michaelis constant. When M13 single-stranded DNA is used as substrate, the Michaelis constant was about twenty-times lower than poly(U), whereas turnover numbers were similar. However, stimulation of ATPase activity was not observed in the presence of double-stranded DNA. pH dependent profiles of ATP hydrolysis with the helicase showed that the optimal ATPase activities were in a range of pH 6.2 ~ 6.6. In addition, ATP hydrolysis activity assays performed in the presence of various divalent cations exhibited that $Mg^{2+}$ stimulated the ATPase activity with the highest rate and $Mn^{2+}$ with about 40% rate as compared to the $Mg^{2+}$.
A new chemical inhibitor against severe acute respiratory syndrome (SARS) coronavirus helicase, 7-ethyl-8-mercapto-3-methyl-3,7-dihydro-1H-purine-2,6-dione, was identified. We investigated the inhibitory effect of the compound by conducting colorimetry-based ATP hydrolysis assay and fluorescence resonance energy transfer-based double-stranded DNA unwinding assay. The compound suppressed both ATP hydrolysis and double-stranded DNA unwinding activities of helicase with IC50 values of 8.66 ± 0.26 μM and 41.6 ± 2.3 μM, respectively. Moreover, we observed that the compound did not show cytotoxicity up to 80 μM concentration. Our results suggest that the compound might serve as a SARS coronavirus inhibitor.
The RAD4 gene is essential for nucleotide excision repair in Saccharomyces cerevisiae. It has been known that the deduced amino acid sequence of Rad4 protein contains three DNA-dependent ATPase/helicase motifs. To determine the biochemical activities and functional role of RAD4 the Rad4 protein was expressed and purified. Immunoblot analysis showed a specific band of 21 kDa, which was well-matched with the size of open reading frame of the RAD4 gene. The purified Rad4 protein had no detectable helicase activity. However, the protein could interact with double stranded oligonucleotides, as judged by mobility shift assay. This result suggests that the Rad4 protein is a DNA binding protein.
The SNF2/SW12 family comprises proteins from a variety of species with in vivo functions, such as transcriptional regulation, maintenance of chromosome stability during mitosis, and various types of DNA repair. This study was shown the characterization of hrp2+ gene which was isolated by PCR amplification using the conserved domain of SNF2 motifs. Sequence analysis of hrp2+ gene showed striking evolutionary conservation among the SNF2 family of proteins. The transcript of hrp2+ gene was found to be a 4.7 kb as identified by Northern hybridization. To investigate the inducibility of hrp2+ gene, transcript levels were examined after treating the cells to various DNA damaging agents. The transcripts of hrp2+ were induced by UV-irradiation. But the transcripts were not induced by treatment of $ 0.25\%$ Methylmethane sulfonate (MMS). These results implied that the effects of damaging agents are complex and different regulatory pathways exist for the induction of this gene. Hrp2 protein was purified near homogeneity by combination of affinity chromatography. We tested the purified Hrp2 protein for the helicase activity in an oligonucleotide release assay. However we were unable to detect any helicase activity associated with the Hrp2 protein, indicating that the helicase motifs in Hrp2 are merely indicators of a broader DNA-dependent ATPase activity.
Reverse gyrase is a hyperthermophile specific protein which introduces positive supercoils into DNA molecules. Reverse gyrase consists of an N-terminal helicase-like domain and a C-terminal topoisomerase domain. The helicase-like domain shares the three-dimensional structure with two tandem RecA-folds (H1 and H2), in which the subdomain H2 is interrupted by the latch domain (H3). To understand the physical property of the hyperthermophile-specific protein, two subdomains af_H1 and af_H23 have been cloned into E. coli expression vector, pET28a. The $^{15}N$-labeled af_H1 and af_H23 proteins were expressed and purified for heteronuclear NMR study. The af_H1 protein exhibits the well-dispersion of amide signals in its $^1H/^{15}N$-HSQC spectra and thus further NMR study continues to be progressed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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