Dogs with canine babesiosis may present with wide variation in the severity of clinical signs, ranging from a hyperacute, shock-associated, hemolytic crisis to an inapparent, subclinical infection. Dogs typically present with the acute form of babesiosis, which is characterized by general findings such as pyrexia, weakness, mucous membrane pallor, depression, hemorrhagic anemia. This study was conducted to investigate the prevalence of babesia spp. infection in dogs of Seogwipo-si. A survey of canine babesia spp. infections among 173 dogs in Seogwipo-si was performed from July 2008 to August 2008. Blood samples were collected from dogs raised outdoors through cephalic or jugular vein and Babesia spp. was diagnosed by examination of blood smear stained with Giemsa stain. Of 173 dogs, 9 dogs (5.2%) were infected with the babesia spp. This result was a little lower than the prevalence of Babesia spp. in dogs of other areas.
Hydroxyurea (HU), a DNA synthesis inhibitor, was tested as synchronizing agent in root-tip meristem of Allium wakegi. Roots were treated with 2.5mM HU for 14 h to accumulate meristem root-tip cells at the G1/S interface. After release from HU block, the cells re-entered the cell cycle with a high degree of synchrony. Synchronized mitotic frequency of A. wakegi was 22.7%, which was about 3.9 times as high as that of the control. The highest metaphase index(23.0%) was obtained when, 6 h after release from the HU block, the roots were treated with 0.05% colchicine for 2 h. Modifying various Giemsa staining protocols defined for animals and a few plant species, G-bands were visualized at prometaphase and metaphase chromosomes of A. wakegi. The higher degree of chromosome condensation, the less differential bands could be resolved. This is the first demonstration introduced partial mitotic synchronization into G-banding in plant.
한국산 박새속 조류 Porus major(박새), Porus atter(진박새), Porus poiustris(쇠박새), Parus varius(곤줄박이)의 핵형을 일반염색 방법으로 분석한 결과 4종의 염색체 수는 모두 2n=78∼80으로 나타났고, 성 염색체를 포함한 7쌍이 macrochromosome, 그 외 32∼33쌍이 microchromosome이었다. 종간 차이를 나타내는 염색체는 5번째 염색체와성염색체인 Z·W-염색체였다. 이러한 핵형의 차이는 5번째 염색체에서는 pericentric inversion, 성 염색체에서는 전좌에 의한 것으로 생각된다. The chromosomal analysis of Pows major, Paws after, Paws palustris and Paws vorius of the genus Paws in Korea were performed by conventional Giemsa staining method. The diploid number of four species were 2n=78-80, and there were 7 pairs of macrochromosomes and 32 or 33 pairs of microchromosomes. The 5th and Z·W-chromosomeswere distinctly different between interspecies. Probably these karyological differences were speculated by pericentric inversion in 5th chromosome and translocation in Z·W-chromosomes.
한국산 박새속 조류 Porus maior(박새), Parus ater(진박새), Parus palustris(쇠박새), Parus varius(곤줄박이)의 핵형을 C-banding 방법으로 분석한 결과 ZZ-ZW 염색체를 동정, 확인할 수 있었으며, 구조적 이질염색질의 부위가 일반염색 방법에 의한 핵형 비교에서 보다 종간에 더 많은 차이를 나타냈다. 그러나 일반염색 방법과 C-banding 방법 만으로는 4종간의 종분화 기작을 추측할 수 없었다. The chromosomal analysis of Paws motor, Paws ater, Pahs palustris and Pows varius of the genus Paws in Korea were performed by C-handing method. The identification of sex chromosones was ascertained and the part of constitutive heterochromatin was more different between interspecies than by conventional Giemsa staining method. However, conventional Giemsa staining and C-banding methods could not explain mechanisms of speciation between four species.
The chromosome of Fusarium species during the vegetatve nuclear divisions in hyphae were observed by use of HCl-Giemsa technique on light microscope. The haploid chromosome number of Fusarium anthophilum 7472 was n=7, n=6 in F. anthophilum 7481 and n=6 in F. oxysporum 7500. The haploid chromosome number was 7 in F. napiforme 6129 and F. napiforme 6144. Those of F. caucasicum F. caucasicum ATCC 18791 and F. aquaeductuum ATCC 15612 were n=5. F. coeruleum ATCC 20088 was n=6, n=8 in F. camptoceras ATCC 16065 and n=7 in F. sambucinum NRRL 13451. From these results and previous papers, it may be concluded that the basic haploid chromosome number of the genus Fusarium is n=4.
Theileria sergeni의 진단방법으로 Giemsa 염색에 의한 광학현미경적 관찰이 가장 통상 적으로 이용되고 있으나 감염이 아주 적거나 내과성인 경우 검출하기가 매우 곤란하다. 이에 PCR 진단을 위한 대강유전자로서 p33의 염기서열을 이용하여 4개의 oligonucleotide primers. TS1, TS2 ,TS3,, TS4를 작성하였다. 작성된 primer의 각 조합에 따라 PCR한 결과 TS1과 TS4 조합에서는 499 bps, TS1과 TS3 조합에서는 381 bps, TS2와 TS4 조합에서는 365 bps, TS2 와 TS3 조합에서는 247 bps 크기의 산물을 획득하였다 이 PCR산물은 p33 유전자 염기서열 분석을 통한 제한효소처리 및 Southern blot hybridization 방법을 통하여 그 특이성을 확인하였다. Primer의 특이성을 조사한 결과 미감염 백혈구 및 다른 주혈기생충인 Babesic ouota, Anaplosmn marginate에 대해서는 교차 반응을 나타내지 않았다. 또한 야외시료에 PCR 기법을 적용한 결과 Giemsa 염색에 의한 광학현미경적 관찰에서는 64.8%의 양성률을 보인 반면, PCR 진단에서는 본 실험에서 작성된 TS1과 TS4, TS2와 TS3 조합이 공희 88.7%의 양성률을 나타내었다.
Diagnosis of cryptosporidiosis is currently confirmed by the detection of the oocysts or endogenous stages in fecal or tissue samples. Various conventional staining methods and serodiagnostic techniques have been reported, but the latter has far been limited to a few laboratories. Cryptosporidium has recently been reported in mice and chiekens in Korea, but there has been no report on staining methods to the oocysts. The present study was performed by light and scanning electron microscopic observations, and discussed with staining properties of four conventional methods such as dichromate solution floatation method, Carbol fuchsin stain, Auramine-O stain and Giemsa stain method. Cryptosporidial oocysts were isolated from the laboratory mouse. In tissue sections of duodenum, jejunum, ileum, cecum and upper colon, numerous very small, basophilic bodies were observed on the border of mucosal epithelial cells. In scanning electron microscopic observations, a few of developmental stages of Cryptosporidium were seen. Two types of thick and thin-walled oocysts were recognized in the intestinal contents. Mean size of its were $5.19{\pm}0.23{\times}4.31{\pm}0.32{\mu}m$ and $5.14{\pm}0.25{\times}4.27{\pm}0.4{\mu}m$, respectively. Carbol fuchsin and Auramine-O stain methods are recommended as the satisfactory ones for the identification of Cryptosporidium oocysts. Giemsa stain was also recommended as available in the laboratory, because a few of developmental stage fo Cryptosporidium could be seen by it.
Fusarium oxysporum은 하나의 종내에 많은 formae speciales(분화종)과 races 등이 분화되어 있다. 그 중에서 10균주에 대하여 균사 내에서의 영양핵의 분열상을 찾아 Giemsa staining 용액으로 염색하여 그들의 염색체 수를 비교 관찰하였다. 균주에 따라 염색체 수에 차이가 있었으며 2균주(F. oxysporum f. sp. lycoperici, F. oxysporum Kangnung D2)는 n=4, 2균주(F. oxysporum S Sachun 3, F. oxysporum S Kohung 2)는 n=5, 5균주(F. oxysporum S Kohung 3, F. oxysporum CS Hongchun D16, F. oxysporum S Bosung 5, F. oxysporum S Sunchun 4, F. oxysporum S Haenam 4)는 n= 7개를 관찰할 수 있었고 Australia의 Sydney 대학에서 분양받은 F. oxysporum 14-39는 n=8개로 전체로 보아 4-8개의 염색체를 관찰할 수 있었다. 본인의 앞서 본문의 결과와 종합하여 고찰할 때 F. oxysporum의 기본염색체 수는 반수체가 4개로 추론되며 여기에서부터 여러가지 요인으로 인하여 diploidy, aneuploidy가 되어 다양한 염색체 수를 가진 것으로 사료된다.
한국산 청서(Sciunis vulgaris corea)와 다람쥐(Tamias sibiricus asiaticu)의 핵형을 일반 Giemsa- stain과 C-banding stain방법으로 분석하였다. 청서의 염색체 수는 2n=40이였으며 이 중 6쌍은 중부, 8쌍은 차중부, 3쌍은 차단부 그리고 2쌍은 단부 염색체이었고 X 염색체는 차중부,Y염색체는 acro또는 차단부 염색체로서 NF(arm number)=72(성염색체 제외)를 나타내었다. 다람쥐의 염색체 수는 2n=38이었으며 이 중 3쌍은 중부, 4쌍은 차중부, 5쌍은 차단부, 그리고 6쌍은 단부 염색체이었고 X염색체는 차중부, Y염색체는 중부염색체로서 NF=60을 나타내었다. C-banding분석결과, 청서의 염색체에서는 각 경우 대부분 동원체 (centromere)부위와 말단부(telomere)에 주로 구조적이질염색질이 분포하였고 다람쥐에서는 몇몇 염색체상(제2,3,9번)을 제외하고는 주로 동원체 부위에 구조적이직염색질이 분포하였다. 이러한 결과들로 보아 핵형상의 분화에 non-Robensonian 재배열과 구조적 이질염색질의 분포가 중요한 작용을 한 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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