Jo, Kyungae;Jang, Woo Young;Yun, Beom Sik;Kim, Jin Soo;Lee, Hyun-Sun;Chang, Yeok Boo;Suh, Hyung Joo
한국축산식품학회지
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제41권4호
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pp.623-635
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2021
The effect of deer antler extract on muscle differentiation and muscle atrophy were evaluated to minimize muscle loss following aging. Various deer antler extracts (HWE, hot water extract of deer antler; FE, HWE of fermented deer antler; ET, enzyme-assisted extract of deer antler; UE, extract prepared by ultrasonication of deer antler) were evaluated for their effect on muscle differentiation and inhibition of 5-aminoimidazole-4-carboxamide ribonucleoside (AICAR)-induced muscle atrophy in C2C12 cells. Morphological changes according to the effect of antler extracts on muscle differentiation were confirmed by Jenner-Giemsa staining. In addition, the expression levels of genes related to muscle differentiation and atrophy were confirmed through qRT-PCR. In the presence of antler extracts, the length and thickness of myotubes and myogenin differentiation 1 (MyoD1) and myogenic factor 5 (Myf5) gene expression were increased compared to those in the control group (CON). Gene expression of AMP-activated protein kinase (AMPK), MyoD1, and myogenin, along with the muscle atrophy factors muscle RING finger-1 (MuRF-1) and forkhead box O3a (FoxO3a) upon addition of deer antler extracts to muscle-atrophied C2C12 cells was determined by qRT-PCR after treatment with AICAR. The expression of MuRF-1 and FoxO3a decreased in the groups treated with antler extracts compared to that in the group treated with AICAR alone. In addition, gene expression of MyoD1 and myogenin in the muscle atrophy cell model was significantly increased compared that into the CON. Therefore, our findings indicate that antler extract can increase the expression of MyoD1, Myf5 and myogenin, inhibit muscle atrophy, and promote muscle differentiation.
Kim, Jin-Nam;Moon, Je-Sung;Lee, Eun-Young;Hwang, Kyu-Choon;Tae Hun;Kim, Ki-Dong;Han, Jae-Yong
한국가금학회:학술대회논문집
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한국가금학회 2000년도 제17차 정기총회 및 학술발표
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pp.78-80
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2000
A new murine TGF-$\beta$ family member, myostatin(growth/differentiation factor-8) is expressed specifically in developing and adult skeletal muscle and may be a negative regulator of skeletal muscle development. This study aims at characterization and identification of genomic organization of chicken myostatin gene. In thi study, we identified the genomic organization and sequence of chicken myostatin gene. Results of RT-PCR and Northern blots from various tissues showed different mRNA expression levels in developmental stages of chick embryos and demonstrated strong expression of myostatin mRNA in skeletal muscle. These facts suggest that chicken myostatin gene would play an important role not only in skeletal muscle cell but also in other tissues.
Shahjahan, Md.;Liu, Ranran;Zhao, Guiping;Wang, Fangjie;Zheng, Maiqing;Zhang, Jingjing;Song, Jiao;Wen, Jie
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제29권4호
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pp.479-486
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2016
A previous genome-wide association study (GWAS) exposed histone deacetylase 2 (HDAC2) as a possible candidate gene for breast muscle weight in chickens. The present research has examined the possible role of HDAC2 in skeletal muscle development in chickens. Gene expression was measured by quantitative polymerase chain reaction in breast and thigh muscles during both embryonic (four ages) and post-hatch (five ages) development and in cultures of primary myoblasts during both proliferation and differentiation. The expression of HDAC2 increased significantly across embryonic days (ED) in breast (ED 14, 16, 18, and 21) and thigh (ED 14 and 18, and ED 14 and 21) muscles suggesting that it possibly plays a role in myoblast hyperplasia in both breast and thigh muscles. Transcript abundance of HDAC2 identified significantly higher in fast growing muscle than slow growing in chickens at d 90 of age. Expression of HDAC2 during myoblast proliferation in vitro declined between 24 h and 48 h when expression of the marker gene paired box 7 (PAX7) increased and cell numbers increased throughout 72 h of culture. During induced differentiation of myoblasts to myotubes, the abundance of HDAC2 and the marker gene myogenic differentiation 1 (MYOD1), both increased significantly. Taken together, it is suggested that HDAC2 is most likely involved in a suppressive fashion in myoblast proliferation and may play a positive role in myoblast differentiation. The present results confirm the suggestion that HDAC2 is a functional gene for pre-hatch and post-hatch (fast growing muscle) development of chicken skeletal muscle.
Numerous biochemical molecules have been implicated in the development of muscular atrophy. However, control mechanisms associated with muscular disease are not clear. The present study was conducted to investigate gene expression profiles of rat muscle during the denervation to atrophy transition processes. We isolated total RNA from rats suffering from partial muscle atrophy (P) and electromyostimulated atrophy (PE) and synthesized cDNA using annealing control primers. Using 20 ACPs for PCR, we cloned 18 DEGs using TOPO TA cloning vector, sequenced, and analyzed their identities using BLAST search. Sequences of 14 clones significantly matched database entries, while one clone was ESTs, and 3 clones were unidentified. Different expression profiles of selected DEGs between P and PE were confirmed. The troponin T, Fkbp1a, RGD1307554, Phtf1, Atp1a1 and Commd3 were highly expressed genes in the P and PE groups, while Krox-25 and TCOX2 were only expressed genes in the P group, the Sv2b and Marcks were only expressed genes in PE group. also, Cox8h was highly expressed genes in PE groups. The ASPH, ND1, and ARPL1 were highly expressed genes in the P and PE groups. List of genes obtained from the present study might provide an insight for the study of mechanism regulating muscle atrophy and electrostimulated muscle atrophy transitions. These data suggest that troponin T, Fkbp1a, RGD1307554, Phtf1, Atp1a1, and Commd3 are potentially useful as clinical biomarkers of age-related muscle atrophy and dysfunction.
Objective: To examine the regulatory effects of exercise on myokine expression in horse skeletal muscle cells, we compared the expression of several myokine genes (interleukin 6 [IL-6], IL-8, chemokine [C-X-C motif] ligand 2 [CXCL2], and chemokine [C-C motif] ligand 4 [CCL4]) after a single bout of exercise in horses. Furthermore, to establish in vitro systems for the validation of exercise effects, we cultured horse skeletal muscle cells and confirmed the expression of these genes after treatment with hydrogen peroxide. Methods: The mRNA expression of IL-6, IL-8, CXCL2, and CCL4 after exercise in skeletal muscle tissue was confirmed using quantitative-reverse transcriptase polymerase chain reactions (qRT-PCR). We then extracted horse muscle cells from the skeletal muscle tissue of a neonatal Thoroughbred. Myokine expression after hydrogen peroxide treatments was confirmed using qRT-PCR in horse skeletal muscle cells. Results: IL-6, IL-8, CXCL2, and CCL4 expression in Thoroughbred and Jeju horse skeletal muscles significantly increased after exercise. We stably maintained horse skeletal muscle cells in culture and confirmed the expression of the myogenic marker, myoblast determination protein (MyoD). Moreover, myokine expression was validated using hydrogen peroxide ($H_2O_2$)-treated horse skeletal muscle cells. The patterns of myokine expression in muscle cells were found to be similar to those observed in skeletal muscle tissue. Conclusion: We confirmed that several myokines involved in inflammation were induced by exercise in horse skeletal muscle tissue. In addition, we successfully cultured horse skeletal muscle cells and established an in vitro system to validate associated gene expression and function. This study will provide a valuable system for studying the function of exercise-related genes in the future.
A large data set of Hanwoo (Korean cattle) ESTs was analyzed to obtain differential gene expression results for the following three libraries: intramuscular fat, longissimus dorsi muscle and liver. To better understand the gene expression profiles, we identified differentially expressed genes (DEGs) via digital gene expression analysis. Hierarchical clustering of genes was performed according to their relative abundance within the six separate groups (Hanwoo fat versus non-Hanwoo fat, Hanwoo muscle versus non-Hanwoo muscle and Hanwoo liver versus non-Hanwoo liver), producing detailed patterns of gene expression. We determined the quantitative traits associated with the highly expressed genes. We also provide the first list of putative regulatory elements associated with differential tissue expression in Hanwoo cattle. In addition, we conducted evolutionary analysis that suggests a subset of genes accelerated in the bovine lineage are strongly correlated with their expression in Hanwoo muscle.
Treatments of vascular disease via modulating the expression of specific proteins by gene transfer have been attempted in various studies over the past few years. Among several methods to deliver genes, adenovirus currently has been used because of a number of positive aspects. In this study, we test adenoviral vector as a potential mediator in the treatment of vascular disease by using freshly isolated vascular tissues not cultured vascular cells. Freshly isolated vascular tissues were directly exposed to adenoviral vector pAd5CMVmcsIRESeGFPpA to check the possibility of GFP expression in different layer of vascular tissues. We found that the GFP expression by using adenoviral vector experiments is mainly focused on the adventitia and failed to detect GFP expression at endothelial layer or vascular smooth muscle layer in vascular tissues. However, we also found that several integrin receptors are robustly expressed in vascular smooth muscle, thus the limited expression of protein in vascular smooth muscle are not likely the lack of integrin receptors. In conclusion, adenovirus could not be a good tool for a specific protein expression in vascular smooth muscle cell. Thus, the application of adenovirus as a tool for gene therapy of vascular smooth muscle cells in clinical therapeutic trial need to be optimized further.
The adrenergic receptor beta 2 (ADRB2) plays a role in various physiological responses of the muscle to exercise, such as contraction and relaxation. Given its important role in muscle function, we investigated the structure of the horse ADRB2 gene and its expression pattern after exercise to determine if it can serve as a putative biomarker for recovery. Evolutionary analyses using synonymous and non-synonymous mutation ratios, were compared with other species (human, chimpanzee, mouse, rat, cow, pig, chicken, dog, and cat), and revealed the occurrence of positive selection in the horse ADRB2 gene. In addition, expression analyses by quantitative polymerase chain reaction exhibited ubiquitous distribution of horse ADRB2 in various tissues including lung, skeletal muscle, kidney, thyroid, appendix, colon, spinal cord and heart, with the highest expression observed in the lung. The expression of ADRB2 in skeletal muscle was significantly up-regulated about four folds 30 minutes post-exercise compared to pre-exercise. The expression level of ADRB2 in leukocytes, which could be collected with convenience compared with other tissues in horse, increased until 60 min after exercise but decreased afterward until 120 min, suggesting the ADRB2 expression levels in leukocytes could be a useful biomarker to check the early recovery status of horse after exercise. In conclusion, we identified horse ADRB2 gene and analyzed expression profiles in various tissues. Additionally, analysis of ADBR2 gene expression in leukocytes could be a useful biomarker useful for evaluation of early recovery status after exercise in racing horses.
Since ancient days, domestic horses have been closely associated with human civilization. Today, horse racing is an important industry. Various genes involved in energy production and muscle contraction are differentially regulated during a race. Among them, creatine kinase (CK) is well known for its regulation of energy preservation in animal cells. CK is an iso-enzyme, encoded by different genes and expressed in skeletal muscle, heart, brain and leucocytes. We confirmed that the expression of CK-M significantly increased in the blood after a 30 minute exercise period, while no considerable change was observed in skeletal muscle. Analysis of various tissues showed an ubiquitous expression of the CK-M gene in the horse; CK-M mRNA expression was predominant in the skeletal muscle and the cardiac muscle compared to other tissues. An evolutionary study by synonymous and non-synonymous single nucleotide polymorphism ratio of CK-M gene revealed a positive selection that was conserved in the horse. More studies are warranted in order to develop the expression of CK-M gene as a biomarker in blood of thoroughbred horses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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