Fibrobacter succinogenes, a Gram-negative, anaerobic ruminal bacterium is a major fibre digesting species in the rumen. It intensively degrades plant cell walls by an erosion type of mechanism, burrowing its way through the complex matrix of cellulose and hemicellulose with the release of digestible and undigested cell wall fragments. The enzymes involved in this process include a combination of glucanases, xylanases, arabinofuranosidase(s) and esterases. The genome of the bacterium has been sequenced and this has revealed in excess of 100 putative glycosyl hydrolase, pectate lyase and carbohydrate esterase genes, which is greater than the numbers reported present in other major cellulolytic organisms for which genomes have been sequenced. Modelling of the amino acid sequences of two glycanases, CedA and EGB, by reference to crystallized homologs has enabled prediction of the major features of their tertiary structures. Two dimensional gel electrophoresis in conjunction with mass spectroscopy has permitted the documentation of proteins over expressed in F. succinogenes grown on cellulose, and analysis of the cell surfaces of mutant strains unable to bind to cellulose has enabled the identification of candidate proteins with roles in adhesion to the plant cell wall substrate, the precursor to cellulose biodegradation.
Among rumen microbes, bacteria play important roles in the biological degradation of plant fiber due to their large biomass and high activity. To maximize the utilization of fiber components such as cellulose and hemicellulose by ruminant animals, the ecology and functions of rumen bacteria should be understood in detail. Recent genome sequencing analyses of representative fibrolytic bacterial species revealed that the number and variety of enzymes for plant fiber digestion clearly differ between Fibrobacter succinogenes and Ruminococcus flavefaciens. Therefore, the mechanism of plant fiber digestion is also thought to differ between these two species. Ecology of individual fibrolytic bacterial species has been investigated using pure cultures and electron microscopy. Recent advances in molecular biology techniques complement the disadvantages of conventional techniques and allow accurate evaluation of the ecology of specific bacteria in mixed culture, even in situ and in vivo. Molecular monitoring of fibrolytic bacterial species in the rumen indicated the predominance of F. succinogenes. Nutritive interactions between fibrolytic and non-fibrolytic bacteria are important in maintaining and promoting fibrolytic activity, mainly in terms of crossfeeding of metabolites. Recent 16S rDNA-based analyses suggest that presently recognized fibrolytic species such as F. succinogenes and two Ruminococcus species with fibrolytic activity may represent only a small proportion of the total fibrolytic population and that uncultured bacteria may be responsible for fiber digestion in the rumen. Therefore, characterization of these unidentified bacteria is important to fully understand the physiology and ecology of fiber digestion. To achieve this, a combination of conventional and modern techniques could be useful.
Sung, Ha Guyn;Kobayashi, Yasuo;Chang, Jongsoo;Ha, Ahnul;Hwang, Il Hwan;Ha, J.K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제20권2호
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pp.200-207
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2007
In vitro rumen incubation studies were conducted to determine effects of initial pH on bacterial attachment and fiber digestion. Ruminal fluid pH was adjusted to 5.7, 6.2 and 6.7, and three major fibrolytic bacteria attached to rice straw in the mixed culture were quantified with real-time PCR. The numbers of attached and unattached Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus flavefaciens and Ruminocococcus albus were lower (p<0.05) at initial pH of 5.7 without significant difference between those at higher initial pH. Lowering incubation media pH to 5.7 also increased bacterial numbers detached from substrate regardless of bacterial species. Dry matter digestibility, gas accumulation and total VFA production were pH-dependent. Unlike bacterial attachment, maintaining an initial pH of 6.7 increased digestion over initial pH of 6.2. After 48 h in vitro rumen fermentation, average increases in DM digestion, gas accumulation, and total VFA production at initial pH of 6.2 and 6.7 were 2.8 and 4.4, 2.0 and 3.0, and 1.2 and 1.6 times those at initial pH of 5.7, respectively. The lag time to reach above 2% DM digestibility at low initial pH was taken more times (8 h) than at high and middle initial pH (4 h). Current data clearly indicate that ruminal pH is one of the important determinants of fiber digestion, which is modulated via the effect on bacterial attachment to fiber substrates.
Kudo, H.;Cheng, K.J.;Rode, L.M.;Abdullah, N.;Ho, Y.W.;Hussain, H.Y.;Jalaludin, S.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제7권3호
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pp.389-396
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1994
Effects of chemical treatments on in sacco and in vitro digestibility of barley straw by rumen fluid and pure cultures of cellulolytic bacteria were studied to evaluate the pretreatment and to improve the poor quality feed. Chemicals were applied by dissolving them in water equivalent to 40% of the weight of the straw (dry matter basis). Pretreatment with 5% NaOH yielded the largest increase in sacco digestion followed by pretreatment with 2% $(NH_4)_2SO_3$, 2.6% $NH_4OH$, 1.6% $NaHSO_3$ and untreated straw (control). In sacco dry matter digestibility of straw treated with NaOH and $(NH_4)_2SO_3$ continued to increase as the concentration of chemical increased (1 to 7.5%), as it was the in vitro dry matter loss by leaching. Treatment of barley straw with 5% NaOH enhanced significantly (p < 0.01) in vitro digestibility by rumen fluid, Fibrobacter suceinogenes and Ruminococcus albus though the fermentation products by cellulolytic bacteria were low, whereas the treatment with 5% $(NH_4)_2SO_3$ inhibited in vitro digestibility by F. succinogenes and R. albus together with lower fermentation products. Dry matter loss by leaching and bacterial digestion from barley straw treated with NaOH and $(NH_4)_2SO_3$ suggested the effect of pretreatment with these chemicals were based on leaching, and the cellulolytic bacteria had little to do with digestion.
The interaction of fibre degrading microbes and methanogens was studied using two forages, lucerne (Medicago sativa) hay and maize (Zea mays) hay, as substrate and 2-bromoethanesulphonic acid (BES) as an additive in an in vitro gas production test. Gas and methane production (ml/g dry matter) were significantly higher (p<0.05) on lucerne as compared to maize hay. Inclusion of BES in the incubation medium significantly suppressed methane emission irrespective of substrate. The population density of total bacteria, fungi, Ruminococcus flavefaciens and Fibrobacter succinogenes was higher, whereas that of methanogens was lower with maize hay as compared to lucerne as substrate. BES suppressed methanogen population by 7 fold on lucerene and by 8.5 fold on maize at 24 h incubation as estimated by real time-PCR. This suppression was accompanied by almost complete (>98% of control) inhibition of methanogenesis. The proportion of acetate decreased, whereas that of propionate increased significantly by inclusion of BES, resulting in narrowing of acetate to propionate ratio. In vitro true digestibility (IVTD) of lucerne was significantly higher as compared to maize but BES inclusion did not affect IVTD.
Lee, Shin Ja;Shin, Nyeon Hak;Jeong, Jin Suk;Kim, Eun Tae;Lee, Su Kyoung;Lee, Sung Sill
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제31권1호
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pp.54-62
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2018
Objective: Due to the threat of global warming, the livestock industry is increasingly interested in exploring how feed additives may reduce anthropogenic greenhouse gas emissions, especially from ruminants. This study investigated the effect of Rhodophyta supplemented bovine diets on in vitro rumen fermentation and rumen microbial diversity. Methods: Cannulated Holstein cows were used as rumen fluid donors. Rumen fluid:buffer (1:2; 15 mL) solution was incubated for up to 72 h in six treatments: a control (timothy hay only), along with substrates containing 5% extracts from five Rhodophyta species (Grateloupia lanceolata [Okamura] Kawaguchi, Hypnea japonica Tanaka, Pterocladia capillacea [Gmelin] Bornet, Chondria crassicaulis Harvey, or Gelidium amansii [Lam.] Lamouroux). Results: Compared with control, Rhodophyta extracts increased cumulative gas production after 24 and 72 h (p = 0.0297 and p = 0.0047). The extracts reduced methane emission at 12 and 24 h (p<0.05). In particular, real-time polymerase chain reaction analysis indicated that at 24 h, ciliate-associated methanogens, Ruminococcus albus and Ruminococcus flavefaciens decreased at 24 h (p = 0.0002, p<0.0001, and p<0.0001), while Fibrobacter succinogenes (F. succinogenes) increased (p = 0.0004). Additionally, Rhodophyta extracts improved acetate concentration at 12 and 24 h (p = 0.0766 and p = 0.0132), as well as acetate/propionate (A/P) ratio at 6 and 12 h (p = 0.0106 and p = 0.0278). Conclusion: Rhodophyta extracts are a viable additive that can improve ruminant growth performance (higher total gas production, lower A/P ratio) and methane abatement (less ciliateassociated methanogens, Ruminococcus albus and Ruminococcus flavefaciens and more F. succinogenes.
본 연구는 메탄생성에 직접적으로 관여하는 혼합 메탄균과 셀롤로스 등의 고분자 물질의 가수분해 반응에 활성이 뛰어난 반추위 내 혐기성 섬유소분해균 중에서 대표적인 Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus flavefaciens 및 Ruminococcus albus를 biochemical methane potential (BMP) 시험에 첨가하였을 때 메탄 발생에 미치는 영향을 조사하고자 수행되었다. BMP시험은 멸균증류수를 첨가한 control과 각각의 미생물 배양액을 첨가한 혼합 메탄균 첨가구 (M), F. succinogenes 첨가구 (FS) R. flavefaciens 첨가구 (RF), R. albus 첨가구 (RA) 및 RA+FS 혼합첨가구와 M+RA+FS 혼합 첨가구로 총 7개 처리구로 각 처리구별 3반복으로 진행되었다. 미생물 배양액의 첨가량은 식종액과 기초혐기배지 (anaerobic basic medium) 혼합액 50 mL에 1% (0.5 mL), 3% (1.5 mL) 및 5% (2.5 mL) 씩 첨가 하였고 배양을 위한 기질로는 cellulose ($2.0g\;VS\;L^{-1}$)이 이용되었다. BMP 시험을 위해 40일간 배양이 지속되었고 중온소화를 위해 $38^{\circ}C$의 배양기에서 수행되었다. 실험의 결과 총 바이오가스 및 메탄 발생량은 5% FS에서 다른 처리구와 비교하여 각각 10.4~22.7% 및 17.4~27.5% 높았다 (p<0.05). 총고형물 (TS) 분해율도 가스발생 결과와 유사하였는데, 전반적으로 FS가 높게 나타났으며, 5% FS에서 64.2%로 가장 높았다. 휘발성 고형물 (VS) 분해율은 5% FS와 5% RF가 각각 68.4 및 71.0%로 가장 높았다. BMP 종료시 배양액내 pH는 모든 처리구가 6.4이상으로 메탄발효에 큰 영향을 주지 않았음을 알 수 있었다. 결론적으로 본 실험의 결과 혐기소화에 대한 회분식 배양에서는 메탄생성단계보다는 가수분해단계에서 특히, F. succinogenes 배양액의 첨가량이 증가할수록 메탄의 생성량을 증가시킴을 알 수 있었다.
Ha, J.K.;Lee, S.S.;Kim, S.W.;Han, In K.;Ushida, K.;Cheng, K.J.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제14권6호
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pp.797-802
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2001
Two strains of rumen fungi (Piromyces rhizinflata B157, Orpinomyces joyonii SG4) and three strains of rumen cellulolytic bacteria (Ruminococcus albus B199, Ruminococcus flavefaciens FD1 and Fibrobacter succinogenes S85) were used as mono-cultures or combinationally arranged as co- and sequential-cultures to assess the relative contributions and interactions between rumen fungi and cellulolytic bacteria on rice straw degradation. The rates of dry matter degradation of co-cultures were similar to those of corresponding bacterial mono-cultures. Compared to corresponding sequential-cultures, the degradation of rice straw was reduced in all co-cultures (P<0.01). Regardless of the microbial species, the cellulolytic bacteria seemed to inhibit the degradation of rice straw by rumen fungi. The high efficiency of fungal cellulolysis seems to affect bacterial degradation rates.
본 연구는 배양초기 pH 조건이 F. succino- genes의 섬유소 부착과 섬유소 소화에 미치는 영향을 보고자 실시하였다. 선정된 specific primer를 이용하여 F. succinogenes의 genomic DNA로부터 445bp의 16S rDNA 절편을 증폭하여 205bp의 internal control을 제작하였고, cPCR 결과로부터 박테리아 수를 계산할 수 있는 표준곡선의 회귀식($r^2$>0.99)을 얻을 수 있었다. In vitro 배양초기 pH에 따른 F. succ- inogenes의 cellulose 부착을 cPCR로 모니터링한 결과, 발효과정 전 기간동안 초기 pH가 6.8과 6.2일 때 cellulose 건물 g당 부착 균주의 수가 pH 5.6일 때 보다 높았으나, pH 6.8과 6.2 사이에서는 큰 차이는 없었다(p>0.05). Cellulose 분해는 배양시간이 진행됨에 따라 증가 되었으며, 분해 정도는 pH가 증가함에 따라 더 높았다. 배양초기 pH가 6.8, 6.2 그리고 5.8일 때 48시간동안 감소한 pH는 각각 0.24, 0.58 그리고 0.16 이었다. 가스 생산량은 발효 시간이 경과함에 따라 pH가 높을수록 더 많았다. 결론적으로 발효 초기 pH는 F. succinogenes에 의한 cellulose 소화, 가스 생산, pH 변화 및 cellulose 부착에 큰 영향을 주었으며, 특히, 낮은 pH(5.8)에서는 섬유소 소화 및 박테리아 부착을 현저한 감소 시켰다.
The study aimed to investigate the effects of gynosaponin on in vitro methanogenesis under different forage-concentrate ratios (F:C ratios). Experiment was conducted with two kinds of F:C ratios (F:C = 7:3 and F:C = 3:7) and gynosaponin addition (0 mg and 16 mg) in a $2{\times}2$ double factorial design. In the presence of gynosaponin, methane production and acetate concentration were significantly decreased, whereas concentration of propionate tended to be increased resulting in a significant reduction (p<0.05) of acetate:propionate ratio (A:P ratio), in high-forage substrate. Gynosaponin treatment increased (p<0.05) the butyrate concentration in both F:C ratios. Denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analysis showed there was no apparent shift in the composition of total bacteria, protozoa and methanogens after treated by gynosaponin under both F:C ratios. The real-time polymerase chain reaction (PCR) analysis indicated that variable F:C ratios significantly affected the abundances of Fibrobacter succinogenes, Rumninococcus flavefaciens, total fungi and counts of protozoa (p<0.05), but did not affect the mcrA gene copies of methanogens and abundance of total bacteria. Counts of protozoa and abundance of F.succinogenes were decreased significantly (p<0.05), whereas mcrA gene copies of methanogens were decreased slightly (p<0.10) in high-forage substrate after treated by gynosaponin. However, gynosaponin treatment under high-concentrate level did not affect the methanogenesis, fermentation characteristics and tested microbes. Accordingly, overall results suggested that gynosaponin supplementation reduced the in vitro methanogenesis and improved rumen fermentation under highforage condition by changing the abundances of related rumen microbes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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