Background and Objectives: Low-intensity pulsed ultrasound (LIPUS) promotes differentiation and regulates biological functions of various stem cells, but its effect on the endothelial differentiation of periodontal ligament stem cells (PDLSCs) is unclear. This study investigated the effect of LIPUS on endothelial differentiation and angiogenesis in PDLSCs and the role of the mechanically sensitive ion channel Piezo1 in this process. Methods and Results: PDLSCs obtained from healthy people were used for endothelial induction, and 10 ㎍/ml lipopolysaccharide (LPS) was used to simulate the inflammatory state. The induced cells were treated with LIPUS (50 mW/cm2, 1.5 MHz) to study its effect on the endothelial differentiation of PDLSCs and the tube formation of differentiated cells. PCR, flow cytometry, immunofluorescence, and Matrigel tube formation assays were used to detect the differentiation and tube formation of PDLSCs. GsMTx4 was used to inhibit the expression of Piezo1, and the role of the Piezo1 pathway in the endothelial differentiation and microvascular formation of PDLSCs after LIPUS treatment was studied. The data showed that LIPUS increased endothelial differentiation and angiogenesis in PDLSCs under inflammatory or noninflammatory conditions. The use of an inhibitor weakened the effect of LIPUS. Conclusions: This study demonstrated that LIPUS can activate the expression of Piezo1 and promote the endothelial differentiation and microvascular formation of PDLSCs.
Ca2+ signaling of endothelial cells plays a critical role in controlling blood flow and pressure in small arteries and arterioles. As the impairment of endothelial function is closely associated with cardiovascular diseases (e.g., atherosclerosis, stroke, and hypertension), endothelial Ca2+ signaling mechanisms have received substantial attention. Increases in endothelial intracellular Ca2+ concentrations promote the synthesis and release of endothelial-derived hyperpolarizing factors (EDHFs, e.g., nitric oxide, prostacyclin, or K+ efflux) or directly result in endothelial-dependent hyperpolarization (EDH). These physiological alterations modulate vascular contractility and cause marked vasodilation in resistance arteries. Transient receptor potential (TRP) channels are nonselective cation channels that are present in the endothelium, vascular smooth muscle cells, or perivascular/sensory nerves. TRP channels are activated by diverse stimuli and are considered key biological apparatuses for the Ca2+ influx-dependent regulation of vasomotor reactivity in resistance arteries. Ca2+-permeable TRP channels, which are primarily found at spatially restricted microdomains in endothelial cells (e.g., myoendothelial projections), have a large unitary or binary conductance and contribute to EDHFs or EDH-induced vasodilation in concert with the activation of intermediate/small conductance Ca2+-sensitive K+ channels. It is likely that endothelial TRP channel dysfunction is related to the dysregulation of endothelial Ca2+ signaling and in turn gives rise to vascular-related diseases such as hypertension. Thus, investigations on the role of Ca2+ dynamics via TRP channels in endothelial cells are required to further comprehend how vascular tone or perfusion pressure are regulated in normal and pathophysiological conditions.
It is important to coordinated interaction among neurons, astrocytes and endothelial cells to maintain the function of brain. To study their regulatory mechanisms in vitro system, the co-culture system among the isolated cells from brain may be needed. However, the method for purifying brain microvascular endothelial cells (BMEC) far culture have not established yet. In this study, the proper culture methods of mice cells using two different strains, CD1 and C57BL6, to obtain the pure and plentiful endothelial cells were described. The flatted-round forms of CD1 endothelial cells grew on the collagen-IV coating plates, while the purified cells from C57 mice preferred type collagen-I dishes for their growth. Both cells displayed anti-PECAM-1 (CD31) and von Willebrand Factor immune-reactivity. These results indicated that different coating materials not only improve attachment of isolated cells but also promoting growth of cells, suggesting that this method of purifying murine Brain microvascular endothelial cells (BMEC) provides a suitable model to investigate blood-brain-barrier (BBB) properties within neurovascular unit in vitro.
We have previously observed that Bambusae Caul is in Liquamen (BCL) stimulates the adipose conversion of 3T3-L1 cells and molecular chaperones were involved in the process of the assembly and replacement of laminin subunits in Bovine aortic endothelial cells(BAEC). Endothelial cells are exposed to continuous shear stress due to the blood flow. Heat shock protens(hsp) are a well-known stress response protein, namely, stress proteins. To investigate effects of BCL on the stress proteins induced by heating in endothelial cells, we have analyzed synthetic amounts of stress proteins in sodium dodecyl sulfate gel electrophoresis under reducing conditions. Under the condition of heating stress, BCL inhibited the synthesis of stress proteins in endothelial cells. These results suggest that BCL may have an important role for expression of stress proteins induced by heating in endothelial cells.
Relationships between biochemical phenomena and hemodynamics on human endothelial cells are very important to study the mechanism of atherosclerotic formation and development. The objective of this study is to investigate the flow phenomena around the endothelial cell model by the PIV experiment. The microscopic images of endothelial cells were acquired by a CCD camera to fabricate the shape of endothelial cell. The cell models were fabricated by using a photoforming process. Two consecutive particle images were captured by the CCD camera for the image processing. Conifer powder as the tracing particles was added to water to visualize the flow field. The cross-correlation method was applied fer the image processing of the flow visualization. Pressure and wall shear stress variations on the surfaces of the endothelial cells were calculated to investigate the effects of hemodynamic forces on the morphological changes.
We found that bufalln, one of the prominent components of the bufadlenolides in the Chinese medicine chan'su, has the potent inhibitory effects on growth and proliferation of the cultured bovine aortlc endothelial (BAE) and human umbilical vein endothelial (HUVE) cells. All naturally-occuring bufadienolides used in this study inhibited the cell growth in a dose-dependent manner. Particularly, bufalin among the bufadienolides showed the strongest inhibitory activity for the cell growth. The order of growth inhibition by bufadienolides on BAE cells was as follows: bufalin > gamabufotalln > bufotalln > cinobufagin > cinobufotalin > resibufogenin. The $IC_50$ values (50% inhibition of cell growth) of bufalin as determined by XTT assay were the range of 1-10 nM in BAE and HUVE cells. Bufalin exhibited a higher sensitivity towards cultured bovine aortic endothelial cells than human umbilical vein endothelial cells.
The effects of tumor necrosis factor alpha $(TNF-{\alpha})$ on growth and tubular formation of bovine aortic endothelial cells were examined using an in vitro angiogenesis model system. The growth of endothelial cells was enhanced in a dose-dependent manner when the cells were cultured with $TNF-{\alpha}$ for 3 days, but $TNF-{\alpha}$, at the concentration of 1 nM or higher, produced a growth inhibition of endothelial cells when the cells were cultured for 8 days. The endothelial cells incubated with $TNF-{\alpha}$ for 48-h exhibited a typical morphologic change. Then, they showed a fibroblastoid organization of overlapping, elongated, and spindle-shaped cells. $TNF-{\alpha}$, at the concentration of O. 1 nM or higher, inhibited the tubular formation of vascular endothelial cells in an in vitro anglogenesis model using a 3-dimensional culture system.
To investigate the effects of hydrocortisone on new-born rat cardiac endothelial cells in culture, the endothelial cells were isolated by means of enzyme-cocktail method. The cells were cultivated in Lees modified Dulbeco\ulcorner medium and 10[M or 10[M of hydrocortisone was added to the medium. The cells were harvested or coverglass and processed for thiamin pyrophosphatase reaction and Feulgen reaction. The enzymatic activities of Golgi complex, number of cells and number of large nucleated[more than tetraploid] cells were counted and discussed for their significance. The results were summarized as follows; 1. Hydrocortisone seemed to accelerate the rate of recovery of cardiac endothelial cells from isolation damage. 2. Endothelial cells treated with hydrocortisone revealed strong positive reaction to thiamine pyrophosphatase in early culture and 10 M group had stronger reaction than that of 10 AM group 3. Hydrocortisone had inhibiting effects on endothelial proliferation and the higher the concentration of the reagent was the stronger effects. 4. Hydrocortisone inhibited the appearance of large nucleate cells in endothelial cell population. 5. Hydrocortisone seemed to suppress the nuclear DNA synthesis.
Construction of the stable monolayer of endothelial cells onto physicochemically modified polymeric surFace is one of the appropriate method to develop the small caliber vascular graft with the long-term patency. In this study, we constructed the monolayer of endothelial cells on the fibronectin rind the extracellular matrix-coated polyurethane surface derived from human fibroblast cells. To elucidate the adhesion strength of endothelial cells on the extracellular matrix-coated polyurethane, a laminar flow chamber apparatus was developed to exposure the shear stress on the apical membrane of ondothelial cells. Endothelial cells show the strongest adhesion after two days of seeding onto the fibronectin-coated polyurethane surface, whereas endothelial cells on the extracellular matrix derived from the human flbroblast cells show the minimal doubling time of cellular growth.
Vascular endothelial growth factor (VEGF), plays a key role in angiogenesis. Many endogenous factors can affect angiogenesis in endothelial cells. VEGF is known to be a strong migration, sprouting, survival, and proliferation factor for endothelial cells during angiogenesis in endothelial cells. Searching for novel genes involved in VEGF signaling during angiogenesis, we carried out differential display polymerase chain reaction on RNA from VEGF-stimulated human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). In this study, follistatin (FS) differentially expressed in VEGF-treated HUVECs, compared with controls. Addition of VEGF (10ng/L) produced an approximately 11.8-fold increase of FS mRNA. F5 or VEGF produced approximately 1.8- or 2.9-fold increases, respectively, in matrix metalloproteinase-2 (MMP-2) secretion for 12h, compared to the addition of a control buffer. We suggest that VEGF may affect the angiogenic effect of HUVECs, through a combination of the direct effects of VEGF itself, and the indirect effects mediated via induction of FS in vitro.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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