Chicken embryonic stem (ES) cells have great potential and provide a powerful tool to investigate embryonic development and to manipulate genetic modification in a genome. However, very limited studies are available on the functional characterization and robust expansion of chicken ES cells compared to other species. Here, we have developed a method to generate chicken embryonic stem cell-like cells under pluripotent culture conditions. The chicken embryonic stem cell-like cells were cultivated long-term over several passages of culture without loss of pluripotency in vitro and had the specific expression of key stem cell markers. Furthermore, they showed severe changes in morphology and a significant reduction in pluripotent genes after siRNA-mediated NANOG knockdown. Collectively, these results demonstrate the efficient generation of chicken embryonic stem cell-like cells from EGK stage X blastoderm-derived singularized cells and will facilitate their potential use for various purposes, such as biobanking genetic materials and understanding stemness in the fields of animal biotechnology.
Stored maternal factors in oocytes regulate oocyte differentiation into embryos during early embryonic development. Before zygotic gene activation (ZGA), these early embryos are mainly dependent on maternal factors for survival, such as macromolecules and subcellular organelles in oocytes. The genes encoding these essential maternal products are referred to as maternal effect genes (MEGs). MEGs accumulate maternal factors during oogenesis and enable ZGA, progression of early embryo development, and the initial establishment of embryonic cell lineages. Disruption of MEGs results in defective embryogenesis. Despite their important functions, only a few mammalian MEGs have been identified. In this review we summarize the roles of known MEGs in mouse fertility, with a particular emphasis on oocytes and early embryonic development. An increased knowledge of the working mechanism of MEGs could ultimately provide a means to regulate oocyte maturation and subsequent early embryonic development.
$K^+$ channels are involved in the regulation of a variety of physiological functions, including proliferation, apoptosis and differentiation, in mammalian cells. Our previous study demonstrated that the blockage of $K^+$ channels inhibits mouse early embryonic development. This study was designed to identify the effect of $K^+$ channels during bovine embryonic development. $K^+$ channel blockers (tetraethylammonium (TEA), $BaCl_2$, quinine, ruthenium red and fluoxetine) were added to the culture medium during in vitro fertilization (IVF) for 6 h to first identify the short-term effect of these chemicals. Among $K^+$ channel blockers, fluoxetine, which is used as a selective serotonin reuptake inhibitor, significantly increased the blastocyst formation rate by approximately 6% when compared to control. During the in vitro maturation (IVM) of immature oocytes and the in vitro culture (IVC) of embryos, the oocytes and embryos were exposed to fluoxetine for either a short-term (6 h) or a long-term (24 h) to compare the embryonic development in response to exposure time. The 6 h exposure to fluoxetine during IVM did not affect the blastocyst formation rate, but the rate of blastocyst formation was reduced after the 24 h exposure. On the other hand, embryonic development increased approximately 10% in both groups of embryos exposed to fluoxetine for 6 and 24 h during IVC. Taken together, fluoxetine treatment during IVF and IVC, but not IVM, enhances bovine embryonic development. These results suggest that fluoxetine-modulated signals in oocytes and embryos could be an important factor towards enhancing bovine embryonic development.
Insulin-like growth factors (IGFs), along with IGF-binding protein and IGF receptor, are well-known regulators in the growth and survival of vertebrates. In this study, we investigated the involvement of IGFs and protein variation during embryonic development of the olive flounder (Paralichthys olivaceus). Morphological stages were divided into six main developments as blastula, gastrula, cephalization, cranial regionalization, tail lift, and hatch. During embryonic development, protein variation was investigated using sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and electrospray ionization quadrupole time-of-flight mass spectrometry/mass spectrometry. In addition, the mechanism of signaling of IGF-I receptor was examined using immuno-blot analysis. We found marked changes in protein expression at four stages of embryonic development and identified proteins as belonging to the vitellogenin 2 family. As development progresses, expression of IGF-II, phosphotyrosine, and phospho-Akt increased, while expression of growth factor receptor-bound protein 2 (GRB2) and one of guanine-nucleotide-binding proteins (Ras) decreased. These results provide basic information on the IGF system in the embryonic development of the olive flounder.
Kim, Bo-Hyun;Kim, Chang-Hong;Jung, Kyu-Young;Jeon, Byung-Hun;Ju, Eun-Jin;Choo, Young-Kug
Archives of Pharmacal Research
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제27권1호
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pp.86-93
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2004
Nitric oxide (NO) has emerged as an important intracellular and intercellular messenger, controlling many physiological processes and participating in the fertilization process via the autocrine and paracrine mechanisms. This study investigated whether nitric oxide synthase (NOS) inhibitior (L-NAME) and L-arginine could regulate in vitro fertilization and early embryonic development in mice. Mouse epididymal spermatozoa, oocytes, and embryos were incubated in mediums of variable conditions with and without L-NAME or L-arginine (0.5, 1, 5 and 10mM). Fertilization rate and early embryonic development were significantly inhibited by treating sperms or oocytes with L-NAME (93.8% vs 66.3%,92.1% vs 60.3%), but not with L-arginine. In contrast, fertilization rate and early embryonic development were conspicuously reduced when L-NAME or L-arginine was added to the culture media for embryos. Early embryonic development was inhibited by microinjection of L-NAME into the fertilized embryosin a dose-dependent manner, but only by high concentrations of L-arginine. These results suggest that a moderate amount of NO production is essential for fertilization and early embryo development in mice.
Historical control data have been shown to be valuable in the proper interpretation and validation of reproductive toxicology studies. The present data were compiled from rat fertility and early embryonic development studies conducted at Korea Institute of Toxicology during the 1994∼2001 period. These data were assembled in order to provide background information for the general and reproductive data collected in 11 fertility and early embryonic development studies using Sprague-Dawley rats obtain-ing from the Breeding Facility, Korea Institute of Toxicology, Korea. A total of 274 males and 274 females were used in these studies during the eight-year period. Parameters of fertility and early embryonic development included clinical sign, body weights, food consumption, organ weights, estrus cycle, copulation index, precoital time, fertility index, pregnancy index, sperm parameters, and early embryonic development parameters. Most of the values were comparable to the previous historical control data reported by other investigators. These data can be wed not only as a historical data base for the meaningful interpretation of data from reproductive and developmental toxicity studies, but also as a contribution to biological characterization of Sprague-Dawley rats.
한국응용약물학회 2003년도 Annual Meeting of KSAP : International Symposium on Pharmaceutical and Biomedical Sciences on Obesity
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pp.87-87
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2003
Taurine (2-aminoethanesulfonic acid, $^{+}NH_3CH_2CH_2{SO_3}^{-}$) is endogenous $\beta$-amino acid which is essential in fetal nutrition and development and is present in abundant quantities in several tissues of fetus. In utero, taurine deficiency causes abnormal development and abnormal function of brain, retina, kidney and myocardium. Thus, transfer of taurine into fetus is important during embryonic development. Taurine transporter (TauT) has 12 hydrophobic membrane -spanning domains, which is typical of the $Na^{+}$- and $Cl^{-}$-dependent transporter gene family. Among the various biosynthetic enzymes of taurine, cysteine sulfinic acid decarboxylase (CSD) is the rate-limiting enzyme for biosynthesis of taurine. However, the enzyme activities of taurine biosynthesis are limited in early stage of embryonic development. To analyze the expression period of TauT and CSD during embryonic development, we have investigated the gene expression of TauT and CSD using reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) in mouse and chicken embryos. RT-PCR anaylsis revealed that both TauT and CSD mRNAs were already expressed at Day-4.5 in mouse embryo. In chicken whole embryo, TauT and CSD mRNAs began to appear on developing times of 48 hrs and 12 hrs, respectively. TauT mRNA was detected in the organs of heart, brain and eye of the day-3 chicken embryo. Our data show that TauT and CSD mRNAs were expressed in early stage of embryonic development.
The purpose of this study was to analyze whether FSH and LH hormone treatment directly or indirectly affect embryo development in embryonic development. To determine this, we compared the development of embryonic cells through the expression pattern of MMPs. As a result, 33.8% of blastocysts were formed in FSH added group, 20.8% in LH added group and 10% in FSH + LH added group. In addition, the activity of MMP-9 was highly detected in the FSH-added group, and the expression of Casp-3 was much lower than that of the other groups. These results suggest that the addition of FSH seems to increase the activity of MMP-9 in embryonic cells, and that LH, on the contrary, may activate MMP-2 activity. In addition, the expression level of MMP-2 in the FSH-added group was high in the Trophoblast cell group and in the LH-added group, the hormone ideal secretion might affect the development of the embryonic cell.
Mammalian, including human, spermatozoa undergo morphological and physiological changes during sperm maturation. There were, these changes may affect the fertilization and embryonic development. In this study, we examined the pronucleus formation, pronucleus disappearance and embryonic development in the human oocytes fertilized by intracytoplasmic sperm injection (ICSI). The injected spermatozoa were grouped into ejaculated, epididymal and testicular by the collecting region. Among 363 metaphase II injected oocytes, 287(79.1%) oocytes were normally fertilized and displayed two pronuclei. There were no difference in the fertilization rates and in the pronucleus formation and pronucleus disappearance at 16, 20 and 24 hr after ICSI, among the each spermatozoa group. Also, at 64 hr, the appearance of embryonic development was similar. From these results it can be concluded that there was no difference of maturity among the sperm collected from ejaculated, epididymis and testis in the pronucleus formation and embryonic development. Therefore, testicular spermatozoa are successfully used with ICSI in IVF-ET program.
Homeobox genes play essential roles in embryonic development and reproduction. Recently, a large cluster of homeobox genes, reproductive homeobox genes on the X chromosome (Rhox) genes, was discovered as three gene clusters, ${\alpha}$, ${\beta}$, and ${\gamma}$ in mice. It was found that Rhox genes were selectively expressed in reproduction-associated tissues, such as those of the testes, epididymis, ovaries, and placenta. Hence, it was proposed that Rhox genes are important for regulating various reproductive features, especially gametogenesis in male as well as in female mammals. It was first determined that 12 Rhox genes are clustered into ${\alpha}$ (Rhox1-4), ${\beta}$ (Rhox5-9), and ${\gamma}$ (Rhox10-12) subclusters, and recently Rhox13 has also been found. At present, 33 Rhox genes have been identified in the mouse genome, 11 in the rat, and three in the human. Rhox genes are also responsible for embryonic development, with considerable amounts of Rhox expression in trophoblasts, placenta tissue, embryonic stem cells, and primordial germ cells. In this article we summarized the current understanding of Rhox family genes involved in reproduction and embryonic development and elucidated a previously unreported cell-specific expression in ovarian cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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