Cop protein has been overexpressed in Escherichia coli using a T7 RNA polymerase system. Purification to apparent homogeneity was achieved by the sequential chromatography on ion exchange, affinity chromatography, and reverse phase high performance liquid chromatography system. The molecular weight of the purified Cop was estimated as 6.1 kDa by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). But the molecular mass of the native state Cop was shown to be 19 kDa by an analytical high performance size exclusion chromatography, suggesting a trimer-like structure in 50 mM Tris-HCI buffer (pH 7.5) containing 100 mM NaCl. Cop protein Was calculated to contain $39.1% {\alpha}-helix, 16.8% {\beta}-sheet$, 17.4% turn, and 26.8% random structure. The DNA binding property of Cop protein expressed in E. coli Was preserved during the expression and purification process. The isoelectric point of Cop was determined to be 9.0. The results of amino acid composition analysis and N-terminal amino acid sequencing of Cop showed that it has the same amino acid composition and N-terminal amino acid sequence as those deduced from its DNA sequence analysis, except for the partial removal of N-terminal methionine residue by methionyl-aminopeptidase in E. coli.
An ABC transporter apparatus of the Gram-negative bacterial type I secretion pathway can be used as a secretory protein expression system in Escherichia coli. Four types of coexpression systems for the Pseudomonas fluorescens lipase gene, tliA, and its cognate ABC transporter gene cluster, tliDEF, were constructed. When the relative expression levels were changed by adding different concentrations of IPTG, the secretion (16.9 U/ml of culture) of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was significantly higher than E. coli [pKK223-3+pTliDEFA-184] secreting the lowest level of TliA (5.2 U/ml of culture). Maximal accumulation of the lipase secreted occurred in the mid-exponential phase, implying that the efficient protein secretion via an ABC transporter was restricted only to actively growing cells. Finally, the secretion level of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was increased to 26.4 U/ml by inducing gene expression at the culture initiation time. These results indicate that a significant increase in the ABC transporter-dependent protein secretion can be achieved by simply controlling the relative expression levels between the ABC transporter and its passenger protein, even in the recombinant E. coli cells.
Four young swamp buffalo cows of similar age ranging in weight between 280 to 380 kg and trained to do physical work were used in a study to determine energy and protein requirements for draught using a $4{\times}4$ Latin square designed experiment. The experiment consisted of field trials employing 4 levels of work load, e.g. no work as control, and loads amounting 450 to 500 Newton (N) pulled continuously for 1, 2 and 3 h daily for 14 consecutive days. Cows were fed king grass (Penisetum purpuroides) ad libitum and were subjected to materials balance trials. Body composition was estimated in vivo by the body density method and daily energy expenditure (EE) was calculated from ME minus retained energy (RE). The results show that EE while not working ($EE_{resting}$) was $0.42kgW^{0.75}MJ/d$ and maintenance ME ($ME_m$) was $0.37kgW^{0.75}MJ/d$. ME requirement increased to 1.65 times maintenance for the work of 3 hours. The energy expended for doing exercise ($E_{exercise}$) was 9.56, 20.0 and 25.86 MJ/cow for treatments 1, 2 and 3 II, respectively. Fat retention was absent in all groups of working cows, but protein retention was only negative for cows undertaking 3 h work. The relationship between $E_{exercise}$ (MJ), work load (F, kN), work duration (t, h) and body mass (W, kg) was found to be: $E_{exercise}=(0.003F^{1.43}t^{0.93})/W^{0.09}MJ$. The maintenance requirement for digestible protein was $2.51kgW^{0.75}g/d$, whereas digestible protein for growth ($DP_{growth}$) and for work ($DP_{work}$) followed the equations: $DP_{growth}=[(258+1.25W^{0.75}){\Delta}Wkg/d]g$ and $DP_{work}=[12.59e^{0.95t}]g$, respectively The coefficients a, b and c for the calculation of $E_{exercise}$ components according to the Lawrence equation were found to be 2.56 J/kgW.m, 5.2 J/kg load carried.m and 0.29, respectively, thus efficiencies to convert ME into work were 0, 16.09, 27.3 and 32.44% for control, 1, 2 and 3 h/d work, respectively. ME and DP requirements for a 250 to 400 kg working buffalo cow allowing to growth up to 0.5 kg/d are presented.
The tumor necrosis factor (TNF)-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) initiates the extrinsic apoptotic pathway through formation of the death-inducing signaling complex (DISC), followed by activation of effector caspases. TRAIL receptors are composed of death receptors (DR4 and DR5), decoy receptors (DcR1 and DcR2), and osteoprotegerin. Among them, only DRs activate apoptotic signaling by TRAIL. Since the levels of DR expressions are higher in cancer cells than in normal cells, TRAIL selectively activates apoptotic signaling pathway in cancer cells. However, multiple mechanisms, including down-regulation of DR expression and pro-apoptotic proteins, and up-regulation of anti-apoptotic proteins, make cancer cells TRAIL-resistant. Therefore, many researchers have investigated strategies to overcome TRAIL resistance. In this review, we focus on protein regulation in relation to extrinsic apoptotic signaling pathways via ubiquitination. The ubiquitin proteasome system (UPS) is an important process in control of protein degradation and stabilization, and regulates proliferation and apoptosis in cancer cells. The level of ubiquitination of proteins is determined by the balance of E3 ubiquitin ligases and deubiquitinases (DUBs), which determine protein stability. Regulation of the UPS may be an attractive target for enhancement of TRAIL-induced apoptosis. Our review provides insight to increasing sensitivity to TRAIL-mediated apoptosis through control of post-translational protein expression.
Dihydrolipoamide dehydrogenase (E3) belongs to the protein family of pyridine nucleotide-disulfide oxidoreductases, including glutathione reductase (GR). The two subunits of human GR are covalently linked by an intersubunit disulfide bond between the pair of the Cys-90 residues. The corresponding residue (Ser-79) in human E3 was substituted to Cys using site-directed mutagenesis. The mutant was expressed in Escherichia coli and highly purified using an affinity column. About 40% of the mutants formed a spontaneous intersubunit disulfide bond linkage. This result implies that Ser-79 and possibly surrounding residues constitute one of the several intersubunit contact regions in human E3. It provides another good piece of evidence for the predicted high degree of the structural homology between human E3 and GR. Spectroscopic studies indicate conformational changes in the mutant.
Little attention has been paid to the specificity between E2 and the target protein during ubiquitination, although RING-E3 induces a potential intra-molecular reaction by mediating the direct transfer of ubiquitin from E2 to the target protein. We have constructed artificial E2 fusion proteins in which a target protein (p27) is tethered to one of six E2s via a flexible linker. Interestingly, only three E2s (UbcH5b, hHR6b, and Cdc34) are able to ubiquitinate p27 via an intra-molecular reaction in this system. Although the first ubiquitination of p27 (p27-Ub) by Cdc34 is less efficient than that of UbcH5b and hHR6b, the additional ubiquitin attachment to p27-Ub by Cdc34 is highly efficient. The E2 core of Cdc34 provides specificity to p27, and the residues 184-196 are required for possessive ubiquitination by Cdc34. We demonstrate direct E2 specificity for p27 and also show that differential ubiquitin linkages can be dependent on E2 alone.
Egg yolk is widely used to extract lecithin, which is utilized in the food and cosmetics industry. After lecithin is removed, the rest of egg yolk is generated as a by-product. Thus, it is necessary to properly utilize it. In this study, egg yolk protein extracts were produced using ethanol (EYE-E) and water (EYE-W). Their antioxidant and immunomodulatory effects were then evaluated. Antioxidant activities of EYE-E and EYE-W were determined using cellular antioxidant capacity (CAC) assay and comet assay. EYE-E and EYE-W showed significant (p<0.05) scavenging effects on intracellular reactive oxygen species (ROS) in a dose dependent manner. At a concentration of 50 ㎍/mL, EYE-W showed higher (p<0.05) antioxidant activity than EYE-E. EYE-E and EYE-W also exhibited protective effects against DNA damage caused by oxidative stress. After treatment with EYE-E and EYE-W, DNA damage level of 48.7% due to oxidative stress was decreased to 36.2% and 31.8% levels, respectively. In addition, EYE-E and EYE-W showed immunomodulatory effects by regulating Th1 cytokines (TNF-α and IL-2) and Th2 cytokines (IL-10 and IL-4) in Balb/c mouse splenocytes. These data suggest that EYE-E and EYE-W could be used as functional food ingredients with excellent antioxidant and immunomodulatory activities in the food industry.
This study evaluated the fermentation characteristics and protein degradation dynamics of wet green tea grounds (WGTG) silage. The WGTG was ensiled with distilled water (control), or lactic acid bacteria (LAB), enzyme (E), formic acid (FA) and formaldehyde (FD) prior to ensiling. Three bag silos for each treatment were randomly opened at 0, 3, 7, 14, 28 and 60 days after anaerobic storage. For all the treatments, except for FA, there was a rapid decline in pH during the first 7 days of ensiling. LAB treatment had higher lactic acid content, lower ammonia-N ($NH_3$-N) and free-amino nitrogen (FAA-N) contents than other treatments (p<0.05). E treatment had higher lactic acid, water-soluble carbohydrates (WSC) and non-protein nitrogen (NPN) content than the control (p<0.05). FA treatment had higher $NH_3$-N and FAA-N content than the control (p<0.05). FD treatment had lower NPN and FAA-N content than the control, but it did not significantly inhibit the protein degradation when compared to LAB treatment (p>0.05). Results indicate that LAB treatment had the best effect on the fermentation characteristics and protein degradation of WGTG silage.
The enzymatic properties for NADPH-P450 reductase domain of a fusion protein between human cytochrome P450 1A1 and rat NADPH-P450 reductase expressed in Escherichia coli were investigated. The fusion plasmid pCW/1A1OR-expressed E. coli membrane showed high NADPH-cytochrome c reductase activity ($830.1\pm 85.8 nmol\cdot min^{-1}\cdot mg protein^{-1}$), while pCW control vector and P 450 1A1 expression vector pCW/1A1 showed relatively quite low activity ($4.35\pm 0.49, 3.27\pm 0.50 nmol\cdot min^{-1}\cdot mg protein^{-1}$, respectively). The kinetic curves for NADPH-cytochrome c reductase followed typical Michaelis-Menten kinetics. The $K_{max}$ and $V_{max}$ for NADPH-dependent reductase activity were $8.24\pm 2.61\mu $and $817.9\pm 60.8 nmol\cdot min^{-1}\cdot mg protein^{-1}$, respectively, whereas those for cytochrome c-dependent reductase activity were $19.97\pm 2.86\mu M$ and $1303.5\pm 67.1 nmol\cdot min^{-1}\cdot mg protein^{-1}$. The reductase activities were also compared with those of rat, porcine and human liver microsomes. The activity of pCW/ 1A1OR-expressed E. coli membrane was 15.2-fold higher than that of rat liver microsome. Treatment with benzo(a)pyrene, 7-ethoxyresorufin and $\alpha$-naphthofiavone which are known as specific substrates or inhibitor for human P450 1A1 increased NADPH-cytochrome c reductase activity of fusion protein in E. coli membrane dose-dependently. These results demonstrate that the membrane topology of fused enzyme may be important for activity of its NADPH-P450 reductase domain.
We assessed heterologous protein expression in 64 strains obtained from the Escherichia coli Reference (ECOR) collection, a collection representing diverse natural E. coli populations. A plasmid generating a glutathione S-transferase and plant carbonic anhydrase fusion protein (GST-CA) under the control of the tac promoter was introduced into the ECOR strains, and the quantity of the fusion protein was determined by SDS-PAGE. The foreign protein was generated at various levels, from very high (40 strains, high producers) to very low (six strains, low producers). Immunoblotting showed that the high producers expressed approximately 250-500 times more GST-CA protein than the low producers. The results of semi-quantitative RT-PCR showed that the low producers generated mRNA levels comparable to those of the high producers, thereby suggesting that, at least in this case, inefficient translation is a major cause of the low production. We introduced a different plasmid, which expressed a maltose binding protein and plant guanylate kinase fusion protein (MBP-GK) into the six low producers. Interestingly, five of these expressed MBP-GK at very high levels. Thus, we conclude that the production of a particular protein from an expression vector can vary considerably, depending on the host strain. Strains in the ECOR collection could function as useful alternative hosts when a desired level of protein expression is not obtained from commonly used strains, such as E. coli K12 or B derivatives.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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