During meiosis, genetic recombinants are formed by homologous recombination accompanying with the programmed double-strand breaks (DSBs) and strand exchanges between homologous chromosomes. The mechanism is generated by recombination intermediates such as single-end invasions (SEIs) and double-Holliday junctions (dHJs), and followed by crossover (CO) or non-crossover (NCO) products. Our study was focused on the analysis of meiotic recombination intermediates (DSBs, SEIs, and dHJs) and final recombination products (CO and NCO). We identified these meiotic recombination intermediates using DNA physical analysis under HIS4LEU2 "hot spot" system in budding yeast, Saccharomyces cerevisiae. For DNA physical analysis, when the hot spot locus is recognized by restriction enzyme from synchronous meiotic cells, the fragmented DNA that are forming recombination intermediates can be detected and quantified through Southern hybridization analysis. Our study suggests that this system can analyze the structural change of recombination intermediates during DSB-SEI transition, double-Holiday junctions and crossover/non-crossover products in meiosis.
Telomeres consist of TTAGGG tandem repeated DNA sequences with specific proteins and locate at chromosome ends. Telomeres are essential for chromosome stability and are related with cell senescence, apoptosis and cancer. Telomerase is a ribonucleoprotein which has a template for the synthesis of telomeric DNA. This study was carried out to analyze the amount of telomeric DNA and telomerase activity in cattle cells. Analysis of the quantity of telomere in lymphocytes was done at different ages, sex and among Korean cattle and Holstein breeds. The telomerase activity was also analyzed in liver, brain, heart, kidney, and testis tissues of fetal calf and of 18 month old cattle. The amount of telomeres in lymphocytes and other tissue cells was analyzed by Quantitative-Fluorescence in situ Hybridization (Q-FISH) technique using a telomeric DNA probe. Telomerase activity was analyzed by Telomeric Repeat Amplification Protocol assay (TRAP). The amount of telomeric DNA on the lymphocytes during the whole life span was decreased along with age. Quantity of telomeres in Korean cattle was significantly higher than that in Holstein breed. The amount of telomeric DNA in males was significantly higher than that in females. Telomerase activity was up-regulated in most bovine tissues during fetal stage, but was down-regulated in most tissues at mature 18 month age except the testis cells. This study indicates that the amount of telomeres and telomerase activity of cells can be used as an age marker or/and a physiological marker of cattle.
Calli were induced from the petiole explants of Pimpinella brachycarpa on MS medium supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BA after four weeks of culture. Compact clusters of small and dense cells among these calli were selected and suspension-cultured as the source of embryogenic calli. When transferred to MS medium with 0.1 mg/L NAA, the suspension-cultured cells grew to embryogenic callus. Somatic embryos derived from these embryogenic calli developed into plantlets. The cDNA library was constructed in the embryogenic callus and in order to screen the cDNA library, these cDNAs were plated at a density 1.5 $\times$ 10^5 plaques per 15 cm petridish. Among 19 clones showing preferential hybridization with petiole HD-Zip gene, five clones were obtained after second screening. Four clones among them, were highly homologous to P. brachycarpa shoot-tip Phz4 gene, but one clone, Phc5 was about 1.5 kb which has an extra 163 bp to 5' upstream of Phz4. The Phc5 was 1,531 bp containing poly A tails of 18 bases. ATG start codon for Phc5, was located at position 284 with an open reading frame of 906 by which encodes a polypeptide of 302 amino acids. The Phc5 protein revealed that the polypeptides between 135 and 195 contain a homeodomain as the `leucine zipper' motif.
The homology among the genes coding for degradation of bipheny(BP) and 4-chlorobiphenyl(4CB) was comparatively analyzed by Southern hybridization in several BP/4CB degrading bacterial strains. As the hybridization results of their genomic DNAs with pcbABCD as the DNA probe, the group of Pseudomonas sp. DJ-12. P08 and P27 strain was separated by the group of P20 and P1242 strains. The P. pseudoalcaligenes KF707 showed the hybidization signal which was homologous to the group of DJ-12, but they had different restriction endonuclease sites. The pcbAB genes in pCUl recombinant plasmid from Pseudomonas sp. DJ-12 appeared to be homologous to pchAB genes in pKTF20 cloned from P. pseudoalcaligenes KF707, but the C genes in both strains were not homologous. The bphABC in pKTF20 showed the signals homologous to the cbp ACB in pAW6194 cloned from P. putida OU83, but homologous signal was not found botween the pcbABCD genes in pCUl and the cbpADCB genes in pAW6194 recombbinant plasmid.
The aim of the present study was to develop a sensitive and specific assay for the diagnosis of alcelaphine herpesvirus 1 (AlHV-1) which is a cause agent of malignant catarrhal fever in ruminants. A1HV-1 is a gamma herpesvirus, which is frequent latent, and it is often difficult to detect its antigens or specific nucleic acids because of its low genomic copies in the infected tissues. In this study, polymerase chain reaction (PCR)-dot blot hybridization (DBH) assay for detecting AlHV-1 DNA was developed and evaluated for its sensitivity and specificity as comparison with PCR and DBH alone. The developed PCR-DBH was more sensitive than PCR or DBH alone and also very specific. The results showed that the sensitivity of PCR-DBH were higher and stronger than those of PCR and DBH alone. This PCR-DBH assay can be applied efficiently to confirm the presence of AlHV-1 virus on clinical samples and to differentiate specifically between AlHV-1 infection and other viral infections.
Using in situ hybridization, we have mapped the anatomical localization of perikarya containing myNA that codes for sonadotropin releasing hormone (GnRH) in the brains of female frogs, R. dybowskii. DNA olisomers, with sequences complementary to the GnRH portion of pro-GnRH myNA sequence, were synthesized and hybridized to paraformaldehvde-fixed, sagittal sections of the whole brain stem. The distribution of the GnRH mRNA containing cell bodies was similar to that described for GnRH peptide by immunohistochemistrv. That is, cells containing GnRH mRNA were observed in the medial septal area, anterior preoptic area, ventromedial hvpothalamus and infundibular regions. However, another cell groups which contains GnRH mRNAs were also detected by in situ hybridization in the bed nucleus of hippocampal commissure, preoptic area, nucleus infundibularis dorsalis, mesencephalic nuclei and intermediolateral cell column of spinal cord areas. These results demonstrate the feasibility of using in situ hybridization as a strategy to study the distribution of GnRH neurons and the detection of GnRH gene expression in the vertebrates.
Xiang, Zhi Feng;Zhang, Jin Zhou;Li, Xue Bin;Xie, Hong Bin;Wang, Qing Hua
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.23
no.1
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pp.17-24
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2010
In the antral follicle phase, several layers of cumulus cells surround the oocyte and play an important support and regulation role in oocyte development and maturation via intercellular communications and interactions between oocytes and cumulus cells. However, information on stage specific gene expression in swine during the phase is not well understood. To investigate the function of cumulus cells during in vitro maturation of porcine oocytes and gene expression, suppression subtractive hybridization (SSH) was performed to screen genes that were differentially expressed between cumulus-oocyte complexes (COCs) and naked oocytes (NOs). Utilizing mRNAs from in vitro maturation oocytes, a SSH cDNA library from COCs as the tester and NOs as the driver was constructed. The SSH cDNA library was then screened using dot blot analysis. Results showed that a total of 70 clones randomly selected from the library were differentially expressed. Among these, 41 exhibited high homology to known genes and 11 were novel expressed sequences tags (ESTs). Four differentially expressed genes, including bfgf, sprouty 2, egr and btc, were further studied by real time quantitative PCR; results confirmed an increased expression of respective mRNA in COCs compared with NOs, which suggests that these factors may play an important role in oocyte development and maturation.
Sohn, S.H.;Lee, C.Y.;Ryu, E.K.;Han, J.Y.;Multani, A.S.;Pathak, S.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.15
no.11
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pp.1531-1535
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2002
It has been known that the sex of chicken cells can be most accurately identified by fluorescence in situ hybridization (FISH). However, the presently available FISH has not been widely used for sex identification, because the procedures for cell preparation and FISH itself are complicated and time-consuming. The present study was undertaken to test a rapid FISH procedure for sexing chicken. A FISH probe was simultaneously synthesized and labeled with digoxigenin by polymerase chain reaction (PCR) targeting a 416 bp segment of the 717 bp XhoI family fragment which is repeated over 10 thousand times exclusively in the W chromosome. Sexing by FISH was performed on cytological preparations of early embryos, adult lymphocytes and feather pulps of newly hatched chicks. The DNA probe hybridized to all types of uncultured interphase as well as metaphase female but not male cells that had been examined. Moreover, consistent with the known site of the XhoI family, the hybridization signal was localized to the pericentromeric region of the W chromosome. We, therefore, conclude that the present PCR-based FISH can be used as a rapid and reliable sex identification procedure for chicken.
An autonomous replication sequence (ARS) derived from Cephalosporium acremonium ATCC 20339 was cloned in Sarchuromyces cerevisiae SHY 3 using YIp5 as a cloning vector. A new recombinant plasmid, designated pCY-2, which contained a 3.7 kb BamHI fragment of C. acrenzonium DNA showed the highest stability among the 40 recombinant plasmids composed of the YIp5 2nd ARS of C. ucremoniztm. Also, Southern hybridization and transformation of E, cull with DNA purified from yeast transformants verified that pCY-2 autonomously replicates in yeasts. Transformation efficiency and plasmid stability of pCY-2 in yeast were higher than those ol YRp 7 containing ARS which originated from yeast. Detailed studies by subcloning revealed that two ARSs existed within 2.6 kb of the insert, which is a novel discovery. However, it was concluded that these two ARSs were ligated during the gene manipulation in vitro.
Brain dopamine systems play a central role in the control of movement, hormone release, and many complex behavior. The action of dopamine at its synapse is terminated predominately by high affinity reuptake into presynaptic terminals by dopamine transporter (DAT). The dopamine transporter(DAT) is membrane protein localized to dopamine-containing nerve terminals and closely related with cocaine abuse, Parkinsonism, and schizophrenia. In present study, the recombinant plasmid pRc/CMV-DAT, constructed by subcloning of a cDNA encoding a bovine DAT into eukaryotic expression vector pRc/CMV, was stably transfected into CV-1 cells(monkey kidney cell line). The DAT activities in the cell lines selected by Geneticin$^{R}$ were determined by measuring the uptake of $[^3H]$-dopamine. The transfected cell lines showed 30-50 fold higher activities than untransfected CV-1 cell line, and this result implies that DAT is well expressed and localized in transfected cells. The transfected cells accumulated $[^3H]$-dopamine in a dose-dependent manner with a $K_{m}$ of 991.6nM. Even though high doses of norepinephrine, epinephrine, serotonin, and choline neurotransmitters inhibited the uptake of $[^3H]$-dopamine, DAT in transfected cell line was proven to be much more specific to dopamine. The psychotropic drugs such as GBR12909, CFT, normifensine, clomipramine, desipramine, and imipramine inhibited significantly the dopamine uptake in tissue culture cells stably transfected with DAT cDNA. Radioactive in situ hybridization was done to map the cellular localization of DAT mRNA-containing cells in the adult rat central nervous system. The strong hybridization signals were detected only in the substantia nigra pars compacta and ventral tegmental area. The restricted anatomical localization of DAT mRNA-containing cells confirms the DAT as a presynaptic marker of dopamine-containing cells in the rat brain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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