dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase (TDPDH) catalyzes the conversion of dTDP-D-glucose to dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, and requires $NAD^+$ as a coenzyme for its catalytic activity. The dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase from Streptomyces antibioticus $Tu{\ddot}99$ tightly binds $NAD^+$ [19]. In order to determine the role of lysine-148 in the $NAD^+$ binding, the lysine of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase from Streptomyces antibioticus $Tu{\ddot}99$ was mutated to various amino acids by site-directed mutagenesis. The catalytic activity of the four mutated enzymes of TDPDH did not recover after addition of $NAD^+$ . However, the activity of K159A, the mutated enzyme of UDP-D-glucose 4-epimerase (UDPE), recovered after the addition of $NAD^+$ [15]. Although dTDP-glucose 4,6-dehydratase, and UDP-galactose (glucose) 4-epimerase are members of the short-chain dehydrogenase/reductase SDR family and the lysine-148 of TDPDH was highly conserved as in UDPE (Lys-159), the function of the lysine-148 of TDPDH was different from that of UDPE. The mutated enzymes showed that the lysine-148 of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase played no role in the $NAD^+$ binding. Accordingly, it is suggested that the lysine-148 of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase is involved in the folding of TDPDH.
Parenchyma cells of Streptanthus tortus suspension cultures possessed the different transport system for aldose-formed D-glucose and for ketose-formed D-fructose. $K_{m}$ value for D-glucose and D-fructose were 0.28mM and 15.02mM, respectively. $K_{m}$ value of D-mannose was 0.44 mM which is similar to the D-glucose transport system, but D-mannose was transported also through its own special uptake system. Parenchyma cells possessed the transport system of L-glucose, but the function of L-glucose was not known at all. Protoplast of parenchyma cells possessed only the monosugars transport system, but didn't possess the disugars, sucrose transport system. Early developing phloem protoplasts possessed glucose and sucrose transport system at the same time. On the contrary, in the complete developed phloem cells disappeared preexisted glucose transport system in the parenchyma cells, only new induced sucrose transport system existed.ted.
A source of D-xylose was required for the enhanced production of D-glucose isomerase of Streptomyces sp. strain K-17. D-glucose supported the luxuriant growth of the organism as well as D-xylose, but D-glucose isomerase activity was hardly detected in the D-glucose-grown cells. When the D-glucose-grown cells were incubated aerobically for a few hours in 0.5% xylose solution in 0.05 M phosphate buffer, pH 7.0, it was found that inductive formation of D-glucose isomerase occurred in the cells without multiplication. In the non-growth phase of cells the inductive formation of D-glucose isomerase occurred because a source of nitrogen for the synthesis of enzymes was obtained from turnover of protein accumulated in cells. D-ribose, L-arabinose, D-glucose, D-mannose, citrate, succinate and tartrate could not induce the formation of D-glucose isomerase, but D-xylose could induce. Inductinn of D-glucose isomerase was repressed by D-glucose and its catabolites : glycerol, succinate and citrate. Inductive formation of the enzymes in the non-growth phase was stimulated by $Ba^{2+}$, $Mg^{2+}$ and $Co^{2+}$, and inhibited by C $u^{2+}$, C $d^{2+}$, A $g^{+}$and H $g^{2+}$. The synthesis of enzymes in the induction system composed of 0.5% xylose solution was disrupted by actinomycin D, streptomycin, chloramphenicol, kanamycin, tetracycline, p-chloromercuribenzo ate, arsenate and 2, 4-dinitrophenol, but not disrupted by mitomycin C and penicillin G.icillin G.
The deoxysugar biosynthetic gene cluster of Sch 47554/Sch 47555 was cloned from Streptomyces sp. SCC-2136. One of the ORFs, schS6, appeared to encode glucose-1-phosphate thymidylyltransferase, which converts dTTP and glucose-1-phosphate to TDP-D-glucose and pyrophosphate. The dTDP-D-glucose is a key metabolite in prokaryotics as a precursor for a large number of modified deoxysugars, and these deoxysugars are a maj or part of various antibiotics, ranging from glycosides to macrolides. SchS6 was expressed in E. coli vector pSCHS6 and the expressed protein was purified to apparent homogeneity by ammonium sulfate precipitation and Ni-NTA affinity column chromatography. The specific activity of the purified enzyme increased 4.7-fold with 17.5% recovery. It migrated as a single band on SDS-PAGE with an apparent molecular mass of 56kDa. The purified protein showed glucose-1-phosphate thymidylyltransferase activity, catalyzing a reversible bimolecular group transfer reaction. In the forward reaction, the highest activity was obtained with combination of dTTP and ${\alpha}-D-glucose-1-phosphate$, and only 12% of that activity was obtained with the substrates $UTP/{\alpha}-D-glucose-1-phosphate$. In the opposite direction, the purified protein was highly specific for dTDP-D-glucose and pyrophosphate.
dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase as an oxidoreductase catalyzes the conversion of dTDP-D-glucose to dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, which is essential for the formation of 6-deoxysugars. dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase shows remarkable sterochemical convergence in which displacement of the C-6 hydroxyl group by a C-4 hydrogen proceeds intramolecularly with inversion of configuration. The reaction mechanism is known to be oxidation, dehydration, and reduction by bases mediating proton transfer and $NAD^+$ cofactor. In this study, the bases in the active site domain are proposed to be His-79 and His-300 from a comparison of the peptides of the dehydratase and UDP-D-glucose epimerase. His-79 and His-300 were mutated to prepare the mutants H79L (mutation of histidine to leucine at the 79th amino acid) and H300A (mutation of histidine to alanine at the 300th amino acid) by site-directed mutagenesis. The H79L protein was inactive, showing that His-79 participates in the reaction mechanism.
Unlike the mammalian glucose transporter GLUT1, little is known about the nature of the endogenous sugar transporter(s) in insect cells. In order to establish the transport characteristics and other properties of the sugar transport proteins of Sf9 cells, a series of kinetic analyses was performed. A saturable transport system for hexose uptake has been revealed in the insect cells. The apparent affinity of this transport system(s) for 2-deoxy-D-glucose was relatively high, the $K_m$ for uptake being <0.5 mM. To further investigate the substrate and inhibitor recognition properties of the insect cell transporter, the ability of other sugars or drugs to inhibit 2-deoxy-D-glucose transport was examined by measuring inhibition constants ($K_j$). Transport was inhibited by D-mannose, D-glucose, and D-fructose. However, the apparent affinity of the C-4 epimer, D-galactose, for the Spodoptera transporter was relatively low, implying that the hydroxyl group at the C-4 position may play a role in the strong binding of glucose and mannose to the transporter. The results also showed that transport was stereoselective, being inhibited by D-glucose but not by L-glucose. It is therefore concluded that insect cells contain an endogenous glucose transport activity that in several aspects resembles the human erythrocyte glucose transporter. However, the mammalian and insect transporters were different in some of their kinetic properties, namely, their affinities for fructose and for cytochalasin B.
The baculovirus/insect cell expression system is of great value in the study of structure-function relationships in mammalian glucose-transport proteins by site-directed mutagenesis and for the large-scale production of these proteins for mechanistic and biochemical studies. Spodoptera frugiperda Clone 21 (Sf2l) cells grow well on TC-100 medium that contains $0.1\%$ D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transporters. However, very little is known about the properties of the endogenous sugar transporter(s) in Sf2l cells, although a saturable transport system for hexose uptake has been previously revealed in the Sf cells. In order to further examine the substrate and inhibitor recognition properties of the Sf2l cell transporter, the ability of hexoses to inhibit 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) transport was investigated by measuring inhibition constants $(K_i)$. The $K_i's$ for reversible inhibitors were determined from plots of uptake versus inhibitor concentration. Transport was effectively inhibited by D-mannose and D-glucose. Of the hexoses tested, L-glucose had the least effect on 2dGlc transport in the Sf2l cells, indicating that the transport is stereoselective. Unlike the human HepG2 type glucose transport system, D-mannose had a somewhat greater affinity for the Sf2l cell transporter than D-glucose, implying that the hydroxyl group at the C-2 position is not necessary for strong binding. However, epimerization at the C-4 position of D-glucose (D-galactose) resulted in a dramatic decrease in affinity of the hexose for the Sf2l cell transporter. Such a lowering of affinity might be the result of the involvement of the C-4 hydroxyl in hydrogen bonding. It is therefore suggested that Sf2l cells were found to contain an endogenous sugar transport activity that in several aspects resembles the human HepG2 type glucose transporter, although the insect and human transporters do differ in their affinity for cytochalasin B.
Kim, Ki-Chan;Lee, Seung-Don;Han, Ju-Hee;Sohng, Jae-Kyung;Liou, Kwang-Kyoung
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.749-754
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2000
PCR primers were designed based on consensus sequences of dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase, one of the enzymes involved in the biosynthesis of deoxysugar. The PCR product (360 bp) was obtained from Thermus caldophilus GK24. Colony hybridization was carried out to the cosmid library constructed from T. caldophilus GK24 genomic DNA by the PCR product DNA fragment. We isolated a cosmid clone (pSMTC-1) that was subcloned to call pKCB series plasmid (BamHI fragments), partially sequenced and analyzed. pKCB80 (4.2 kb-BamHI DNA fragment) of them showed ORFs that was orfA, orfB, orfC and orfD. The orfABCD gene cluster is the deosysugar biosynthetic gene ; orfA (glucose-1-phosphate thymidylytransferase), orfB (dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase), orfC (dTDP-4-keto-L-rhamnose reductase) and orfD (dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose 3,5-epimerase). The gene cluster that was related in biosynthesis of dTDP-L-rhamnose was also identified by computer analysis, and we proposed that the biosynthetic pathway of deoxysugar analyzed from DNA sequencing of pKCB80 is from D-glucose-1-phosphate, dTDP-D-glucose, dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose via dTDP-4-keto-L-rhamnose to dTDP-L-rhamnose.
Kim, Sang Suk;Bang, Jung-Hee;Hyun, Chang-Gu;Kim, Joo-Woo;Han, Jae-Jin;Suh, Joo-Won
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.43
no.3
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pp.136-140
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2000
A novel 6-deoxyhexose biosynthetic gene cluster different from the one for the biosynthesis of streptomycin was isolated from Streptomyces griseus using specifically designed PCR primers to compare the sequence of known dTDP-glucose synthase genes. We cloned a 5.8-kb DNA from Streptomyces griseus ATCC10137, which contained the 4-ketoreductase homologue (grsB), dTDP-glucose synthase (grsD), and dTDP-glucose 4, 6-dehydratase (grsE) genes. Escherichia coli cultures containing plasmid of the PCR product which encoded the grsE region under the controUed T7 promoter were able to catalyze the formation of dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose from TDP-glucose. The enzyme showed high substrate specificity, being specific to only dTDP-glucose that is known to be incorporated into secondary metabolites such as antibiotics.
Gestational diabetes mellitus(GDM) is likely to develop type 2 diabetes mellitus, cardiovascular disease, metabolic syndrome after delivery. Infants of diabetic women have higher incidence of congenital malformations than those of non-diabetic women. This study was performed to determine elevation factors associated with increased blood glucose in 350 pregnant women. Subjects were examined in June, 2011 to September, 2011 in Geongnam province. Fasting blood glucose, total cholesterol, triglyceride levels were measured by Olympus AU 680, and their body mass index (BMI) calculated. The mean total cholesterol levels were 223.22 mg/dL, triglyceride 188.38 mg/dL, and fasting blood glucose 100.18 mg/dL. Serum glucose level was significantly higher in the age group of 40 years($109.51{\pm}16.26mg/dL$) than 20 years and 30 years. And increase in triglyceride(>250 mg/dL) was significantly related to high blood glucose level($110.83{\pm}24.78mg/dL$), and increase in BMI(>26) was significantly related to high blood glucose level($114.03{\pm}27.09mg/dL$). However, cholesterol levels were not significantly related to high blood glucose level. In conclusion, the significant elevation factors in relation to the glucose levels were age, triglyceride, and BMI.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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