The optimum temperature and pH for mycelial growth of B. bassiana DGUM 34001 were $24^{\circ}C$ and pH 7.0, respectively. Among the complex media used, mushroom complex medium (MCM) was the most favorable for mycelial growth. When Czapek-Dox medium was used as a minimal medium, glucose was an excellent source for carbon and energy. Soytone and sodium phosphate were favorable constituent for culture medium as a source of organic nitrogen and phosphorus, respectively. When the fungus was grown in MCM broth, the specific activity of extracellular enzyme of ${\alpha}$-amylase, lipase, chitinase, CMCase and pretease were 297.0, 0.058, 0.33, 0.21 and 22.8 units/mg protein, respectively. When various sources of organic nitrogen and chitin were supplemented to determine the production of enzymes, casein and soluble chitosan enhanced the production of extracellular protease and chitinase.
The active sites of the nickel and iron-containing enzyme, carbon monoxide dehydrogenase (CODH) from clostridium thermoaceticum were investigated using Electron Paramagnetic Resonance (EPR) technique. CODH exhibits several spectral features called NiFeC, $g_{ave}=1.82$, $g_{ave}=1.86$. FCII signals which are originated from different clusters in this enzyme. CODH is know to catalyze two different kinds of reactions - acetyl-CoA synthesis and CO oxidation. The acetyl-CoA synthesis activity can be followed by monitoring CO/acetyl-CoA exchange. The addition of 1,10-phenanthroline (phen) to CODH selectively destroyed the CO/acetyl-CoA exchange activity and eliminated the NiFeC signal completely. CO oxidation activity and other EPR signals were unaffected. Such behavior demonstrates that CODH has two distinct active sites and that the NiFe complex is only responsible for the CO/acctyl-CoA exchange activity. Phen caused the removal of only 30% of Ni in the NiFe complex ($0.3Ni/{\alpha}{\beta}$) as shown by the quantitative metal analysis. The phen-treated CODH could be reactivated fully by incubation In $Ni^{2+}$ solution. Radioactive $^{63}Ni^{2+}$ was used to quantitate the amount of the $Ni^{2+}$ incorporated into phen-treated enzyme and showed that the amount was the same as the removed by the phen treatment. i.e. $0.3Ni/{\alpha}{\beta}$. This indicates that only 30% of NiFe complexes are labile and responsible for the CO/acctyl-CoA exchange activity, the other 70% are non-labile and have no exchange activity. This is the first clear evidence that the NiFe complex is heterogencous and labile and non-labile Ni sites arc interacting differently with substrates and chelating agents like phen.
We have recently found that a detergent-resistant raft like membrane (DRM) can be prepared from bovine rod outer segment membranes as a low-density buoyant fraction in sucrose density gradient ultracentrifugation. G protein (transducin) and its effector enzyme (phosphodiesterase: PDE) drastically change their affinities to DRM in the process of phototransduction. We report here that the recruitment of transducin and/or $^2$PDE to DRM has close relationship with their states in signal transduction. Active T$\alpha$/PDE-complex has a high affinity to DRM, whereas inactive transducin, or inactive PDE are excluded from DRM. Active T$\alpha$/PDE-complex seems to bind to a GTPase activating protein (GRS9) in multi- protein complexes localized on DRM. Physiological significance of the multi-protein complex on the raft-like membrane in vertebrate phototransduction would be discussed.
Inclusion complex of omeprazol with $\beta$-Cyclodextrin and Hydroxypropyl-$\beta$-Cyclodextrin were prepared by coprecipitation and freeze-drying method respectively. Effects of these inclusion complex on RBCs were monitored with a spectrophotometer by the method of Kahan et al. and the mutagenic activity based on the Ames plate incorporation test in the presence and absence of liver microsomal enzyme(S9 fraction) using Salmonella typhimurium TA98 and TA100. The RBCs hemolysis and mutagenic activity of these complex were not detected.
The multicatalvtic 205 proteasome consisting of 12-15 subunits of 22-35 kDa is the catalytic core of the ATP/ubiquitin-dependent 26S protease complex that also is comprised of multiple subunits of 22-110 KDa. In order to determine whether the proteolvtic activities change during muscle development, the enzyme preparations were obtained from 11-, 14- and 17-day old chick embryonic muscle using a BioGel A-1.5m column. The 26S complex preparation from 14- or 17-day old muscle hvdr olvz e d both N -s uccinvl- Le u- Le u -Val-Tvr-7- amido -4- methvlco umarin ( Suc- LLVY- AMC) and ubiquitin-Ivsozvme conjugates about 50% as well as that from 11-day old muscle. In addition, the activity of 20S proteBsome against Suc-LLVY-AMC also decreased by about 20-30%. However, the protein level of 265 complex remained constant during the entire development period, while that of 205 proteasome increased 5- to 6-fold, as analyzed by nondenaturins polyacrvlamide gel elenrophoresis followed by immunoblot analysis using the antibodies raised against the purified enzymes. Thus, the specific activity of 20S proteasome against the peptide must decrease rather dramatically during the muscle development. These results suggest that the development-dependent changes in the proteolytic activities of both 20S proteasome and 26S protease complect from embryonic muscle are due to alterations in the expression of certain subunits in the enzvmes that are responsible for their specific cataIVtic functions but not to overall changes in the enzyme amounts.
To investigate recovery, growth, and activity of hepatocyte in primary culture after cell separation, the authors followed up the marker enzyme activities of golgi complex, mitochondria and biologic membrane. Thiamine pyrophosphatase, the marker enzyme of golgi complex, activity approached the level of long term culture at 4th day. Succinate dehydrogenase, the marker enzyme of mitochondria, activity decreased with time, then it maintained constant level after 4th day. Alkaline phosphatase, the marker enzyme of biological membrane, activity increased from 3rd day, and after 5th day it showed strong reaction. These data suggested that hepatocytes were stabilized and recovered normal activity 4 day after cell separation, but the main secretory function was speculated to be reduced in culture.
In order to utilize natural cellulosic materials as a fermentative substrate, saccharification of a various kind of native cellulosic materials was performed by using cellulase from the isolated strain, Pseudomonas sp. LBC-505 which potently produced cellulase complex and xylanase. Cellulase complex production was repressed by the low concentration of glucose, induced by cellulosic compounds such as CMC, wheat bran and rice straw et al. and showed to be highest on the PY-CMC medium containing 5% (w/v) wheat bran instead of CMC. Optimal temperature for enzyme reactions of CMCase and xylanase was $50^{\circ}C$, and $55^{\circ}C$ for $\beta$-glucosidase. Optimal pH for these enzyme reaction was 6.6. Rate of saccharification for natural cellulose was low by the treatment of crude enzyme. Among their substrates, rice straw was the most effective substrate of enzymatic reaction in this work. After treating rice straw with 5% (v/v) HC1 and hydrolysing with crude enzyme, rate of saccharification was 18.4% (w/w) on dry substrate. Sugars of cellulosic hydrolyzate mainly contained glucose, xylose and cellobiose.
Ibraheem, Omodele;Adewale, Isaac Olusanjo;Afolayan, Adeyinka
BMB Reports
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v.38
no.5
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pp.584-590
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2005
Glucose 6-phosphate dehydrogenase (EC 1.1.1.49) was purified from Aspergillus aculeatus, a filamentous fungus previously isolated from infected tongue of a patient. The enzyme, apparently homogeneous, had a specific activity of $220\;units\;mg^{-1}$/, a molecular weight of $105,000{\pm}5,000$ Dal by gel filtration and subunit size of $52,000{\pm}1,100$ Dal by sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis. The substrate specificity was extremely strict, with glucose 6-phosphate (G6P) being oxidized by nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADP) only. At assay pH of 7.5, the enzyme had $K_m$ values of $6\;{\mu}m$ and $75\;{\mu}m$ for NADP and G6P respectively. The $k_{cat}$ was $83\;s^{-1}$. Steady-state kinetics at pH 7.5 produced converging linear Lineweaver-Burk plots as expected for ternary-complex mechanism. The patterns of product and dead-end inhibition suggested that the enzyme can bind NADP and G6P separately to form a binary complex, indicating a random-order mechanism. The enzyme was irreversibly inactivated by heat in a linear fashion, with G6P providing a degree of protection. Phosphoenolpyruvate (PEP), adenosinetriphosphate (ATP), and fructose 6-phosphate (F6P), in decreasing order, are effective inhibitors. Zinc and Cobalt ions were effective inhibitors although cobalt ion was more potent; the two divalent metals were competitive inhibitors with respect to G6P, with $K_i$ values of $6.6\;{\mu}m$ and $4.7\;{\mu}m$ respectively. It is proposed that inhibition by divalent metal ions, at low NADPH /NADP ratio, is another means of controlling pentosephosphate pathway.
This study measured the seasonal changes in physiological characteristics and antioxidants of Alnus firma to compare several enzyme activities(Rubisco, Superoxide dismutase(SOD) and Glutathione Reductase(GR)) between resistant and sensitive Alnus firma trees. Resistant and sensitive Alnus firma individuals near Yochon industrial complex were selected to conduct this study in 1997. Photosynthetic capacity, stomatal conductance, transpiration, Rubisco, SOD and GR activities of resistant trees which had no visible damages to air pollution were higher than those of sensitive trees in same area. All physiological results supported that biochemical process to be one of the important key features to understand resistance to air pollution. Increases of photosynthetic capacity and antioxidant enzyme activity in resistant trees in response to air pollution were the results of biological compensation to stress.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1987.07a
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pp.157-167
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1987
The have been many reports that phenoloxidase are correlated with development in many fungi. C. congregatus, one of nushroom-forming basidiomycetes, which requires light for its development also has phenoloxidases. In C. congragatus, there are two sets of membrane-associated phenoloxidase (PHO I and PHO II) which are differentiated by their isozyme patterns, and each enzyme set consists of two different subtrate specific enzyme protein; o-tolidine reacting enzyme, and DOPA reacting enzyme. PHO I which is localized by a protoplast-concanavalin A technique by using a new solidifying agent, Pluronic Polyol F 127, instead of agar appears in the vegetative hyphae, and PHO II appears at the early primordial stage on agar and at the sclerotial stage of liquid shake cultures. Inhibition of PHO I with the enzyme inhibitors inhibits mushroom formation as well as melanization of the vegetative hyphae at concentrations which do not inhibit the vegetative growth. PHO I deficient mutants do not form mushrooms or melanins, and the mutants show abnormal nuclear migration patterns. PHO II has roles; possibly cementing the adjacent hyphae during the actual three dimensonal structure formation, and melanizing mushrooms and sclerotia. The possible roles of PHO I in the light reception complex and in melanin formation, the function of malanin, and possible roles of postulated post translational modifying enzymes which regulate the phenoloxidases, nuclear migration pattern, and self-nonself recognition mechanism are discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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