Eun Jin Kim;Jonghyun Bae;Young-Jun Ju;Do-Bin Ju;Donghyun Lee;Seonghyeon Son;Hunseok Choi;Thandavarayan Ramamurthy;Cheol-Heui Yun;Dong Wook Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.11
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pp.1396-1405
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2022
Cholera remains a major global public health problem, for which oral cholera vaccines (OCVs) being a valuable strategy. Patients, who have recovered from cholera, develop antibody responses against LPS, cholera toxin (CT), toxin-coregulated pilus (TCP) major subunit A (TcpA) and other antigens; thus, these responses are potentially important contributors to immunity against Vibrio cholerae infection. However, assessments of the efficacy of current OCVs, especially inactivated OCVs, have focused primarily on O-antigen-specific antibody responses, suggesting that more sophisticated strategies are required for inactivated OCVs to induce immune responses against TCP, CT, and other antigens. Previously, we have shown that the toxT-139F allele enables V. cholerae strains to produce CT and TCP under simple laboratory culture conditions. Thus, we hypothesized that V. cholerae strains that express TCP via the toxT-139F allele induce TCP-specific antibody responses. As anticipated, V. cholerae strains that expressed TCP through the toxT-139F allele elicited antibody responses against TCP when the inactivated bacteria were delivered via a mouse model. We have further developed TCP-expressing V. cholerae strains that have been used in inactivated OCVs and shown that they effect an antibody response against TcpA in vivo, suggesting that V. cholerae strains with the toxT-139F allele are excellent candidates for cholera vaccines.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.11a
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pp.115-120
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1996
Vaccination has been considered to be the most effective way to control infectious diseases. Currently, many vaccines used in humans are live-attenuated or killed microorganisms. Polio, mumps, and measles vaccines are live-attenuated. Killed vaccines include cholera and pertussis vaccines, These conventional vaccines, however, suffer from some problems. In the case of live-attenuated vaccines, reversion to virulence is observed in a small but significant number of clinical cases each year. In killed vaccines, due to the possible hazard to employees working with live pathogens, the cost of preparation is high. Killed vaccines also need to be given in multiple doses, Furthermore, both live-attenuated and killed vaccines have possible presence of cellular materials leading to side effects. Moreover, there are diseases such as malaria and hepatitis for which conventional attenuated and killed vaccines are not available because the pathogens cannot be grown in sufficient amounts to allow the classical methods to be used.
Diarrhea is one of the most common causes of morbidity and mortality in children worldwide. Rotavirus is the most common cause of infectious diarrhea both in developed and developing countries. However, bacterial causes such as Salmonella typhi and Vibrio cholerae still play an important role in developing countries. Newly developed vaccines for rotavirus, S. typhi, and V. choleae are highly immunogenic and safe in children.
A simplified method for the purification of cholera toxin was developed. The 569B strain of Vibrio cholerae, a recognized hyper-producer of cholera toxin, was propagated in a bioreactor under conditions that promote the production of the toxin. The toxin was separated from the bacterial cells using 0.2-${\mu}m$ crossflow microfiltration, the clarified toxin was passed through the membrane into the permeate, and the bacterial cells were retained in the retentate. The 0.2-${\mu}m$ permeate was then concentrated 3-fold and diafiltered against 10 mM phosphate buffer, pH 7.6, using 30-kDa crossflow ultrafiltration. The concentrated toxin was loaded onto a cation exchange column, the toxin was bound to the column, and most of the impurities were passed unimpeded through the column. The toxin was eluted with a salt gradient of phosphate buffer, pH 7.0, containing 1.0 M NaCl. The peak containing the toxin was assayed for cholera toxin and protein and the purity was determined to be 92%. The toxin peak had a low endotoxin level of $3.1\;EU/{\mu}g$ of toxin. The purified toxin was used to prepare antiserum against whole toxin, which was used in a $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA to determine residual levels of toxin in an oral inactivated whole-cell cholera vaccine. The $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA was shown to be very sensitive and capable of detecting as little as 1 ng/ml of cholera toxin.
Hunseok Choi;Seonghyeon Son;Donghyun Lee;Jonghyun Bae;Eunyoung Seo;Dong Wook Kim;Eun Jin Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.6
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pp.736-744
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2023
The introduction of the toxT-139F allele triggers the expression of TCP (toxin co-regulated pilus) and CT (cholera toxin) under simple laboratory culture conditions in most Vibrio cholerae strains. Such V. cholerae strains, especially strains that have been used in OCVs (oral cholera vaccines), can induce antibody responses against TCP in animal models. However, CT produced in these V. cholerae strains is secreted into the culture medium. In this study, V. cholerae strains that can express intracellular CTB under the control of the toxT-139F allele have been constructed for potential application in OCVs. First, we constructed a recombinant plasmid directly linking the ctxAB promoter to ctxB without ctxA and confirmed CTB expression from the plasmid in V. cholerae containing the toxT-139F allele. We constructed another recombinant plasmid to express NtrCTB, from which 14 internal amino acids-from the 7th to the 20th amino acid-of the leader peptide of CTB have been omitted, and we found that NtrCTB remained in the cells. Based on those results, we constructed V. cholerae strains in which chromosomal ctxAB is replaced by ntrctxB or ntrctxB-dimer. Both NtrCTB and NtrCTB-dimer remained in the bacterial cells, and 60% of the NtrCTB-dimer in the bacterial cells was maintained in a soluble form. To develop improved OCVs, these strains could be tested to see whether they induce immune responses against CTB in animal models.
Vibrio cholerae, cause of the life-threatening diarrheal disease cholera, can be divided into different serogroups based on the structure of its lipopolysaccharide (LPS), which consists of lipid-A, core-polysaccharide and O-antigen polysaccharide (O-PS). The O1 serogroup, the predominant cause of cholera, includes two major serotypes, Inaba and Ogawa. These serotypes are differentiated by the presence of a single 2-O-methyl group in the upstream terminal perosamine of the Ogawa O-PS, which is absent in the Inaba O-PS. To ensure the consistent quality and efficacy of the current cholera vaccines, accurate measurement and characterization of each of these two serotypes is highly important. In this study, we efficiently screened a phage-displayed human synthetic Fab library by bio-panning against Ogawa LPS and finally selected three unique mAbs (D9, E11, and F7) that specifically react with Ogawa LPS. The mAbs bound to Vibrio cholerae vaccine in a dose-dependent fashion. Sequence and structure analyses of antibody paratopes suggest that IgG D9 might have the same fine specificity as that of the murine mAbs, which were shown to bind to the upstream terminal perosamine of Ogawa O-PS, whereas IgGs F7 and E11 showed some different characteristics in the paratopes. To our knowledge, this study is the first to demonstrate the generation of Ogawa-specific mAbs using phage display technology. The mAbs will be useful for identification and quantification of Ogawa LPS in multivalent V. cholerae vaccines.
Respiratory syncytial virus (RSV) and influenza virus are the most significant pathogens causing respiratory tract diseases. Composite vaccines are useful in reducing the number of vaccination and confer protection against multiple infectious agents. In this study, we generated fusion of RSV G protein core fragment (amino acid residues 131 to 230) and influenza HA1 globular head domain (amino acid residues 62 to 284) as a dual vaccine candidate. This fusion protein, Gcf-HA1, was bacterially expressed, purified by metal resin affinity chromatography, and refolded in PBS. BALB/c mice were intranasally immunized with Gcf-HA1 in combination with a mucosal adjuvant, cholera toxin (CT). Both serum IgG and mucosal IgA responses specific to Gcf and HA1 were significantly increased in Gcf-HA1/CT-vaccinated mice. To determine the protective efficacy of Gcf-HA1/CT vaccine, immunized mice were challenged with RSV (A2 strain) or influenza virus (A/PR/8/34). Neither detectable viral replication nor pathology was observed in the lungs of the immune mice. These results demonstrate that immunity induced by intranasal Gcf-HA1/CT immunization confers complete protection against both RSV and homologous influenza virus infection, suggesting our Gcf-HA1 vaccine candidate could be further developed as a dual subunit vaccine against RSV and influenza virus.
Shigellosis is a global human health problem. Four species of Shigella i.e. S. dysenteriae, S. flexneri, S. boydii and S. sonnei are able to cause the disease. These species are subdivided into serotypes on the basis of O-specific polysaccharide of the LPS. Shigella dysenteriae type 1 produces severe disease and may be associated with life-threatening complications. The symptoms of shigellosis include diarrhoea and/or dysentery with frequent mucoid bloody stools, abdominal cramps and tenesmus. Shigella spp. cause dysentery by invading the colonic mucosa. Shigella bacteria multiply within colonic epithelial cells, cause cell death and spread laterally to infect and kill adjacent epithelial cells, causing mucosal ulceration, inflammation and bleeding. Transmission usually occurs via contaminated food and water or through person-to-person contact. Laboratory diagnosis is made by culturing the stool samples using selective/differential agar media. Shigella spp. are highly fragile organism and considerable care must be exercised in collecting faecal specimens, transporting them to the laboratories and in using appropriate media for isolation. Antimicrobial agents are the mainstay of therapy of all cases of shigellosis. Due to the global emergence of drug resistance, the choice of antimicrobial agents for treating shigellosis is limited. Although single dose of norfloxacin and ciprofloxacin has been shown to be effective, they are currently less effective against S. dysenteriae type 1 infection. Newer quinolones, cephalosporin derivatives, and azithromycin are the drug of choice. However, fluoroquinolone-resistant S. dysenteriae type 1 infection have been reported. Currently, no vaccines against Shigella infection exist. Both live and subunit parenteral vaccine candidates are under development. Because immunity to Shigella is serotype-specific, the priority is to develop vaccine against S. dysenteriae type 1 and S. flexneri type 2a. Shigella species are important pathogens responsible for diarrhoeal diseases and dysentery occurring all over the world. The morbidity and mortality due to shigellosis are especially high among children in developing countries. A recent review of literature (KotIoff et al.,1999) concluded that, of the estimated 165 million cases of Shigella diarrhoea that occur annually, $99\%$ occur in developing countries, and in developing countries $69\%$ of episodes occur in children under five years of age. Moreover, of the ca.1.1 million deaths attributed to Shigella infections in developing countries, $60\%$ of deaths occur in the under-five age group. Travellers from developed to developing regions and soldiers serving under field conditions are also at an increased risk to develop shigellosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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