Reactivating the p53 pathway in tumors is an important strategy for anticancer therapy. In response to diverse cellular stresses, the tumor suppressor p53 mediates apoptosis in a transcription-independent and transcription-dependent manner. Although extensive studies have focused on the transcription-dependent apoptotic pathway of p53, the transcription-independent apoptotic pathway of p53 has only recently been discovered. Molecular interactions between p53 and Bcl-2 family proteins in the mitochondria play an essential role in the transcription-independent apoptosis of p53. This review describes the structural basis for the transcription-independent apoptotic pathway of p53 and discusses its potential application to anticancer therapy.
Journal of Institute of Control, Robotics and Systems
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v.10
no.12
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pp.1155-1163
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2004
Extracellular signal-regulated kinase (ERK) signaling pathway is one of the mitogen-activated protein kinase (MAPK) signal transduction pathways. This pathway is known as pivotal in many signaling networks that govern proliferation, differentiation and cell survival. The ERK signaling pathway comprises positive and negative feedback loops, depending on whether the terminal kinase stimulates or inhibits the activation of the initial level. In this paper, we attempt to model the ERK pathway by considering both of the positive and negative feedback mechanisms based on Michaelis-Menten kinetics. In addition, we propose a fraction ratio model based on the mass action law. We first develop a mathematical model of the ERK pathway with fraction ratios. Secondly, we analyze the dynamical properties of the fraction ratio model based on simulation studies. Furthermore, we propose a concept of an inhibitor, catalyst, and substrate (ICS) controller which regulates the inhibitor, catalyst, and substrate concentrations of the ERK signal transduction pathway. The ICS controller can be designed through dynamical analysis of the ERK signaling transduction pathway within limited concentration ranges.
Programmed cell death is a basic cellular process that is critical to maintaining tissue homeostasis. In contrast to apoptosis, necrosis was previously regarded as an unregulated and uncontrollable process. However, as research has progressed, necrosis, also known as necroptosis or programmed necrosis, is drawing increasing attention, not least becasu of its possible impications for cancer research. Necroptosis exhibits a unique signaling pathway that requires the involvement of receptor interaction protein kinases 1 and 3 (RIP1 and RIP3), mixed lineage kinase domain-like (MLKL), and phosphoglycerate mutase 5 (PGAM5) and can be specifically inhibited by necrostatins. Not only does necroptosis serve as a backup cell death program when apoptosis is inhibited, but it is now recognized to play a pivotal role in regulating various physiological processes and the pathogenesis of a variety of human diseases such as ischemic brain injury, immune system disorders and cancer. The control of necroptosis by various defined trigger factors and signaling pathways now offers the opportunity to target this cellular process for therapeutic purposes. The purpose of this paper is to review current findings concerning the connections between various trigger factors and the RIP1/RIP3 signaling pathway as it relates to necroptosis.
Eph receptors and their ephrin ligands have been implicated in a variety of cellular processes such as cellular morphogenesis and motility. Our previous studies demonstrated that Odin, one of the Anks family proteins, functions as a scaffolding protein of the EphA8 signaling pathway leading to modulation of cell migration or axonal outgrowth. Here we show that WDR7 is associated with Odin and that it is possibly implicated in the EphA8 signaling pathway. WD40 repeats present in the COOH-terminal region of WDR7 appear to be crucial for its association with Odin, whereas the binding motif of Odin is located in between ankyrin repeats and PTB domain. Co-immunoprecipitation experiments revealed that association of WDR7 with Odin is enhanced by ephrin ligand treatment, possibly through forming large protein complexes including both EphA8 and ephrin-A5. Consistently, immunofluorescence staining experiments suggested that WDR7 constitute a component of the large protein complexes containing Odin, EphA8 and ephrin-A5. Taken together, our results suggest the WDR7-Odin complexes might be involved in the signaling pathway downstream of the EphA8 receptor.
Leptin, a 16-kDa cytokine, is secreted by adipose tissue in response to the surplus of fat store. Thereby, the brain is informed about the body's energy status. In the hypothalamus, leptin triggers specific neuronal subpopulations (e.g., POMC and NPY neurons) and activates several intracellular signaling events, including the JAK/STAT, MAPK, PI3K, and mTOR pathway, which eventually translates into decreased food intake and increased energy expenditure. Leptin signal is inhibited by a feedback inhibitory pathway mediated by SOCS3. PTP1B involves another inhibitory pathway of leptin. Leptin potently promotes fat mass loss and body weight reduction in lean subjects. However, it is not widely used in the clinical field because of leptin resistance, which is a common feature of obesity characterized by hyperleptinemia and the failure of exogenous leptin administration to provide therapeutic benefit in rodents and humans. The potential mechanisms of leptin resistance include the following: 1) increases in circulating leptin-binding proteins, 2) reduced transport of leptin across the blood-brain barrier, 3) decreased leptin receptor-B (LRB), and/or 4) the provocation of processes that diminish cellular leptin signaling (inflammation, endoplasmic reticulum stress, feedback inhibition, etc.). Thus, interference of the cellular mechanisms that attenuate leptin signaling improves leptin action in cells and animal models, suggesting the potential utility of these processes as points of therapeutic intervention. Various experimental trials and compounds that improve leptin resistance are introduced in this paper.
Various small molecules can be used to control major signaling pathways to enhance stemness and inhibit differentiation in murine embryonic stem cell (mESC) culture. Small molecules inhibiting the fibroblast growth factor (FGF)/ERK pathway can preserve pluripotent cells from stimulation of differentiation. In this study, we aimed to evaluate the effect of pluripotin (SC-1), an inhibitor of the FGF/ERK pathway, on the colony formation of outgrowing presumptive mESCs. After plating the zona pellucida-free blastocyst on the feeder layer, attached cell clumps was cultured with SC-1 until the endpoint of the experiment at passage 10. In this experiment, when the number of colonies was counted at passage 3, SC-1-treated group showed 3.4 fold more mESC colonies when compared with control group. However, after passage 4, there was no stimulating effect of SC-1 on the colony formation. In conclusion, SC-1 treatment can be used to promote mESC generation by increasing the number of early mESC colonies.
Proceedings of the Korean Society for Bioinformatics Conference
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2005.09a
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pp.427-430
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2005
Studies on cellular pathways and networks are now one of the most actively researched topics in all fields of biomedicine ranging from developmental biology to etiology. Many databases have been developed and quantitative simulation models have been proposed. One of the eventual goals of pathway/network studies is to integrate different types of pathway/network models and databases to simulate overall cellular responses. A bottleneck to this goal is modeling gene expression since the mechanism of this process is not yet fully unveiled. We are developing a small scale computer program called CiRMU (Cis-Regulatory Machinery Unit model) for describing, viewing, analyzing, and modeling the process of gene expression. A prototype system is being designed and implemented for analyzing functions of nuclear receptors.
Apoptotic cell death is an active process mediated by various signaling pathways, which include the caspase cascade and the stress-activated protein kinase pathways. The caspase cascade is activated by two distinct routes: one from cell surface and the other from mitochondria. Activation of the route from cell surface requires the cellular components that include membrane receptors, adaptor proteins such as TRADD and FADD, and caspase-8, while activation of the other from mitochondria requires Apaf-1, caspase-9, and cytosolic cytochrome c. On the other hand, persistent stimulation of the stress-activated protein kinase pathway is also shown to mediate apoptosis in many cell types. Gene-targeting studies with jnk- or jip-null mice, in particular, strongly suggest that this signaling pathway plays a pivotal role in the cellular machinery for apoptosis.
MicroRNAs (miRNAs) can regulate the expression of genes that are involved in multiple cellular pathways. However, their targets and mechanism of action associated with the autophagy pathway are not fully investigated yet. EWSR1 (EWS RNA-Binding Protein 1/Ewing Sarcoma Break Point Region 1) gene encodes a RNA/DNA binding protein that is ubiquitously expressed and plays roles in numerous cellular processes. Recently, our group has shown that EWSR1 deficiency leads to developmental failure and accelerated senescence via processing of miRNAs, but its role in the regulation of autophagy remains elusive. In this context, we further investigated and found that EWSR1 deficiency triggers the activation of the DROSHA-mediated microprocessor complex and increases the levels of miR125a and miR351, which directly target Uvrag. Interestingly, the miR125a- and miR351-targeted reduction of Uvrag led to the inhibition of autophagy in both ewsr1 knockout (KO) MEFs and ewsr1 KO mice. In summary, our study demonstrates that EWSR1 is associated with the posttranscriptional regulation of Uvrag via miRNA processing. The regulation of autophagy pathway in miRNAs-Uvrag-dependent manner provides a novel mechanism of EWSR1 deficiency-related cellular dysfunction. [BMB Reports 2015; 48(7): 371-372]
Jaegeun Lee;Xinge Song;Bom Hyun;Che Ok Jeon;Seogang Hyun
Molecules and Cells
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v.46
no.10
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pp.637-653
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2023
The physiology of most organisms, including Drosophila, is heavily influenced by their interactions with certain types of commensal bacteria. Acetobacter and Lactobacillus, two of the most representative Drosophila commensal bacteria, have stimulatory effects on host larval development and growth. However, how these effects are related to host immune activity remains largely unknown. Here, we show that the Drosophila development-promoting effects of commensal bacteria are suppressed by host immune activity. Mono-association of germ-free Drosophila larvae with Acetobacter pomorum stimulated larval development, which was accelerated when host immune deficiency (IMD) pathway genes were mutated. This phenomenon was not observed in the case of mono-association with Lactobacillus plantarum. Moreover, the mutation of Toll pathway, which constitutes the other branch of the Drosophila immune pathway, did not accelerate A. pomorum-stimulated larval development. The mechanism of action of the IMD pathway-dependent effects of A. pomorum did not appear to involve previously known host mechanisms and bacterial metabolites such as gut peptidase expression, acetic acid, and thiamine, but appeared to involve larval serum proteins. These findings may shed light on the interaction between the beneficial effects of commensal bacteria and host immune activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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