형질전환식물체기술 (transgenic plant technology)은 산업용 단백질 생산에 있어 경쟁력이 높으며, 그 주요 특징으로 최종 목적물의 저렴한 가격, 종자형태로의 안정적인 단백질 보존, scale-up의 손쉬움 등을 들 수 있다. 이 기술에는 유전자조작 (genemanipulation)에서 육종 (breeding)에 이르는 제단계가 포함되고 기존 화학공정의 대체에 의한 환경오염 방지 등의 혜택도 기대된다. 본 란에서는 분자량, 생체활성과 세포내 위치가 상이한 $\beta$- glucuronidase (GUS), avidin, laccase, trypsin을 예로 들어 형질전환식물체기술의 다양함을 설명하고자 한다.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2003.04a
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pp.63-64
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2003
현재 재배되고 있는 포도속 식물 8품종의 잎 절편과 잎 절편에서 얻어진 callus를 이용하여 신초 재생과 체세포배발생 유도 실험을 수행하였다. 생장조절제 종류별 첨가 농도 및 에너지원이 되는 sucrose의 농도별 첨가에 따른 배양 조직의 변화를 살펴보았으며, 활성탄의 첨가 유무가 체세포배발생에 미치는 영향에 관한 실험을 실시하였다. 또한, 잎 절편과 잎 절편에서 얻어진 callus에 $\beta$-glucuronidase (gus) 유전자를 가진 Agrobacterium tumefasciens를 접종하여 포도속의 유전자 전환시 접종 효율을 검정하였다.(중략)
Fifty eight Cryptococcus neoformans strains isolated from clinical and environmental sources in Korea were examined for their serotypes and extracellular enzyme activities. Among the 51 strains isolated from clinical sources, 48 strains were serotype A (94.1%), 2 strains were serotype B (3.92%), and 1 strain was serotype D (1.96%). All seven environmental strains isolated from pigeon excreta were identified as serotype A. All isolates of C. neoformtans were positive for the production of extracellular proteinase and phospholipase. In the API-ZYM system, all fifty eight isolates produced alkaine phosphatase, esterase C4, esterase lipase: C8, leucine arylamidase, acid phosphatase, naphthol-AS-BI-phosphohydrase, $\alpha$-glucosidase and $\beta$-glucosidase. Thirty nine isolates (67.2%) of C. neoformans produced N-acetyl-$\beta$-glucosidase. Two isolates, serotype B, and B only one serotype A produced $\beta$-glucuronidase. Analysis of enzymatic profiles to 21 enzymes revealed four biotypic patterns among the 58 strains. The enzymatic patterns of C. neoformans isolated from clinical and environmental sources represented a significant relationship with the serotypes.
Present experiment was performed in order to establish the optimal reaction conditions for determination of urinary AAP and GRS activities and to investigate the applicability of urinary AAP and GRS in nephrotoxicity test in rat. The results were as follows ; 1. The optimal pH of phosphate buffer for determination of urinary AAP activity was 7.8. 2. The Michaelis constant of urinary AAP ranged from 0.8 to 1.0mmol/$\ell$ 3. The optimal wave length for determination of urinary GRS activity was 405nm. 4. The optimal pH of acetate buffer for determination of urinary GRS activity was 5.6. 5. The Michaelis constant of urinary GRS ranged from 0.65~0.79mmo1/$\ell$. 6. The AAP activities in gel-filtered samples were significantly higher than those in crude samples. Mean values of AAP activities in gel-filtered samples and crude samples were 29$\pm$20 and 20$\pm$13U/$\ell$, respectively. 7. There was not significant difference between gel-filtered samples and crude samples in urinary GRS activities. Mean values of GRS activities in gel-filtered samples and crude samples were 57$\pm$40 and 56$\pm$39U/$\ell$, respectively. 8. Limits of linearity of urinary AAP and GRS activities were 2.0 and 3.6U/$\ell$, respectively. 9. Within-run imprecisions of the assays, were acceptable, as the coefficients of the AAP activities ranged from 5.5 to 6.3% and those of GRS activities ranged from 1.4 to 6.2%, respectively. 10. Urinary AAP excretion was 675$\pm$227mu/24hrs.kg before administration of potassium dichromate, and increased significantly to 4246$\pm$2567mU/24hrs.kg within 24 hours after administration of potassium dichromate. 11. Urinary GRS excretion did not increase significantly after administration of potassim dichromate. 12. From these findings it is concluded that urinary AAP excretion is early and sensitive Indicator to detect kidney damage in nephrotoxicity experiment.
Flowering time is determined by florigens. These genes include, Heading date 3a (Hd3a) and Rice FT 1 (RFT1) in rice, which are specifically expressed in the vascular tissues of leaves at the floral transition stage. To study the cis-regulatory elements present in the promoter region of Hd3a, we generated transgenic plants carrying the 1.75-kb promoter fragment of Hd3a that was fused to the ${\beta}$-glucuronidase (GUS) reporter gene. Plants expressing this construct conferred a vascular cell-specific expression pattern for the reporter gene. However, GUS was expressed in leaves at all developmental stages, including the early seedling stage when Hd3a was not detected. Furthermore, the reporter was expressed in roots at all stages. This suggests that the 1.75-kb region lackings cis-elements that regulate leaf-specific expression at the appropriate developmental stages. Deletion analyses of the promoter region indicated that regulatory elements determining vascular cell-specific expression are present in the 200-bp region between -245 bp and -45 bp from the transcription initiation site. By transforming the Hd3a-GUS construct to rice cultivar 'Taichung 65' which is defective in Ehd1, we observed that Ehd1 is the major regulatory element that controls Hd3a promoter activity.
Wheat (Triticum aestium L.cv Cho-Kwang) explants were transformed by electrporation. Excised root segments were elechoporated with plasmid DNA of pBI121 and transferred to medium containing 300 mg/L kanamycin. Transformed calli formed within 5-7 days of culture and were selected from electroporated tissue on medium containing kanamycin after 4 weeks. The highest transformation frequency was obtained after electroporation with a pulse of 200 V/800 uF and calli formed at frequencies up to 2.5%. GUS ($\beta$-glucuronidase) assay and dot blot analysis showed that the foreign gene was capable of expressing in root explants subjected to electroporation and calli derived from the explants..
Transformed sweetpotato (Ipomoea batatas (L.) Lam. cv. Yulmi) plants were developed from embryogenic calli following Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. A. tumefaciens strain EHA105/pCAMBIA2301 harboring genes for intron $\beta$-glucuronidase (GUS) and kanamycin resistance. Transient expression of GUS gene was found to be higher when embryogenic calli were co-cultivated with Agrobacterium for 2 days. The co-cultured embryogenic calli transferred to selective MS medium containing 1mg/L 2,4-D, 100mg/L kanamycin, and 400mg/L claforan. These embryogenic calli were subcultured to the same selection medium at 4 weeks interval. Kanamycin-resistant calli transferred to hormone-free MS medium with kanamycin gave rise to somatic embryos and then converted into plantlets in the same medium. Southern blot analysis confirmed that the GUS gene was inserted into the genome of the sweetpotato plants. A histochemical assay revealed that the GUS gene was preferentially expressed in the leaf, petiole, and vascular tissue and tip of root.
The protoplast formation of Rhizoctonia solani in the fast growing anastomosis groups (AGs) 1 and 4, the intermediate AG-2 and AG-5, and the slow AG-3 yielded the most, moderate and the least in that order, respectively. Sclerotia formation varied with AGs. A high yield of protoplasts from AGs was obtained with a combined lytic enzyme system containing cellulase 'Onozuka' R-10, macerozyme R-10 and ${\beta}-glucuronidase$. When 3g (fresh weight) of 30 hr old mycelia was incubated for 3 hr at $32^{\circ}C$ with the enzyme mixture in 0.6 M mannitol, maximum protoplasts were obtained in the five AGs. A protoplast fusion between sclerotia forming AG-1 inactivated with heat and non-forming AG-5 was induced by polyethylene glycol and ${Ca}^{2+}$. Seven fusants obtained were based on characteristics of colony and sclerotium formation on culture plates. The fusants were confirmed by isozyme patterns of esterase and killing reaction between AG-1 and a fusant F1501.
To improve transformation efficiency, the callus of Lilium lancifolium Thunb. were bombarded by particles coated with pIG 121 Hm which include NPT II and GUS genes, and then cocultivated with Agrobacterium tumefaciens EHA101 which contain pIG121Hm binary vector, carrying neomycin phosphotransferase (NPT II) and $\beta$-Glucuronidase (GUS) genes. Three days after cocultivation with Agrobacterium tumefaciens and particle bombardment, the callus clusters were transferred to MS medium containing 1mg/L 2,4-D, 0.1mg/L BAP, 100mg/L kanamycin and 200mg/L carbenicillin. Four weeks after transfer to the selection medium, GUS expression was detected and PCR analysis revealed the presence of NPT II fragment of the expected size (700 bp) in the transformed callus. The GUS expression from Agrobacterium-mediated transformants after particle bombardment increased to over 3-folds compared with that of callus cocultivated with Agrobacterium tumefaciens without particle bombardment. The callus clusters containing kanamycin resistant gene were transferred to MS medium containing 1mg/L NAA and 1mg/L BAP. Somatic embryos were developed in four weeks and microbulbs expressing GUS were formed.
Kim, Kyung-Soo;You, Chang-Hyun;Kong, Won-Sik;Kim, Young-Ho;Cha, Dong-Yeul
The Korean Journal of Mycology
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v.26
no.2
s.85
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pp.275-280
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1998
Factors affecting protoplasts isolation and regeneration of Fomitella fraxinea were investigated. Lytic enzyme mixture of Novozym 234, Cellulase onozuka R-10 and ${\beta}-Glucuronidase$ was found to be the best for the protoplasts isolation. Osmotic stabilizer of 0.6 M sucrose was observed as the best for protoplasts isolation. The highest number of protoplasts was obtained from the F. fraxinea mycelium with lytic enzyme mixture and osmotic stabilizer that had been cultured for 3 hours. The highest regeneration rate of 0.02 % was achieved when the 0.6 M sorbitol was employed as osmotic stabilizer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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