한국의 전통 대두발효식품인 청국장에서 혈전용해능이 우수한 미생물을 분리하였으며, 이를 동정한 결과 B.amyloliquefaciens D4로 명명하였다. 혈전용해효소의 대량분비를 위해 N-methyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine을 사용한 돌연변이를 유도하여 B. amyloliquefaciens D4-7 변이주를 얻었으며, plasmin 1 U/ml 6.5배 정도의 높은 혈전분해능을 나타내었다. B. amyloliquefaciens D4-7는 분리대두단백배지에서 혈전용해효소 분비능이 가장 우수하였다. B. amyloliquelaciens D4-7가 생산하는 혈전용해효소의 최적 활성조건은 pH 10, 5$0^{\circ}C$이었고, pH 7.0 에서 pH 11 사이에서 상대적으로 안정하였으며, $50^{\circ}C$에서 30분간 방치하였을 경우 50%의 활성이 유지되었다. 또한, NaCl, glycerol 또는glucose 첨가에 의해 혈전용해효소의 저장안정성이 높아지는 것을 확인할 수 있었다.
In this paper, two statistical methods were applied to optimize medium components to improve the production of the milk-clotting enzyme by Bacillus amyloliquefaciens D4. First, wheat bran juice, skim milk powder, and $Na_2HPO_4$ were shown to have significant effects on D4 enzyme production using the Plackett-Burman experimental design. Subsequently, an optimal medium was obtained using the Box-Behnken method, which consisted of 3.31 g/l of skim milk powder, 5.0 g/l of sucrose, 0.1 g/l of $FeSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.1 g/l of $MgSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.1 g/l of $MnSO_4{\cdot}2H_2O$, 0.1 g/l of $ZnSO_4{\cdot}7H_2O$, 1.52 g/l of $Na_2HPO_4$, and 172.45 g/l of wheat bran juice. With this optimal medium, the milk-clotting enzyme production was remarkably enhanced. The milk-clotting enzyme activity reached 3,326.7 SU/ml after incubation of 48 h, which was 1.76-fold higher than that of the basic medium, showing that the Plackett-Burman design and Box-Behnken response surface method are effective to optimize medium components, and B. amyloliquefaciens D4 possessed a high rennet-producing capacity in the optimal medium.
Bacillus amyloliquefaciens Pc3 was isolated from Antarctic seawater with antifungal activity. In order to investigate the metabolic regulation mechanism in the biosynthesis of lipopeptides in B. amyloliquefaciens Pc3, GC/MS-based metabolomics was used when exogenous indole was added. The intracellular metabolite profiles showed decreased asparagine, aspartic acid, glutamine, glutamic acid, threonine, valine, isoleucine, hexadecanoic acid, and octadecanoic acid in the indole-treated groups, which were involved in the biosynthesis of lipopeptides. B. amyloliquefaciens Pc3 exhibited a growth promotion, bacterial total protein increase, and lipopeptide biosynthesis inhibition upon the addition of indole. Besides this, real-time PCR analysis further revealed that the transcription of lipopeptide biosynthesis genes ituD, fenA, and srfA-A were downregulated by indole with 22.4-, 21.98-, and 26.0-fold, respectively. It therefore was speculated that as the metabolic flux of most of the amino acids and fatty acids were transferred to the synthesis of proteins and biomass, lipopeptide biosynthesis was weakened owing to the lack of precursor amino acids and fatty acids.
Doenjang samples were prepared by inoculation of multiple starters consisting of two Bacillus spp., one yeast, and one fungus. Doenjang A was fermented with Bacillus amyloliquefaciens EMD17, B. amyloliquefaciens MJ1-4, Pichia farinosa SY80, and Rhizopus oryzae. Doenjang B and C were fermented with the same yeast and fungus but different Bacillus strains; namely, B. amyloliquefaciens EMD17 and B. subtilis CH3-5 for doenjang B, and B. amyloliquefaciens MJ1-4 and B. subtilis CH3-5 for doenjang C. Doenjang D was fermented with microorganisms present in rice straw (control). The doenjang samples were spiked with B. cereus ATCC14579 at two different levels, 104 CFU/g doenjang (I) and 107 CFU/g doenjang (II). All eight doenjang samples were fermented for 70 days at 25℃. Growth of B. cereus was inhibited in doenjang A, B, and C, with the bacterial cell count after 70 days being less than the initial 104 CFU/g added, whereas B. cereus was not inhibited in doenjang D. Doenjang B showed the strongest inhibitory activity against B. cereus, with a cell count of less than 103 CFU/g after 42 days, even when B. cereus was initially added at 107 CFU/g. Some properties of the doenjang samples, such as pH, TA, and amino-type nitrogen content, were similar to those of doenjang fermented with starters only. The results indicate that carefully selected starters can effectively prevent the growth of B. cereus during doenjang fermentation.
Kim, Hyeong-Hyoi;Jeong, Eun-Jeong;Jeong, Do-Yeong;Kim, Yong-Suk;Shin, Dong-Hwa
Food Science and Biotechnology
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제14권4호
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pp.461-465
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2005
To determine the cause of wet noodle spoilage, microorganisms isolated from wet noodles were identified and characterized. In addition, the growth inhibitory effects of organic acid mixture (OA: lactic acid 27.8%, acetic acid 12.0%, succinic acid 1.0%) and sodium dehydroacetate (SD) on the isolated strain were estimated in nutrient broth medium. The isolated strain was Gram-positive, rod shaped, motile, and spore forming. Based on physiological characteristics and the API 50 CHB-kit test results for the assimilation of 49 carbohydrates, the isolated strain was identified as Bacillus amyloliquefaciens (92.6%), which is able to degrade starch. Decimal reduction times (D-values) at 100, 105, and $110^{\circ}C$ for spores of B. amyloliquefaciens were 8.5, 5.1, and 2.5 min, respectively, and the z-value was $12.8^{\circ}C$. We estimated that B. amylo-liquefaciens isolated from spoiled wet noodles was a thermophilic species having high heat-resistance. Viable cell numbers in wet noodles and broth medium inoculated with B. amyloliquefaciens were decreased by 2-4 log cycles by combined treatment with 0.03 or 0.05% OA and 0.3% SD. These results revealed that OA combined with SD could be used as a potential agent to inhibit B. amyloliquefaciens in wet noodles.
토양 등의 인 제한환경에서 특이적으로 발현하는 벡터를 구축하기 위해서 Enterobacter areogenes의 phoA 유전자의 promoter가 든 pEAAP를 구축하였다. pEAAP는 pET-22b(+)을 BglII와 XbaI으로 절단하여 T7 promoter와 lac operator를 제거하고pho box가 포함된 phoA promoter를 삽입하여 구축하였다. pEAAP가 인 제한 환경에서 특이적으로 발현되는지 조사하고자 Bacillus subtillis var. amyloliquefaciens (KCTC 8913P)의 Phytase유전자인 Bsa-phy1을 도입한 pEAPHY1을 구축하였다. CK-PHY1 (pEAPHY1을 도입한Escherichia coli JM109)는 인 제한 환경에서 41 kD)의 Bsa-Phy1을 발현하였다. 또한, CK-PHY1은 phytate를 유일한 인산원으로 첨가된 고체배지에서 phytate를 분해하여 투명대를 형성하였다.
본 연구를 통해 BAGGT를 재조합 B. subtilis를 이용하여 대량 생산하기 위하여 유전자 클로닝, 발현 시스템 구축 및 배지 최적화를 진행하였다. 이중프로모터 시스템을 이용하여 야생형 균주에 비해 42배 효소 생산성이 향상된 발현 시스템을 구축하였다. 또한 PBD 분석을 통해 당밀과 CSL이 재조합 B. subtilis 시스템에서 BAGGT의 생산성에 큰 영향을 주는 인자임을 확인하였으며, 염류의 첨가에 의한 효소 생산성 증대 효과는 미비하거나 부정적이었다. 탄소원으로 당밀을 선택하고 고가의 질소원인 트립톤을 저가의 CSL로 교체한 후 CCD 분석을 통해서 결정된 최적배지 사용 시 최적화 이전의 LB 배지 대비 4.3배의 생산성 증대를 이루었으며, 이는 LB 배지에서 야생형 균주의 BAGGT 생산성 대비 180배의 효소 생산성 개선에 해당하였다. 본 연구를 통해 식품용 효소로서 BAGGT의 대량생산을 위한 공정을 구축하였으며, 이후 정미성 소재 생산에 활용할 수 있을 것으로 기대한다.
We isolated and characterized novel duck feather-degrading bacteria producing keratinase. Twelve strains were isolated from soil and faces at poultry farm, and decayed feathers. They were identified as Bacillus methylotrophicus, Pseudomonas geniculata, Pseudomonas hibiscicola, Exiquobacterium profundum, Bacillus pumilus, Bacillus amyloliquefaciens, Chryseobacterium indologenes, Bacillus thuringiensis, Thermomonas koreensis, respectively, by phenotypic characters and 16S rRNA gene analysis. Generally, the level of keratinase production was not proportional to feather degradation rate. The highest keratinolytic activity was observed in the culture inoculated with Chryseobacterium indologenes D27. Although all strains did not degrade human hair, strains tested effectively degraded chicken feather(53.8-91.4%), wool(40.4-93.0%) and human nail (51.0-82.9%). These results suggest that strains isolated could be not only used to improve the nutritional value of recalcitrant feather waste but also is a potential candidate for biotechnological processes of keratin hydrolysis.
인삼 뿌리썩음병을 일으키는 병원균의 생물적 방제를 위해서 토양에서 유용미생물을 분리하여 항균 활성과 생화학적 특성을 조사하였다. 이를 위해 강원도 인삼재배 토양에서 총 439균주의 세균을 분리하여 이 중에서 항균 활성이 가장 우수한 3균주(GP4-1, GR2-2, GR4-5)의 미생물을 최종 선발하였다. 주요 인삼 뿌리 썩음병원균인 5종(Cylindrocarpon destructans, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, Rhizoctonia solani, Sclerotinia nivalis)에 대한 생장 억제능을 조사한 결과, 선발 균주들이 매우 높은 항균 활성을 갖는 것을 확인하였다. 최종 선발 균주들의 정확한 동정을 위해서 16S rRNA 유전자 염기 서열로 계통 유전학적 분석을 하였고, 모든 균주들이 Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum $FZB42^T$과 가장 높은 상동성(99.9 %)이 있음을 보였다. 선발 균주들이 생산하는 2차 대사물질 구명을 위해 주요 Bacillus 대사산물의 생합성 유전자를 PCR 반응으로 검정하였다. 모든 선발 균주들에서 iturin A와 surfactin의 생합성 유전자가 검출되었으며, GR4-5 균주에서는 bacillomycin D의 생합성 유전자도 추가로 검출되었다. 생화학적 특성 조사에서는 선발 균주들이 섬유소 분해 효소와 단백질 분해 효소의 활성이 있음을 확인하였다. 본 연구를 통해 인삼재배 토양에서 분리한 토양 미생물들이 인삼 뿌리썩음병의 생물적 방제를 위한 미생물제제로서의 활용가치가 높음을 제시하였다.
Two antifungal bacteria were selected from forest soils during the screening of microorganisms antagonistic to Cylindrocarpon destructans, a cause of ginseng root rot. The antifungal bacteria were identified as Bacillus subtilis (I4) and B. amyloliquefaciens (yD16) based on physiological and cultural characteristics, the Biolog program, and 16S rRNA gene sequencing analyses. Antagonistic activity of both bacterial isolates to C. destructans increased with increasing temperature. More rapid starch hydrolytic activity of the bacteria was seen on starch agar at higher temperatures than at lower temperatures, and in the higher density inoculum treatment than in the lower density inoculum treatment. The bacterial isolates failed to colonize ginseng root the root tissues inoculated with the bacteria alone at an inoculum density of $1{\times}10^6$ cfu/ml, but succeeded in colonizing the root tissues co-inoculated with the bacteria and C. destructans. Scanning electron microscopy showed that the pathogen was damaged by the low-density inoculum treatment with the bacterial isolates as much as by the high-density inoculum treatment. Both bacterial isolates were more effective in reducing root rot when they were treated at a concentration of $1{\times}10^6$ cfu/ml than at $1{\times}10^8$ cfu/ml. Also, only the former treatment induced prominent wound periderm formation, related to structural defense against pathogen infection. The results suggest that the bacterial antagonists may have high potential as biocontrol agents against ginseng root rot at relatively low-inoculum concentrations.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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