Actin binding proteins play key roles in cell structure and movement particularly as regulators of the assembly, stability and localization of actin filaments in the cytoplasm. In the present study, a cDNA clone encoding an actin bundling protein named as AhABP was isolated from Acanthamoeba healyi, a causative agent of granulomatous amebic encephalitis. This clone exhibited high similarity with genes of Physarum polycephalum and Dictyostelium discoideum, which encode actin bundling proteins. Domain search analysis revealed the presence of essential conserved regions, i.e., an active actin binding site and 2 putative calcium binding EF-hands. Transfected amoeba cells demonstrated that AhABP is primarily localized in phagocytic cups, peripheral edges, pseudopods, and in cortical cytoplasm where actins are most abundant. Moreover, AhABP after the deletion of essential regions formed ellipsoidal inclusions within transfected cells. High-speed co-sedimentation assays revealed that AhABP directly interacted with actin in the presence of up to $10{\mu}M$ of calcium. Under the electron microscope, thick parallel bundles were formed by full length AhABP, in contrast to the thin actin bundles formed by constructs with deletion sites. In the light of these results, we conclude that AhABP is a novel actin bundling protein that is importantly associated with actin filaments in the cytoplasm.
Dimorphic yeast Candida albicans reversibly switches between the form of yeast and hyphae depending on external conditions. We investigated possible roles of the myosin family in the growth and dimorphic switches of C. albicans with a general myosin ATPase inhibitor, 2,3-butanedione-2-monoxime (BDM). Transition to hyphae as well as proliferation by budding was completely inhibited by BDM at 16 mM. Presence of 16 mM BDM did not affect hyphae-to-bud transition but it blocked budding. The effects of BDM on yeast growth and dimorphic switches were reversible. More than 70% of the BDM-treated cells demonstrated defects in the amount and the polarized localization of F-actin as well as in the shape and migration of the nucleus, suggesting that myosin activities are needed in these cellular processes of C. albicans.
In this study, we found that sperm ball of Urechis unicinctus consisted of a somatic cell and spermatogenic cells. After separation from the sperm ball, individual spermatid floated freely in the coelomic fluid and differentiated into a mature sperm. Because of many nuclear vacuoles, spermatid nucleus was observed to be heterogeneous. Later, the spermatid nucleus condensed into the homogeneous round nucleus of the mature sperm. Perinuclear microtubules could be seen but did not seem to be organized into manchette microtubules. To understand the nature of nuclear condensation during spermiogenesis, the sperm and spermatids (spermiogenic cells) were treated with FITC-phalloidin, or anti-actin-FITC, or labeled with antiactin immunogold particles (AAIP; 10 nm) followed by transmission electron microscopy or confocal laser scanning microscopy. The anti-actin-FITC and FITC-phalloidin reactions occurred distinctly in the nuclei of both spermiogenic cells. FITC-phalloidin reacted more intensely with acrosomes. The AAIP were incorporated mainly into nuclei of both cells sometimes showing local distribution in the nucleus. Nuclear vacuoles of spermatids disappeared progressively with condensation of the nucleus, as the number of incorporated $AAIP/{\mu}m^2$ increased. These results suggest that nuclear actin microfilaments might be closely related to nuclear condensation.
The actin cytoskeleton plays an important role in macrophage-mediated inflammatory responses by modulating the activation of Src and subsequently inducing nuclear factor (NF)-${\kappa}B$ translocation. In spite of its critical functions, few papers have examined how the actin cytoskeleton can be regulated by the activation of toll-like receptor (TLR). Therefore, in this study, we further characterized the biological value of the actin cytoskeleton in the functional activation of macrophages using an actin cytoskeleton disruptor, cytochalasin B (Cyto B), and explored the actin cytoskeleton's involvement in morphological changes, cellular attachment, and signaling events. Cyto B strongly suppressed the TLR4-mediated mRNA expression of inflammatory genes such as cyclooxygenase (COX)-2, tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$, and inducible nitric oxide (iNOS), without altering cell viability. This compound also strongly suppressed the morphological changes induced by lipopolysaccharide (LPS), a TLR4 ligand. Cyto B also remarkably suppressed NO production under non-adherent conditions but not in an adherent environment. Cyto B did not block the co-localization between surface glycoprotein myeloid differentiation protein-2 (MD2), a LPS signaling glycoprotein, and the actin cytoskeleton under LPS conditions. Interestingly, Cyto B and PP2, a Src inhibitor, enhanced the phagocytic uptake of fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran. Finally, it was found that Cyto B blocked the phosphorylation of vasodilator-stimulated phosphoprotein (VASP) at 1 min and the phosphorylation of heat shock protein 27 (HSP27) at 5 min. Therefore, our data suggest that the actin cytoskeleton may be one of the key components involved in the control of TLR4-mediated inflammatory responses in macrophages.
Objective: This study was conducted to investigate the roles of LIM kinases (LIMK1 and LIMK2) during porcine early embryo development. We checked the mRNA expression patterns and localization of LIMK1/2 to evaluate their characterization. We further explored the function of LIMK1/2 in developmental competence and their relationship between actin assembly and cell junction integrity, specifically during the first cleavage and compaction. Methods: Pig ovaries were transferred from a local slaughterhouse within 1 h and cumulus oocyte complexes (COCs) were collected. COCs were matured in in vitro maturation medium in a CO2 incubator. Metaphase II oocytes were activated using an Electro Cell Manipulator 2001 and microinjected to insert LIMK1/2 dsRNA into the cytoplasm. To confirm the roles of LIMK1/2 during compaction and subsequent blastocyst formation, we employed a LIMK inhibitor (LIMKi3). Results: LIMK1/2 was localized in cytoplasm in embryos and co-localized with actin in cell-to-cell boundaries after the morula stage. LIMK1/2 knockdown using LIMK1/2 dsRNA significantly decreased the cleavage rate, compared to the control group. Protein levels of E-cadherin and β-catenin, present in adherens junctions, were reduced at the cell-to-cell boundaries in the LIMK1/2 knockdown embryos. Embryos treated with LIMKi3 at the morula stage failed to undergo compaction and could not develop into blastocysts. Actin intensity at the cortical region was considerably reduced in LIMKi3-treated embryos. LIMKi3-induced decrease in cortical actin levels was attributed to the disruption of adherens junction and tight junction assembly. Phosphorylation of cofilin was also reduced in LIMKi3-treated embryos. Conclusion: The above results suggest that LIMK1/2 is crucial for cleavage and compaction through regulation of actin organization and cell junction assembly.
Junction-mediating and regulatory protein (JMY) is a regulator of both transcription and actin filament assembly. The actin-regulatory activity of JMY is based on a cluster of three actin-binding Wiskott-Aldrich syndrome protein homology 2 (WH2) domains that nucleate actin filaments directly and promote nucleation of the Arp2/3 complex. In addition to these activities, we examined the activity of JMY generation in early embryo of mice carrying mutations in the JMY gene by CRISPR/Cas9 mediated genome engineering. We demonstrated that JMY protein shuttled expression between the cytoplasm and the nucleus. Knockout of exon 2, CA (central domain and Arp2/3-binding acidic domain) and NLS-2 (nuclear localization signal domain) on the JMY gene by CRISPR/Cas9 system was effective and markedly impeded embryonic development. Additionally, it impaired transcription and zygotic genome activation (ZGA)-related genes. These results suggest that JMY acts as a transcription factor, which is essential for the early embryonic development in mice.
Pneumocystis carinii causes serious pulmonary infection in immuno-suppressed patients. This study was undertaken to observe the cytoskeletal proteins of P. carinii by immune-electron microscopy. P. carinii infection was experimentally induced by immunosuppression of Sprague-Dawley rats for seven weeks, and their lungs were used for the observations of this study. The gold particles localized actin, tropomyosin, and tubulin. The actin was irregularly scattered in the cytoplasm of the trophic forms but was much more concentrated in the inner space of the cell wall of the cystic forms called the inner electron-lucent layer No significant amount of tropomyosin was observed in either trophic forms or cystic forms. The tubulin was distributed along the peripheral cytoplasm and filopodia of both the trophic and cystic forms rather than in the inner side of the cytoplasm. Particularly, in the cystic forms, the amount of tubulin was increased and located mainly in the inner electron-lucent layer of the cell wall where the actin was concentrated as well. The results of this study showed that the cell wall of P carinii cystic forms is a structure whose inner side is rich in actin and tubulin. The location of the actin and tubulin in P. carinii suggests that the main role of these proteins is an involvement in the protection of cystic forms from the outside environment by maintaining rigidity of the cystic forms.
The neuronal cytoskeleton is essential for establishment of neuronal polarity, but mechanisms controlling generation of polarity in the cytoskeleton are poorly understood. The nonreceptor tyrosine kinase, Fer, has been shown to bind to microtubules and to interact with several actin-regulatory proteins. Furthermore, Fer binds p120 catenin and has been shown to regulate cadherin function by modulating cadherin-${\beta}$-catenin interaction. Here we show involvement of Fer in neuronal polarization and neurite development. Fer is concentrated in growth cones together with cadherin, ${\beta}$-catenin, and cortactin in stage 2 hippocampal neurons. Inhibition of Fer-p120 catenin interaction with a cell-permeable inhibitory peptide (FerP) increases neurite branching. In addition, the peptide significantly delays conversion of one of several dendrites into an axon in early stage hippocampal neurons. FerP-treated growth cones also exhibit modified localization of the microtubule and actin cytoskeleton. Together, this indicates that the Fer-p120 interaction is required for normal neuronal polarization and neurite development.
Nebulin is an unusually large actin-binding protein specific to the skeletal muscle of vertebrates. The correlation of nebulin size with thin filament length have led to the suggestion that nebulin acts as a molecular ruler for the length of thin filaments. An SH3 domain occupies the C terminus of nebulin, in the sarcomeric Z-disk and is preceded by a 120-residue stretch containing multiple putative phosphorylation sites. SH3 domain mediates protein-protein interaction involved in the subcellular localization of proteins, cytoskeletal organization and signal transduction. However the binding partner and physiological role of nebulin SH3 domains remains unknown. Using the yeast two-hybrid system, we identified supervillin, an actin-binding protein, as a nebulin SH3 domain-interacting protein. The SH3 domain of nebulin binds to the sequence encoding amino acids 977 to 1335 of supervillin. But the sequence encoding amino acids 977 to 1335 displays weaker binding than the sequence encoding amino acids 977 to 1788.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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