Kamra, D.N.;Saha, Sudipto;Bhatt, Neeru;Chaudhary, L. C.;Agarwal, Neeta
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.16
no.3
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pp.374-379
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2003
Four rumen fistulated Murrah buffaloes were used to study the effect of four diets differing in roughage to concentrate ratio on rumen biochemical changes, microbial enzyme profile and in sacco degradability of feed in a $4{\times}4$ Latin Square design. The animals were fed four diets consisting of 80:20, 70:30, 60:40 and 50:50 ratios of wheat straw and concentrate mixtures, respectively. Wheat straw and concentrate mixture were mixed with water (0.6 l/kg feed) and complete feed mixture was offered to the animals at 8:00 h and 16:00 h in two equal parts. The variation in pH of rumen liquor (difference of maximum and minimum during 0-8 h post feeding) increased with increasing level of concentrate mixture in the diet. There was no effect of diet composition on volatile fatty acids, total nitrogen and trichloro-acetic acid precipitable nitrogen in the rumen liquor, but ammonia nitrogen increased with increasing level of concentrate mixture in the ration. Major portions of all fibre degrading enzymes were present in the particulate material (PM) of the rumen contents, but protease was absent in PM fraction. The activities of micro-crystalline cellulase, acetyl esterase and protease increased with increase in the level of concentrate mixture, but the activities of other enzymes (carboxymethylcellulase, filter paper degrading activity, xylanase, $\beta$-glucosidase and $\beta$-xylosidase) were not affected. The in sacco degradability and effective degradability of feeds increased with increasing level of concentrate mixture in the ration.
The green peach aphids(Myzus persicae) collected in a field had been successively selected by acephate(O, S-dimethyl N-acetyl phosphoroamidothioate) in the laboratory. The selected aphid strain in the 20th generation demonstrated relatively high resistance to acephate as well as relatively high cross-resistance to cypermethrin and oxydemeton-methyl, except pirimicarb. The different esterase isozymes with the strains were detected by the agarose gel electrophoresis and among the isozymes the band of ${\beta}-2$ was only specific for the acephate resistant strains.
We investigated the phenotypic characteristics by using API20E, APIZYM and determined minimum inhibitory concentrations (MICs) of 7 antibiotics in motile aeromonads isolated from freshwater fishes in Korea and Japan, and 4 American Type Culture Collection (ATCC) strains. All isolates (n=7) were identified as motile Aeromonas species according to API20E test. Lysine decarboxylase activity and acid production from 4 different carbohydrates including mannitol, rhamnose, amygdalin and arabinose were observed in various strains. In enzymatic activities by APIZYM, all isolates showed negative reactions in valine and cystine arylamidases, α-chymotrypsin, α-galactosidase, β-glucuronidase, α-glucosidase, α-mannosidase and α-fucosidase. Although the intensities of each enzymatic activity were diverse in alkaline phosphatase, esterase-lipase, leucine arylamidase, β-galactosidase and N-acetyl-β-glucosaminidase, all isolates showed positive reactions. All isolates were resistant to ampicillin sodium (MIC>100㎍/ml), but sensitive to chloramphenicol (MIC≤1.6㎍/ml). However, recently isolated strains (AC9804, AC0202 and GMA0361) were commonly resistant to tetracycline (MIC=50㎍/ml). Furthermore, AC9804 was resistant to oxolinic acid (MIC=12.5㎍/ml). GMA0361 was resistant to kanamycin sulfate (MIC>100㎍/ml) and streptomycin sulfate (MIC>100 ㎍/ml).
This study was carried out to investigate the resistance mechanism by three different kinds of procymidone-resistant and susceptible isolates of Botrytis cinerea which had been collected from green houses. The average resistance level of the resistant strains was 1,000 times higher than that of susceptible ones. Also, it was revealed that the resistance was not originated from components excreted by Botrytis cinerea, based on the result obtained from the treatment with piperonyl butoxide and triphenyl phosphate as an inhibitor of monooxygenase and esterase, respectively. The total lipod content of resistant strains was 1.3 times higher than that of susceptible ones, among fatty acids, palmitic acid, stearic acid, and linoleic and being 3.0, 2.5, and 2.0 times higher, respectinely. Also slight differences in sterol contents and components were observed. The crude chitin content was slightly higher in susceptible strains but contents of N-acetyl glucosamine, a hydrolysate of chitin, were about 2 times higher in resistant ones.
Cellulolytic bacterial strains have been isolated from the faeces of wild (blackbuck, Antilope cervicapra; nilgai, Baselophus tragocamelus chinkara, Gazella gazella spotted deer, Axis axis and hog deer, Cervus porcinus) and rumen liquor of domestic (sheep, Ovis aries) ruminants. Five best cellulose degrading bacterial isolates (Ruminococcus sp.) were used as microbial feed additive along with buffalo rumen liquor as inoculum to study their effect on digestibility of feed and enzyme production in in vitro conditions. The bacterial isolate from chinkara (CHI-2) showed the highest per cent apparent dry matter (DM) digestibility ($35.40{\pm}0.60$), true dry matter digestibility ($40.80{\pm}0.69$) and NDF ($26.38{\pm}0.83$) digestibility (p<0.05) compared to control ($32.73{\pm}0.56$, $36.64{\pm}0.71$ and $21.16{\pm}0.89$, respectively) and other isolates at 24 h of incubation with lignocellulosic feeds (wheat straw and wheat bran, 80:20). The same isolate also exhibited the highest activities of fibre degrading enzymes like carboxymethylcellulase, xylanase, ${\beta}$-glucosidase and acetyl esterase. The bacterial isolate from chinkara (Gazella gazella) appears to have a potential to be used as feed additive in the diet of ruminants for improving utilization of nutrients from lignocellulosic feeds.
A tuber lectin from Arisaema jacquemontii Blume belonging to family Araceae was purified by employing a single step affinity chromatography using column of asialofetuin-linked amino activated silica beads and the bound lectin was eluted with 100 mM glycine-HCl buffer pH 2.5. The purified A. jacquemontii lectin (AJL) showed a single protein band with an apparent molecular mass of 13.4 kDa when submitted to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis under reducing as well as non-reducing conditions. The native molecular mass of AJL determined by gel filtration on a Biogel P-200 column was 52 kDa and its carbohydrate content was estimated to be 3.40%. Thus AJL is a tetrameric glycoprotein. The purified lectin agglutinated erythrocytes from rabbit but not from human. Its activity was not inhibited by any of the mono- and disaccharides tested except N-acetyl-D-lactosamine having minimal inhibitory sugar concentration (MIC) 25 mM. Among the glycoproteins tested only asialofetuin was found to be inhibitory (MIC $125\;{\mu}g/mL$). A single band was obtained in native PAGE at pH 4.5 while PAGE at pH 8.3 showed two bands. Isoelectric focusing of AJL gave multiple bands in the pI range of 4.6-5.5. When incorporated in artificial diet AJL significantly affected the development of Bactrocera cucurbitae (Coquillett) larvae indicating the possibility of using this lectin in a biotechnological strategy for insect management of cucurbits. Larvae fed on artificial diet containing sub-lethal dose of AJL showed a significant decrease in acid phosphatase and alkaline phosphatase activity while esterase activity markedly increased as compared to larvae fed on diet without lectin. Out of various human cancer cell lines employed in sulphorhodamine B (SRB) assay, this lectin was found to have appreciable inhibitory effect on the in vitro proliferation of HCT-15, HOP-62, SW-620, HT-29, IMR-32, SKOV-3, Colo-205, PC-3, HEP-2 and A-549 cancer cell lines by 82, 77, 73, 70, 41, 41, 37, 29, 21 and 21% respectively.
An obligately aerobic bacterium, strain KOPRI $20902^T$, was isolated from a marine sediment in Ny-${\AA}$lesund, Spitsbergen Islands, Norway. Cells were irregular rods and motile with polar monotrichous flagellum. The optimum growth temperature was $17-22^{\circ}C$. Cells grew best in pH 7.0-10.0 and 3-4% sea salts (corresponding to 2.3-3.1% NaCl). The novel strain required $Ca^{2+}$ or $Mg^{2+}$ in addition to NaCl for growth. Sequence analysis of 16S rRNA gene revealed that the Arctic isolate is distantly related with established species (<92.4% sequence similarity) and formed a monophyletic group with Cellvibrio, which formed a distinct phylogenetic lineage in the order Pseudomonadales. Predominant cellular fatty acids [$C_{16:1}\;{\omega}7c/15:0$ iso 2OH (45.3%), $C_{16:0}$ (18.4%), ECL 11.799 (11.2%), $C_{10:0}$ 3OH (10.4%)]; DNA G+C content (37.0 mol%); nitrate reduction to nitrogen; absence of aesculin hydrolysis, N-acetyl-${\beta}$-glucosaminidase and esterase; no assimilation of arabinose, galactose, glucose, lactose, maltose, and trehalose differentiated the strain from the genus Cellvibrio. Based on the phylogenetic and phenotypic characteristics, Dasania marina gen. nov., sp. nov. is proposed in the order Pseudomonadales. Strain KOPRI $20902^T$ (=KCTC $12566^T$=JCM $13441^T$) is the type strain of Dasania marina.
Several microorganisms (esterase-producing group) were isolated by the solid selective media containing-naphtylacetate. Among them, strain 366M-9 having a high activity of cephalosporin-C deacetylase (CAH; EC 3.1.1.41) was selected. The strain 366M-9 was identified as Bacillus sphaericus on the basis of morphological, physiological, and biochemical characteristics. The production of CAH reached at maximum value after 32 hrs, when cultivated in the optimal medium containing dextrin 2.5%, peptone 2.5%, sodium chloride 0.5%, dipotassium phosphate 0.25%, ferrous sulfate 0.02%, and 7-ACA 0.1% at $30^{\circ}C$ with initial pH 6.0. The CAH was purified by 3 steps with ammonium sulfate precipitation, adsorption chromatography on hydroxyapatite column, and Sephadex G-200 gel chromatography. The final enzyme preparation was homogeneous as judged by the analysis of SDS-PAGE and HPLC. Optimum temperature and pH for CAH activity were $50{\circ}C$ and around 7.0, respectively. And the enzyme was stable at pH 6.0~8.0, up to $50^{\circ}C$. The Michaelis-Menten constants ($K_{m}$ ), $V_{max}$ were 0.87 mM and 1.22 unit/ml, respectively.
Jo Qtae;Choy Eun-Jung;Park Doo Won;Jee Young-Ju;Kim Sung Yeon;Kim Yoon
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.5
no.4
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pp.263-270
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2002
The Pacific oysters, Crassostrea gigas, were stressed with different concentrations of benzo(a) pyrene and depurated to determine the hemocyte lysosomal membrane stability and hydrolytic enzymatic activity as a biomarker candidate to the chemical, using NRR (neutral red retention) and API ZYM System, respectively. The membrane damage measured as NRR decrease was significant with the increase of chemical concentration and exposure time (P<0.05), providing a possible tool for biomarker. Interestingly, the control showed intrinsic stress probably due to captive life in the laboratory, and a recovering trend was also found during the depuration. The benzo(a)pyrene-exposed oysters showed increased enzyme activities in alkaline phosphatase, esterase (C4), acid phosphatase, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, $\beta$-galactosidase, $\beta$-glucuronidase, and N-acetyl- $\beta$-glucosaminidase. Of them, only two enzymes, acid phosphatase and alkaline phosphatase, showed some potential available for the generation of enzymatic biomarker in the oyster. The results are suggestive of the potential availability of the cellular and enzymatic properties as a biomarker. However, considering that a robust biomarker should be insensitive to natural stress coming from normal physiological variation, but sensitive to pollutants, a concept of intrinsic stress the animal possesses should be taken into consideration. This reflects the necessity of further research on the intrinsic stress affecting the cellular and enzymatic properties of the chemicalstressed oysters prior to using the data as a biomarker.
An alkaliphilic bacterium, Bacillus sp. strain BK, was found to produce extracellular cellulase-free xylanolytic enzymes with xylan-binding activity. Since the pellet-bound xylanase is eluted with 2% TEA from the pellet of the culture, they contain a xylan-binding region that is stronger than the xylan-binding xylanase of the extracellular enzyme. The xylanases had a different molecular weight and xylan-binding ability. The enzyme activity of xylanase in the extracellular fraction was 6 times higher than in the pellet-bound enzyme. Among the enzymes, xylanase had the highest enzyme activity. When Bacillus sp. strain BK was grown in pH 10.5 alkaline medium containing xylan as the sole carbon source, the bacterium produced xylanase, arabinofuranosidase, acetyl esterase, and $\beta$-xylosidase with specific activities of 1.23, 0.11, 0.06, and 0.04 unit per mg of protein, respectively. However, there was no cellulase activity detected in the crude enzyme preparation. The hydrolysis of agricultural residues and kraft pulps by the xylanolytic enzymes was examined at 50$^{\circ}C$ and pH 7.0. The rate of xylan hydrolysis in com hull was higher than those of sugarcane bagasse, rice straw, com cop, rice husk, and rice bran. In contrast, the rate of xylan hydrolysis in sugarcane pulp was 2.01 and 3.52 times higher than those of eucalyptus and pine pulp, respectively. In conclusion, this enzyme can be used to hydrolyze xylan in agricultural residues and kraft pulps to breach and regenerate paper from recycled environmental resources.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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