Background: Recently, cell transplantation has been extensively investigated to improve heart function in dysfunctional heart. This study was designed to compare the effects of smooth muscle cells (SMC) and heart cells (HC) transplantation in dilated cardiomyopathic hamsters. Material and Method: HC and SMC were isolated from heart and ductus deferens of BIO 53.58 hamsters, and cultured for transplantation. HC and SMC or culture medium were transplanted into the left ventricle of 17 weeks old adult hamsters in HC transplanted (HCTx), SMC transplantation (SMCTX), and control groups (Con) (N = 10 each). Cyclosporine (5 mg/Kg) was administered subcutaneously for HCTx. Sham operated hamsters (N=10) underwent the surgery but did not receive an injection. At 4 weeks after transplantation, heart function was evaluated in all groups using a Langendorff perfusion apparatus. Result: Histology showed severe focal myocardial necrosis in all groups. HCTx and SMCTx formed huge muscle tissue in dilated myocardium. SMCTx and HCTx had better heart function than Con and sham (p<0.01). And SMCTx had better peak systolic pressure (p<0.05) antral developed pressure (p<0.05) than HCTx. But sham and Con did not any statistical make difference. Conclusion: SMCTx and HCTx formed muscle tissue and improved ventricular function in hamsters with dilated cardiomyopathy And SMCTx showed better heart function in peak systolic pressure and developed pressure than HCTx.
This study was conducted to investigate the effects of coculture for the development rate to morula/blastocyst stages of early porcine embryos, derived from oocytes matured and fertilized In vitro, with porcine cumulus cell monolayers(PCM) in the two different media, respectively. The rates of embryos developed to 2-, 4-, 8~16-cell and morula/blastocyst stage were 48.7, 40.5, 34.8 and 17.0% in Ham's F-10 with PCM, and 48.3, 35.6, 22.1, and 13.4% in TCM-HEPES with PCM, respectively. The above development rates to morula/blastocyst stages were significantly higher than those of the embryos cultured in the Ham's F-10 and TCM-HEPES without PCM(P<0.05). The in vitro development rates to the morula/blastocyst stage of I-cell embryos cultured in Ham's F-10 and TCM-HEPES without PCM were 0.0~1.0%. Especially, most of embryos were observed to arrest the development beyond 4-cell stages. As shown in the above results, the coculture of in vitro fertilized porcine embryos with PCM in the two different media enhanced the development of fertilized eggs to morula/blastocyst stages in vitro. However, we didn't find out any difference for the in vitro development to morula/blastocyst stages between Ham's F-10 and TCM-HEPES media.
This study was conducted to establish the optimal suspension culture system for both the propagation of embryogenic cells (ECs) and the induction of somatic embryos (SEs) of Kalopanax septemlobus. The proliferation rate of ECs was reduced as the inoculum density was increased; the highest rate was obtained when 0.1 g/100 ml of cells was initially inoculated. According to the analysis of cell growth pattern and cell growth cycle (G1, Sand G2/M), the cell growth started in 5 days culture initiation, grew rapidly until 15 days and then decreased gradually. Distinctive changes of the cell growth cycle by the culture periods was also observed; the growth cycle was doubled from initial 5.6% to 11.7% of S stage in 5 days culture and then reached in stable stages again. Therefore, the results indicated that a 15-day-cycle was the optimal culture period for the propagation of the ECs through the suspension culture. Furthermore, the cell inoculum density was also important for the induction of SE; more than 65% of SEs at the torpedo stage was induced by using the low level of cell inoculum (0.5 g/L), while the higher inoculum densities were rapidly reduced the proportion of SEs at that stage. Although the higher inoculum density delayed the development of SE, it did not affect the proportion of SEs at the globular and heart stage. In conclusion, this study showed that the suspension culture of the Kalopanax septemlobus ECs through the control of inoculum density was an efficient way for both the propagation of ECs and the induction of SEs, suggesting that the development of this system might help to reduce the culture period for the somatic embryo production.
The effect of exogenous phosphate supply on the regulation of phosphate metabolism was investegated during catabolic repression and catabolic derepression in yeast (Saccharomyces uvarum). As the results, when sugar was supplimented in cells cultivated under phosphate free, the growith rate was low but it was capable of cell division. Polyphosphate "B" was accumulated highly in proportion to amount of phosphate added to the medium. Without regard to phosphate supply of the medium, the total amount of polyphospgate was almost similar, although each polyphosphate was turned over. Activities of all phosphatases remained continuousoy high in the cells cultivated in the phosphate free medium. Especially under catabolic repression, the function of polyphosphate system was shown to compensate the ATP/ADP system as phosphate donor, energy source and regulator.
본 연구는 치주낭에 biofilm형태로 부착되어 질환을 유발시키고 항생제 빚 항균제에 저항을 일으키는 세균 독성요소를 규명하기 위해 시행된 기초연구이다. 치주질환의 주 병원균의 하나인 Porphyromonas gingivalis 381 biofilm의 세포외막에 특이하게 발현되는 단백질을 규명하기 위한 기초적인 자료를 얻기 위해 시행하였다. Porphyromonas gingivalis 381을 통상적인 세균 배양용 broth를 사용하여 혐기성 세균 배양기로 24시간 배양한 것을 대조군으로 하고, tissue culture plate를 이용하여 혐기성 배양조건 하에서24시간동안 biofilm을 형성하여 실험군으로 설정하였다. 세균을 수획하여 세포외막을 분리하고 isotonic isoelectric focusing을 시행한 결과 주로 약 20-30 kilodaltons에 해당하는 수종의 세균세포막 단백질이biofilm으로 배양한 세균에서 더 상승적으로 발현됨이 관찰되었고, 상이한 수종의 단백질도 planktonic culture broth로 배양한 세균에서 다 상승적으로 발현됨을 관찰할 수 있었다. 이것은 세균의 배양조건과 환경에 따라 그 외막 단백질이 서로 다르게 발현됨을 입증하는 기초적인 자료로서 향후 단백질의 동정과 성격을 규명하는 근간 실험으로 추진할 계획이다.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.115-115
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2003
아미노산은 수정란의 체외생산에 있어서 배발달에 유효하게 작용한다. 이러한 이유로 체외배양 단계에 아미노산 첨가에 관한 보고는 많지만, 체외성숙 단계에서의 아미노산 효과와 관련된 보고는 소수이다. 본 실험에서는 먼저 체외성숙 배지에 NEAA와 EAA군들의 첨가 농도가 PB 출현율, 배발달율 그리고 생산된 배반포의 세포수에 미치는 영향과 더불어 새로운 아미노산원으로 LAH의 효과를 검토하였다. 체외성숙을 위한 난포란은 도축 한우 난소에서 2-8mm의 가시난포로부터 회수하였다. 체외성숙용 배지는 10% FBS가 첨가된 CRlaa 용액을 사용하였고, 실험1에서는 NEAA와 EAA(20$\mu l$/ml)군을 각각 $\times$l (NEAA:10$\mu l$/ml, EAA:20$\mu l$/ml), $\times$2 및 $\times$4를, 실험2에서는 LAH를 각각 1, 5 및 10 mg/ml를 첨가하였다. 체외수정은 fer-TALP 용액을, 체외배양은 CRlaa 용액을 배양 2일째까지는 0.3% BSA를, 그 이후에는 10% FBS와 난관상피세포를 첨가하여 사용하였다. 그리고 배양 8일째 확장배반포의 세포수를 조사하기 위하여 이중형광염색을 실시하였다. 통계분석은 $X^2$-test를 이용하였다. 실험 1에서 NEAA와 EAA 첨가 농도에 따른 PB 출현율은 $\times$l 첨가군(46.6%)이 대조군(29.9%)에 비하여 유의적으로 높았다. 수정을, 8세포기 및 배반포까지 발달율은 비슷한 경향이었으나, $\times$l 첨가군이 가장 높았다. 한편 ICM 세포수가 아미노산 첨가 농도의 높을수록 증가하는 경향이었고, 특히 $\times$4 첨가군($23.9 \mu 3.9$)이 대조군($14.8 \mu 2.5$)에 비하여 유의적(P<0.05)으로 높았다. 실험 2에서 LAH 첨가에 따른 핵성숙율은 5mg 첨가군, 배반포까지 발달율은 1mg 첨가군(25.9%)이 각각 가장 높았다. 배양 8일째 배반포의 세포수에 있어서 총세포수와 TE 세포수는 차이가 없었으나, ICM 세포수가 l0mg 첨가군에서 가장 높았다. 본 실험 결과에서 체외성숙 배지에 NEAA와 EAA 첨가가 배발달율에는 효과가 없었지만, 첨가농도의 증가에 따라 ICM 세포수가 증가하였다. 한편 체외성숙 배지에 LAH 첨가는 첨가 농도가 높을수록 배발달율은 낮았지만 ICM 세포수는 증가하였다.
S. marcescens cultured at $30^{\circ}C$ with vigorous shaking was shown to produce red-pigment, prodigiosin, in the senescent phase of growth. Also, it showed many hydrophobic characteristrics, which were tested by the adherence to noncharged surfaces of polystyrene dishes, a typical agent for the binding of hydrophobic cells and molecules. However, when the cell was cultured at $37^{\circ}C$, it no longer produced either red pigment or hydrophobic materials. Therefore, the bacteria cultured at $37^{\circ}C$ was completely washed-out from the polystyrene dishes at the copious washing step with tap water, in contrast to the cell cultured at $30^{\circ}C$ which was sticked onto the polystyrene dishes very tightly. The lipid compositions extracted from the S. marcescens cultured at $30^{\circ}C$ or $37^{\circ}C$ were very different from each other; the phospholipids, glycolipids and unidentified lipids were produced from the cell cultured at $30^{\circ}C$, whereas large amounts of serratamolide, amphipathic compound, were produced from the cell cultured at $37^{\circ}C$. The data suggest that the pronounced cell surface hydrophobicity of the S. marcescens is mediated by a combination of several surface factors that were affected by cultivation time and temperatures.
In this study, hatched male broiler chicks(Ross) were fed on a basal diet and LPS was administered via intraperitoneal injection three times every other day, on the 9th, 11th and 13th days of the experiment, and then PBMC and splenocytes were isolated on day 14. The degree of alama blue reduction was evaluated at 4, 24, 48, 96 and 120 h in the splenocytes, and at 4, 8, 12, 24 and 48 h for PBMC of incubation after the addition of alama blue solution to the media. The cell numbers used in this experiment were 103, 104 and 105 cells per well, and the con A levels were 0.0, 1.0, 5.0, and 10.0 ㎍ per ml of medium. 1. The degree of alama blue reduction was found to increase in a linear fashion with increasing incubation time and cell numbers, for both splenocytes and PBMC. 2. During acute phase response, the degree to which alama blue was reduced was significantly elevated (p<0.05) at an incubation time of 24 hr for the splenocytes, 4 hr for PBMC, and a cell number of 105 cells per well, respectively. 3. The raised reduction of alama blue to control was linear with Con A levels in medium, and higher reduction in Con A 10.0 ㎍ relative to 1.0 or 5.0 ㎍ in ml medium was shown 4. The medium with autologous serum evidenced a significantly (p<0.05) higher reduction of alama blue relative to FBS. 5. Splenocytes and PBMC from the LPS-injected birds evidenced significantly higher levels of alama blue reduction regardless of incubation time, number of cells, level of Con A added, or serum type, as compared with what was observed in normal birds. The results indicated that the assay conditions for proliferative activity using the alama blue method in birds in which the acute phase response had been activated via intraperitoneal LPS injection requires 4 hrs of incubation for PBMC, 24 hrs of incubation for splenocytes, and 10㎍ of Con A per ml of medium.
최근 의약적으로 유용한 단백질을 대량 생산키 위한 실현 가능한 방법이 유전자변환 가축의 이용과 관련되어 발전되어 왔다. 이러한 유전자 변환동물은 이종의 단백질을 유즙속으로 분비시키는 생체반응기로서 이용되고 있다. 이러한 전략적 목적을 위해 현재 유전자 변환동물의 생산을 위한 이용에 있어 여러 가지 방법들이 보고되고 있다. 그러나 ES 세포의 사용이 이러한 방법들 사이에서 가장 실질적인 것으로 추정되고 있다. 본 실험에서는 유전자 구축을 위해 사람 황체 호르몬(human luteinizing hormone; hLH)의 전사를 유도하기 위해 각각 2.2 및 0.5 kb의 토끼 $\beta$-casein pronoter 단편을 이용하여 생쥐의 유선에 hLH를 발현시키도록 조절하고 발현이 thynidine kinase(TK) pronoter에 의해 좌우되는 neo 유전자를 selectable marker로서 plasnid속에 삽입하였다. 그 결과 생긴 구축 유전자는 각각 pCas 2.2와 pCas 0.5로 명명하였다. 구축된 유전자로 2$\times$107의 TT-2 ES세포를 170V, 550$\mu$F로 100$\mu$g의 선상 plasmid에 의해 electroporation 시켰다. 감염된 colony들은 250$\mu$g/$m\ell$ G418을 함유하는 ESM 배양액에서 선별 7일 이후에 회수하여 성공적으로 감염된 ES세포는 PCR 및 Southern blot에 의해 확인되었고 그들 중 나머지는 trypsin 처리 후 각각 미세조작과 공배양 기술을 사용하여 ICR 생쥐의 8세포기 수정란 속에 도입하였다. 결국 24시간 동안 37$^{\circ}C$, 5% $CO_2$에서 배양된 배반포를 chimera의 생산을 위해 위임신 유기된 G418 선발처리 이후 400 및 275개의 ES 세포 colony가 생존하였으며, 3개의 ES 세포으 colony 의 genome 속에 임의적으로 plamid가 삽입된 것을 Southern blot에 의해 확인되었다. 총 13 chimera 생쥐가 3 colony로부터 생산되었으나 germ-line chimera는 현재 조사중이다. chimera 생산빈도는 공배양 기술보다 주입방법에서 현저히 높았다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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