재료 및 방법
실험 재료 −시험물질로서 D-pinitol과 대조군 물질인 doxorubicin hydrochloride와 metformin은 Sigma(Sigma, St. Louis, MO, USA)사에서 구입하였으며 충북대학교 약학대학 약품 미생물학 연구실에 보관하였다.
시약 및 기기 −세포배양에 필요한 RPMI, DMEM, FBS, penicillin/streptomycin, PBS는 Gibco(Gibco, Grand Island, NY, USA)사에서 구입하였으며, 배양기는 Sanyo(Sanyo, Moriguchi, Osaka, Japan)사의 CO2 배양기를 사용하였다. MTT assay에 사용한 MTT는 Amresco(Amresco, Solon, OHIO, USA)사에서 구입하였으며, MTT solvent에 들어가는 HCl과 isopropanol은 Deajung(Daejung, Siheung-si, Gyeonggi-do, Korea)사에서, triton X-100은 USB(USB, Clevelanf, OHIO, USA)사에서 구입하였다. Formazan을 녹이는데 사용한 obital shaker는 Heidolph(Heidolph, Walpersdorfer, Schwabach, Germany)사의 vibramax 100을 사용하였고, 흡광도를 측정하는 microplate reader기는 Molecular devices(Molecular devices, Silicon Valley, CA, United States)사의 spectramax M2를 사용하였다. 암줄기세포의 비율을 측정하기 위해 사용되는 anti-CD44 항체와 anti-CD24 항체는 BD(BD, San Diego, CA, USA)사에서 구입하였으며, BSA는 Sigma사에서 구입하였다. 암줄기세포의 비율을 확인하는데 사용한 유세포 분석기는 BD사의 cantoⅡ를 사용하였다. 96-well plate는 SPL(SPL, Pocheon-si, Gyeonggi-do, Korea)사에서 구입하였으며, 1 ml syringe와 1 ml insulin syringe, cell strainer는 BD사에서 구입하였다.종양의 크기는 Mitutoyo(Mitutoyo, Kawasaki, Kanagawa, Japan)사의 vernier caliper를 구입하여 측정하였다.
세포 배양 −인체유래 유방암 세포주인 MDA-MB-231 세포는 10% FBS와 1% penicillin/streptomycin을 첨가한 RPMI 1640 배지를 사용하여 배양 하였으며, 인체유래 유방암 세포주인 MCF-7 세포는 10% FBS와 1% penicillin/streptomycin을 첨가한 DMEM 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 조건에서 배양 하였다.
세포 성장 측정 −세포의 성장을 측정하기 위해 MTT assay를 실시하였다. MDA-MB-231 세포주와 MCF-7 세포주를 각각 배지 200 μl에 5×104 cell씩 포함되도록 하여 96-well plate에 분주하여 24시간 동안 배양하였다. 배지를 제거한 뒤 배양된 세포에 doxorubicin hydrochloride(최종농도:1 μM), metformin(최종농도:5 mM)과 D-pinitol(최종농도:1,5, 10 mM)이 첨가된 배지를 200 μl씩 넣어준 후 48시간 배양하였다. 48시간 후 MTT solution(5 mg/ml)을 넣어준 뒤 2시간 동안 차광된 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양하였다. 배지를 제거한 후 MTT solvent(HCl 50 μl, isopropanol 15 ml, 10% triton X-100)를 100 μl 넣어준 뒤 obital shaker에서 300 rpm으로 20분간 생성된 formazan을 용해시켜 주었다. Microplate reader를 이용하여 측정 파장 570 nm으로 흡광도를 측정하였다.
실험 동물 − SPF인 4주령 BALB/c nu mouse를 Orient bio(Orient bio, Seongnam-si, Gyeonggi-do, Korea)사에서 구입 후 semi-SPF 동물실에서 1주간의 적응기간을 거친 뒤 실험에 사용했다. 동물 사육실은 온도 23±1℃, 습도 50%, 12시간씩 밤낮을 유지하였다. 실험동물은 격리용 마우스 케이지에서 사육하였고, 사료와 식수는 자유로이 섭취하도록 하였다.
이종 이식 마우스 모델(Nude mouse xenograft assay) −종양 성장 관련 실험: BALB/c nu mouse에 MDAMB-231세포(9×106 cell/mouse)를 PBS 100 μl에 부유시킨 뒤 1 ml syringe로 우측의 견갑부와 흉벽 사이의 액와 부위 피하에 이식하였다. 종양의 크기가 일정수준에 도달하였을 때, 약물 투여군 별로 7개체씩 무작위로 분류하였다. D-pinitol (최종 투여용량: 500, 1000 mg/kg)과 metformin(최종 투여용량: 500 mg/kg)은 증류수를 사용하여 50 mg/ml의 농도로 용해한 후 마우스에 10 ml/kg 액량으로 반복하여 45일 동안 경구 투여하였다. Doxorubicin hydrochloride은 PBS를 이용하여 0.4 mg/ml의 농도로 용해한 후 마우스에 20 μl씩 1 ml insulin syringe를 이용하여 반복적으로 종양 내(intratumoral)에 총 4회(0, 5, 10, 15일) 투여하였다. 형성된 종양의 크기가 53.0 mm3 도달 시 부터 45일째까지 총 14회 개체별로 vernier caliper를 이용하여 3-방향을 측정한 후 길이(length)× 너비(width) × 높이(height)/2의 계산식에 의해 종양크기 측정하였다. 모든 동물에 대하여 약물 투여 개시 후 일반증상 관찰 및 체중의 변화를 측정하였다.
−재발 및 암 줄기세포 관련 실험: 종양 성장 관련 실험과 달라진 조건은 metformin 투여군은 제외하였으며, Dpinitol 투여군은 300 mg/kg 투여군을 추가 시켰다. 또한 형성된 종양의 크기가 53.0 mm3 도달 시 부터 63일째까지 총 28회 개체별로 vernier caliper를 이용하여 3-방향을 측정한 후 길이(length) × 너비(width) × 높이(height)/2의 계산식에 의해 종양크기를 측정하였다. 그 외 나머지 조건은 종양 성장 관련 실험과 동일하다.
암줄기세포의 비율 측정 −유방암의 암줄기세포 marker인 CD44분자와 CD24분자를 유세포분석기를 이용하여 암줄기세포의 비율을 측정하였다. 형성된 종양을 분리하여 cell strainer를 이용하여 단일세포화 한 뒤 ack 시약을 이용하여 적혈구를 제거해 주었다. 적혈구가 제거된 약 1×106 cell을 1% BSA을 첨가한 PBS(BSA/PBS)로 한번 세척한 후, 50 μl의 PBS/BSA 안에 부유시켰다. 세포에 anti-CD44 항체와 anti-CD24 항체를 첨가한 후 4℃에서 20분 동안 반응시키고, PBS로 두 번 세척하여, 500 μl의 PBS로 다시 부유시켜 유세포분석기로 CD44+, CD24− 표현형인 세포 비율을 분석하였다.
통계분석 −모든 실험값은 임의대로 100%로 표시한 대조군에 대하여 백분율로 나타내었다. 실험 결과는 T-test(Micro office, Excel)로 검정하였으며, p값이 0.05 미만일 때 통계적으로 유의성이 있다고 판정하였다.
결과 및 고찰
D-pinitol이 유방암 세포주 성장에 미치는 영향을 평가하기 위하여 MTT assay를 수행하였다. MDA-MB-231 세포주와 MCF-7 세포주를 24시간 배양한 뒤, 1 μM doxorubicin, 5mM metformin 그리고 1, 5, 10 mM D-pinitol을 48시간 동안 처리하여 MTT assay를 수행하였다. MDA-MB-231 세포주에서는 1 μM doxorubicin을 처리하였을 때 21.7% (p<0.05) 감소하였고 5 mM metformin을 처리하였을 때는 12.7%가 감소하였다. 또한 1, 5, 10 mM D-pinitol을 처리하였을 때는 농도별로 19% (p<0.05), 25% (p<0.01), 28.1%(p<0.05)가 감소하여 농도 의존적으로 성장이 억제되는 것을 확인하였다(Fig. 1A). MCF-7 세포주에서는 1μM doxorubicin을 처리하였을 때 41.1% (p<0.05) 감소하였고 5mM metformin을 처리하였을 때는 14.9% (p<0.01)가 감소하였으며 1, 5, 10 mM D-pinitol을 처리하였을 때는 농도별로 20.7% (p<0.05), 21.8% (p<0.05), 22% (p<0.05)가 감소한 것을 확인하였다(Fig. 1B). MTT assay에 사용한 MDA-MB-231 세포주는 MCF-7 세포주에 비해서 약물 내성관련 유전자인 p130cas의 발현이 높아 항암제로 알려진 doxorubicin에 대한 내성이 높은 것으로 보고되어 있는데27), MTT assay를 한 결과에서도 MDA-MB-231 세포주가 MCF-7 세포주에 비해서 doxorubicin의 감수성이 낮은 것으로 확인되었다. 그러나 D-pinitol은 doxorubicin과는 다르게 MCF-7 세포주에 비해서 MDA-MB-231 세포주에 대한 증식 억제 효능이 높은 것을 확인할 수 있었다.
Fig. 1.Growth inhibition of D-pinitol on breast cancer cell lines. MDA-MB-231 and MCF-7 cell lines were treated with 1-10 mM D-pinitol for 48 hour. Doxorubicin (1 μM) and metformin (5 mM) were used as comparators. Cell viability of (A) MDA-MB-231 and (B) MCF-7 cell lines were estimated by MTT assay (*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001).
인체유래 암세포주를 nude mouse에 이식하여 항암효능을 평가하는 mouse xenograft asssy는 시험물질의 효능을 in vivo상에서 확인하기에 적합한 동물시험계이다. 따라서 MTT assay에서 확인하였던 두 가지의 세포주 중 doxorubicin에 내성이 있으며 D-pinitol에는 감수성인 MDA-MB-231 세포주를 mouse에 이식한 xenograft model을 이용하여 생체 내에서 종양 성장에 어떠한 영향을 미치는지 확인하였다. MDA-MB-231세포(9×106 cell/mouse)를 BALB/c nude mouse 우측의 견갑부와 흉벽 사이의 액와 부위 피하에 이식하였고 형성된 종양의 크기가 53.0 mm3 도달 시 부터 D-pinitol (최종 투여용량: 500, 1000 mg/kg)을 반복하여 경구 투여하였으며, doxorubicin hydrochloride은 PBS를 이용하여 0.4 mg/ml의 농도로 용해한 후 마우스에 20 μl씩 반복적으로 종양 내에 투여하였다. 투여기간 동안 약물의 독성 정도를 알아보기 위해 동물의 일반증상 및 체중변화를 관찰하였으나, 약물 투여 후 일반적인 증상이나 유의적인 체중감소가 없는 것으로 보아 전체적으로 약물에 대한 독성은 나타나지 않은 것으로 판단하였다(Fig. 2A). 시험물질 투여 후 25일째에 대조군은 종양의 크기가 3243.7±1010.3 mm3으로 성장하였으나, D-pinitol 500 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 1993.5±1216.6 mm3으로 38.5%의 종양성장 억제효과를, D-pinitol 1000 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 681.1± 310.4 mm3으로 79%의 종양성장 억제효과를 나타내었다. 또한, doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 D-pinitol 500 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 171.6±51.2 mm3 (p<0.05)으로 94.7%의 종양성장 억제효과를 나타내었다. Doxorubicin 4 mg/kg 투여군에서는 190.8±105.2 mm3 (p<0.05)으로 94.1%의 종양성장 억제효과가 있었다(Fig. 2B, E). 시험물질 투여 후 45일째에 대조군은 종양의 크기가 11960.9± 4445.1 mm3으로 성장하였으나, D-pinitol 500 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 7693.5±5231 mm3으로 35.7%의 종양성장 억제효과를, D-pinitol 1000 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 552.7±234.9 mm3으로 95.4%의 종양성장 억제효과를 나타내었다. 또한, doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 Dpinitol 500 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 383.5±31.97 mm3으로 96.8%의 종양성장 억제효과를 나타내었다. Doxorubicin 4 mg/kg 투여군에서는 종양크기가 648.1±194.5 mm3으로 94.58%의 종양성장 억제효과가 있었다(Fig. 2D, F). Dpinitol에 의한 인체 유방암 종양 성장 억제가 투여량을 증가시킬수록 종양의 크기가 감소하였다.
Fig. 2.Inhibition of breast tumor growth by D-pinitol in nude mouse xenograft assay. On day 0, nine million MDA-MB-231 cell were implanted subcutaneously into nude mouse. D-pinitol at the dose of 500 mg/kg or 1000 mg/kg body weight was administered orally for consecutive 45 days. (A) The body weights of the tumor-bearing nude mice were measured to evaluate overall toxicity of D-pinitol. (B) Tumor volumes were estimated by the formula: length (mm) × width (mm) × height (mm)/2. Photographs of representative MDA-MB-231 tumor mass at (C) 25 day and (D) 45 day were shown. At (E) 25 day and (F) 45 day, relative tumor size was measured (*p<0.05).
Fig. 3.Inhibition of the growth of the cancer stem cells within tumor mass by D-pinitol. On (A) 25 day and (B) 46 day, the mice were sacrificed and CSCs population of the breast tumors were measured by flow cytometry analysis after double staining with anti-CD44 and anti-CD24 antibodies.
유방암 치료 후에도 재발이 일어나는 이유 중 하나는 암줄기세포에 의한 새로운 종양의 증식에서 기인하는 것으로 알려져 왔다. 유방암 재발에 영향을 미치는 암줄기세포는 CD44+, CD24−의 표현형을 지닌다. 따라서 우리는 MDAMB-231 세포주를 BALB/c nude mouse에 이식한 mouse xenograft assay를 수행하여 D-pinitol이 암줄기세포의 증식에 미치는 영향 분석하였다. D-pinitol 투여 후 25일과 46일째의 종양덩어리를 단일세포화 시킨 뒤, anti-CD44 항체와 anti-CD24 항체를 이용하여 암줄기세포의 비율을 유세포분석기을 통해 분석하였다. 25일째의 경우 대조군 대비 doxorubicin 4 mg/kg 투여군에서 62.4% 감소하였으며 Dpinitol300, 500, 1000 mg/kg 투여군 각각에서 17.4%, 33.7%, 44.8% 감소하였고 doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 D-pinitol 300, 500, 1000 mg/kg 투여군 각각에서는 각각 70.7%, 75.6%, 79.7% 감소하는 것을 확인하였다(Fig. 3A). 또한 46일째의 경우 대조군 대비 doxorubicin 4 mg/kg 투여군에서 7.1% 증가하였으며 D-pinitol 300, 500, 1000 mg/kg 투여군 각각에서 5.2%, 17.1%, 26.1% 감소하였고 doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 D-pinitol 300, 500, 1000 mg/kg 투여군 각각에서는 각각 48.3%, 60.2%, 76.3% 감소하는 것을 확인하였다(Fig. 3B). D-pinitol은 종양 내에 암줄기세포의 비율을 감소시키는 효능이 있는 것으로 확인되었으나, 46일째 종양에서 doxorubicin 단독투여군의 종양 내 암줄기세포 비율은 vehicle control 투여군 보다 높게 측정되어 암줄기세포 억제에 영향을 주지 않는 것으로 확인 되었다. 또한, doxorubicin과 D-pinitol의 단독 투여군과 doxorubicin과 D-pinitol의 병용투여군의 암줄기세포 비율을 비교해 보았을 때 병용 투여군에서 암줄기세포의 비율은 현저히 감소하여 시너지 효과가 나타나는 것을 확인할 수 있었다.
Fig. 4.Delay of breast tumor relapse in mouse xenograft assay by D-pinitol. D-pinitol at the dose of 300 mg/kg, 500 mg/kg and 1000 mg/kg body weight was administered orally for consecutive 63 days. Doxorubicin at the dose of 4 mg/kg was injected within breast tumor four times for 15 day.
D-pinitol은 암세포주로부터 발생하는 CSCs를 비율을 감소시키고 종양 내 CSCs의 증식을 억제하였다. 이는 D-pinitol이 암의 재발을 억제할 수 있음을 시사한다. 따라서 D-pinitol에 의해 유방암 재발이 지연되는지를 확인하기 위해 MDAMB-231 세포주를 BALB/c nude mouse에 이식하고 종양재발을 분석하였다. Doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 Dpinitol 300, 500 mg/kg 투여군에서는 35일 동안은 종양재발이 관찰되지 않았으며, doxorubicin 4 mg/kg과 병용 투여한 D-pinitol 1000 mg/kg 투여군에서는 37일 동안 종양재발이 관찰되지 않았다. 또한 doxorubicin 4 mg/kg 단독 투여군에서는 30일 동안 종양재발이 나타나지 않음을 확인하였다(Fig. 4). 특히 44일째에 관찰된 doxorubicin 단독 투여군의 종양크기는 D-pinitol 1000 mg/Kg 병용 투여군에서 2주 후 관찰되었다. 따라서 D-pinitol은 암 성장 억제와 더불어 종양 내의 암 줄기세포 비율을 감소시켜 암 재발을 지연시키는 효능이 있음을 말해준다.
결 론
본 연구는 D-pinitol이 유방암 성장 억제와 재발 지연에 대한 효능이 있음을 확인하였고, 이는 암 줄기세포의 증식 억제에서 기인함을 규명하였다. 이와 같은 연구결과는 천연식물에서 추출한 안전한 물질인 D-pinitol이 항암 보조제로 사용될 수 있음을 시사한다.
References
- Narayanan, C. R., Joshi, D. D., Mudjumdar, A. M. and Dhekne, V.V. (1987) Pinitol, a new anti-diabetic compound from the leaves of Bougainvillea spectabilis. Curr. Sci. 56: 139-141.
- Larner, J. (2002) D-chiro-inositol - its functional role in insulin action and its deficit in insulin resistance. Int. J. Exp. Diabetes Res. 3: 47-60. https://doi.org/10.1080/15604280212528
- Koo, B. J., Kim, H. J. and Park, K. S. (2007) The clinical study to evaluate the safety and efficacy of D-chiro-inositol in patients with type 2 diabetes. Korean J. med. 72: 29-36.
- Witters, L. A. (2001) The blooming of the French lilac. J. Clin. Invest. 108: 1105-1107. https://doi.org/10.1172/JCI14178
- Zakikhani, M., Dowling, R., Fantus, I. G., Sonenberg, N. and Pollak, M. (2006) Metformin is an AMP kinase-Dependent growth inhibitor for breast cancer cells. Cancer Res. 66: 10269-10273. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-1500
- Euhus, D. M. (2001) Understanding mathematical models for breast cancer risk assessment and counseling. Breast J. 7: 224-232. https://doi.org/10.1046/j.1524-4741.2001.20012.x
- Park, S. K., Lim, Y. K. and Yoo, K. Y. (1998) Prediction of future breast cancer mortality in Korea. Korean J. Epidemiol. 20: 267-274.
- Park, B., Choi, K. S., Lee, Y. Y., Jun, J. K. and Seo, H. G. (2012) Cancer screening status in Korea, 2011: results from the Korean National Cancer Screening Survey. Asian Pac. J. Cancer Prev. 13: 1187-1191. https://doi.org/10.7314/APJCP.2012.13.4.1187
- Bland, K. I., Copeland, E. M. III., Breast. In: Schwartz, S. I., Shires, G. T. and Spencer, F. C. (1994) Principles of surgery, 6th ed. NewYork: McGraw-Hill 554-557.
- Jatoi, I., Tsimelzon, A., Weiss, H., Clark, G. M. and Hilsenbeck, S. G. (2005) Hazard rates of recurrence following diagnosis of primary breast cancer. Breast Cancer Res. Treat. 89: 173-178. https://doi.org/10.1007/s10549-004-1722-0
- Demicheli, R., Abbattista, A., Miceli, R., Valagussa, P. and Bonadonna, G. (1996) Time distribution of the recurrence risk for breast cancer patients undergoing mastectomy: further support about the concept of tumor dormancy. Breast Cancer Res. Treat. 41: 177-185. https://doi.org/10.1007/BF01807163
- Ahmad, A. (2012) Pathway to breast cancer recurrence. ISRN Oncol. 2013: Article ID 290568, 16.
- Lapidot, T., Sirard, C., Vormoor, J., Tsvee, L., Christian, A., Josef, V., Barbara, M., Trang, H., Julio, C. C., Mark, M., Bruce, P., Michael, A. C. and John, E. D. (1994) A cell initiating human acute myeloid leukaemia after transplantation into SCID mice. Nature 367: 645-648. https://doi.org/10.1038/367645a0
- Bonnet, D. and Dick, J. (1997) Human acute myeloid leukemia is organized as a hierarchy that originates from a primitive hematopoietic cell. Nat. Med. 3: 730-737. https://doi.org/10.1038/nm0797-730
- Al-Hajj, M., Wicha, M.S., Benito-Hernandez, A., Morrison, S.J. and Clarke, M.F. (2003) Prospective identification of tumorigenic breast cancer stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. 100: 3983-3988. https://doi.org/10.1073/pnas.0530291100
- Hemmati, H. D., Nakano, I., Lazareff, J. A., Masterman-Smith, M., Geschwind, D.H., Bronner-Fraser, M. and Kornblum, H.I. (2003) Cancerous stem cells can arise from pediatric brain tumors. Proc. Natl. Acad. Sci. 100: 15178-15183. https://doi.org/10.1073/pnas.2036535100
- Collins, A.T., Berry, P.A., Hyde, C., Stower, M.J. and Maitland, N.J. (2005) Prospective identification of tumorigenic prostate cancer stem cells. Cancer Res. 65: 10946-10951. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-05-2018
- Fang, D., Nguyen, T. K., Leishear, K., Finko, R., Kulp, A. N., Hotz, S., Van Belle, P. A., Xu, X., Elder, D. E. and Herlyn, M. (2005) A tumorigenic subpopulation with stem cell properties in melanomas. Cancer Res. 65: 9328-9337. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-05-1343
- Bapat, S. A., Mali, A. M., Koppikar, C. B. and Kurrey, N. K. (2005) Stem and progenitor like cells contribute to the aggressive behaviour of human epithelial ovarian cancer. Cancer Res. 65: 3025-3029. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-04-3931
- O'Brien, C. A., Pollett, A., Gallinger, S. and Dick, J. E. (2007) A human colon cancer cell capable of initiating tumor growth in immunodeficient mice. Nature 445: 106-110. https://doi.org/10.1038/nature05372
- Ma, S., Chan, K. W., Hu, L., Lee, T. K., Wo, J. Y., Ng, I. O., Zheng, B. J. and Guan, X. Y. (2007) Identification and characterisation of tumorigenic liver cancer stem/progenitor cells. Gastroenterology 132: 2542-2556. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2007.04.025
- Ho, M. M., Ng, A. V., Lam, S. and Hung, J. Y. (2007) Side population in human lung cancer cell lines and tumors is enriched with stem-like cancer cells. Cancer Res. 67: 4827-4833. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-3557
- Hermann, P., Huber, S., Herrler, T., Aicher, A., Ellwart, J. W., Guba, M., Bruns, C. J. and Heeschen, C. (2007) Distinct populations of cancer stem cells determine tumour growth and metastatic activity in human pancreatic cancer. Cell Stem Cell 1: 313-323. https://doi.org/10.1016/j.stem.2007.06.002
- Fukuda, K., Siakawa, Y., Ohashi, M., Kumagai, K., Kitajima, M., Okano, H., Matsuzaki, Y. and Kitagawa, Y. (2009) Tumor initiating potential of side population cells in human gastric cancer. Int. J. Oncol. 34: 1201-1207.
- Lagadec, C., Vlashi, E., Donna, L. D., Dekmezian, C. and Pajonk, F. (2012) Radiation-induced reprogramming of breast cancer cells. Stem Cells 30: 833-844. https://doi.org/10.1002/stem.1058
- Al-Hajj, M., Becker, M. W., Wicha, M., Weissman, I. and Clarke, M. F. (2004) Therapeutic implications of cancer stem cells. Curr. Opin. Genet. Dev. 14: 43-47. https://doi.org/10.1016/j.gde.2003.11.007
- Sethi, G., Ahn, K. S., Sung, B. K. and Aggarwal, B. B. (2008) Pinitol targets nuclear factor-kB activation pathway leading to inhibition of gene products associated with proliferation, apoptosis, invasion, and angiogenesis. Mol. Cancer Ther. 7: 1604-1614. https://doi.org/10.1158/1535-7163.MCT-07-2424
- Thamaraiselvan, R., Natarajan, N. and Maruthaiveeran, P. B. (2013) D-pinitol prevents rat breast carcinogenesis induced by 7, 12-dimethylbenz [a] anthracene through inhibition of bcl-2 and induction of p53, caspase-3 proteins and modulation of hepatic biotransformation enzymes and antioxidants. Biomed. Prev. Nutr. 3: 31-41. https://doi.org/10.1016/j.bionut.2012.07.001
- Ta, H. Q., Thomas, K. S., Schrecengost, R. S. and Bouton, A. H. (2008) A novel association between p130Cas and resistance to the chemotherapeutic drug adriamycin in human breast cancer cells. Cancer Res. 68: 8796-8804. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-08-2426