We have cloned a novel mouse zinc finger protein gene Znf313 by rapid amplification of cDNA ends (RACE) according to the homologue of human ZNF313 gene. The cDNA is 2,163 base pairs (bp) in length and encodes a 229 amino acids (aa) protein with a $C_3HC_4$ ring finger domain and three $C_2H_2$ domains. 89% and 93% nucleotide (nt) and aa sequence identity is observed with its human homologue. Revealed by Northern blot and RT-PCR, full mRNA consists of 2.16 kb and widely expresses in tissues as a single transcript, most abundantly in heart, liver, kidney and testis. The expression of Znf313 in testis is detected in all development stages. Western blot analysis also reveals that Znf313 is expressed in the tissues. Immunohistochemical staining and subcellular localization demonstrate that Znf313 is expressed both in the cytoplasm and nucleus whereas predominantly localized in the nucleus. Present data suggests that Znf313 gene might play a fundamental role in gene transcription and regulation in organism and relates to spermatogenesis.
Thioltransferase, also known as glutaredoxin, is an enzyme that catalyzes the reduction of a variety of disulfide compounds. In Schizosaccharomyces pombe, two thioltransferases were reported and the cDNA of one of the thioltransferases (thioltransferase-1) was cloned. Using a Northern blot assay, we investigated the thioltransferase transcription in response to various stress conditions. When the culture was shifted to a high temperature, the thioltransferases transcription was not significantly changed compared to the unshifted $30^{\circ}C$ culture. Treatment of zinc chloride to exponentially-growing cells remarkably increased the thioltransferase transcription, whereas the treatment of mercury chloride greatly reduced the transcription. Treatment of hydrogen peroxide and cadmium chloride caused no significant effects on the transcription of the thioltransferase. These results suggest that the transcription of thioltransferase-1 in S. pombe is induced in response to metal stress that is caused by zinc chloride, but not in response to heat stress or oxidative stress that is caused by hydrogen peroxide.
In this study, we investigated the effect of cadmium on genes expression related to zinc homeostasis in HT22 hippocampal neuron cell line by RT -PCR and western blotting technics. In the time-course effect, cadmium up-regulated the relative levels of MT -I and MT -II to~b-actin at 4 hr after treatment. These effects were consistent with MT -I/II protein contents by western blot analysis. But MT -III, a specific MT isoform in brain, was not affected by cadmium. (omitted)
A tomato zinc-finger protein gene, LeZFP1, encoding the Cys2/His2-type zinc-finger transcription factor was searched from cDNA microarray analysis of gene expression following induction of the overexpressed tomato transgenic plants showing resistance for pathogen and abiotic stresses. The full-length cDNA of LeZFP1 encoded a protein of 261 amino acid residues. Analysis of the deduced amino acid sequence of LeZFP1 revealed that it shares high sequence identity with pepper CAZFP1 (81% identity). We found that single copy of LeZFP1 gene is present in the tomato genome through southern blot analysis. The LeZFP1 transcripts were constitutively expressed in the tomato mature and young leaves, but were detectable weakly in the flower, stem and root. The LeZFP1 transcripts were significantly reduced in treated leaf tissues with NaCl and mannitol. The LeZFP1 gene was induced by oxidative stress especially. Our results indicated that LeZFP1 may play a role function involved in oxidative stress signaling pathways.
Purpose: The vascular smooth muscle cells (VSMCs) in mature animals have implicated to play a major role in the progression of cardiovascular diseases such as atherosclerosis. This study aimed at optimizing the protocol in culturing primary VSMCs (pVSMCs) from rat thoracic aorta and investigating the effect of cellular zinc (Zn) deficiency on cell proliferation of the isolated pVSMCs. Methods: The thoracic aorta from 7-month-old Sprague Dawley rats was isolated, minced and digested by the enzymatic process of collagenase I and elastase, and then inoculated with the culture Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) at 37℃ in an incubator. The primary cell culture morphology was observed using phase-contrast microscopy and cellular Zn was depleted using Chelex-100 resin (extracellular zinc depletion only) or 3 µM N,N,N',N'-tetrakis(2-pyridinylmethyl)-1,2-ethanediamine (TPEN) (extracellular and intracellular zinc depletion). Western blot analysis was used for the detection of SM22α and calponin as smooth muscle cell marker proteins and von Willebrand factor as endothelial cell marker protein to detect the culture purity. Cell proliferation by Zn depletion (1 day) was measured by MTT assay. Results: A primary culture protocol for pVSMCs from rat thoracic aorta was developed and optimized. Isolated cultures exhibited hill and valley morphology as the major characteristics of pVSMCs and expressed the smooth muscle cell protein markers, SM22α and calponin, while the endothelial marker von Willebrand factor was hardly detected. Zn deprivation for 1 day culture decreased rat primary vascular smooth muscle cell proliferation and this pattern was more prominent under severe Zn depletion (3 µM TPEN), while less prominent under mild Zn depletion (Chelexing). Conclusion: Our results suggest that cellular Zn deprivation decreased pVSMC proliferation and this may be involved in phenotypic modulation of pVSMC in the aorta.
We have previously isolated a CCCH type zinc-finger protein gene, OsZF2 (Oryza sativa Zinc Finger 2), from the cold-treated rice cDNA library. To investigate the potential role of OsZF2, transgenic rice lines over-expressing OsZF2 under the control of CaMV 35S promoter have been developed through Agrobacterium-mediated transformation. Elevated level of OsZF2 transcripts was confirmed by RNA gel blot analysis in transgenic rice. Under the 100 mM NaCl condition, the transgenic rice showed significantly enhanced growth rate in terms of shoot length and fresh weight, implicating that OsZF2 is likely to be involved in salt response of rice. In the field condition, however, the transgenic rice showed a dwarf phenotype and flowering time was delayed. Genome expression profiling analysis of transgenic plants using the 20K NSF rice oligonucleotide array revealed many up-regulated genes related to stress responses and signaling pathways such as chaperone protein dnaJ 72, salt stress-induced protein, PR protein, disease resistance proteins RPM1 and Cf2/Cf5 disease resistance protein, carbohydrate/ sugar transporter, OsWAK kinase, brassinosteroid LRR receptor kinase, and jasmonate O-methyltransferase. These data suggest that the CCCH type zinc-finger protein OsZF2 is a upstream transcriptional factor regulating growth and stress responsiveness of rice.
The nsdD gene has been predicted to encode a GATA type transcription factor with the type IVb zinc finger DNA binding domain functions in activating sexual development of A. nidulans. In several allelic mutants of nsdD producing truncated NsdD polypeptides lacking the C-terminal zinc finger, the transcription level of nsdD gene was greatly increased. Also in an over-expressed mutant, the transcription under its own promoter was reduced. These results suggest that the expression of nsdD is negatively autoregulated. When the nsdD gene was over-expressed, cleistothecia were formed in excess amounts even in the presence of 0.6 M KC1 that inhibited sexual development of the wild type. Northern blot analysis revealed that the expression of nsdD was repressed by 0.6 M KC1. These results strongly suggest that the inhibition of sexual development by salts was carried out via the nsdD involved regulatory network.
Macrophages play a key role in iron metabolism by recycling iron through erythrophagocytosis. Ferroportin-l (FPN1) is a transporter protein that is known to mediate iron export from macrophages. Since divalent metals often interact with iron metabolism, we examined if divalent metals could regulate the expression of FPN1 in macrophages. J774 macrophage cells were treated with copper, manganese, zinc, or cobalt at 10, 50, or $100\;{\mu}M$ for 16 to 24 h. Then, FPN1 mRNA and protein levels were determined by quantitative real-time PCR and Western blot analyses, respectively. In addition, effects of divalent metals on FPN1 promoter activity were examined by luciferase reporter assays. Results showed that copper significantly increased FPN1 mRNA levels in a dose-dependent manner. The copper-induced expression of FPN1 mRNA was associated with a corresponding increase in FPN1 protein levels. Also, copper directly stimulated the activity of FPN1 promoter-driven reporter construct. In contrast, manganese and zinc had no effect on the FPN1 gene expression in J774 cells. Interestingly, cobalt treatment in J774 cells decreased FPN1 protein levels without affecting FPN1 mRNA levels. In conclusion, our study results demonstrate that divalent metals differentially regulate FPN1 expression in macrophages and indicate a potential interaction of divalent metals with the FPN1-mediated iron export in macrophages.
The light perception and phototransformation of phytochromes are the first process of the phytochrome-mediated light signal transduction. The chromophore ligation and its photochromism of various site-specific and deletion mutants of pea phytochrome A and bacterial phytochrome-like protein (Cph1) were analyzed in vitro. Serial truncation mutants from the N-terminus and C-terminus indicated that the minimal N-terminal domain for the chromophore ligation spans from the residue 78 to 399 of pea phytochrome A. Site-specific mutants indicated that several residues are critical for the chromophore ligation and/or photochromism. Histidine-324 appears to serve as an anchimeric residue for photochromism through its H-bonding function. Isoleucine-80 and arginine-383 playa critical role for the chromophore ligation and photochromism. Arginine-383 is presumably involved in the stabilization of the Pfr form of pea phytochrome A. Apparently, the amphiphilic ${\alpha}$-helix centered around the residue-391 is in the chromophore pocket and critical for the chromophore ligation.
Carbonic anhydrase isozymes (CAs) are widespread zinc-containing metalloenzyme family. The enzyme catalyzes the reversible interconversion of $CO_2$ and $HCO_3$. This reaction is the main role of CA enzymes in physiological conditions. CA III, one of the CA isozymes, has been identified in many tissues. It is distinguished from the other isozymes by several characteristics, particularly by a lower specific activity and by its resistance to acetazolamide. However, the physiological function of CA III in fish is unknown. In this study, we examined the detection of CAs in the Shaggy sea raven Hemitripterus villosus, using SDS-PAGE, isoelectric focusing (IEF), and western blot analysis. We detected a significant protein band with molecular weight about 30 kDa from the tissues of H. villosus by SDS-PAGE and western blotting. A specific band of CA III with pI 7.0 was detected by IEF and western blotting in gill and muscle. The immunoreaction of anti-CA III expressed in the gill of H. villosus was much stronger than other tissues. One explanation for this result is that the fish gill is the only organ that is exposed to the external environment and that plays an important role in acid-base relevant ion transfer, the transfer of $H^+$ and/or $HCO{_3}^-$, for the maintenance of systemic pH. This is the first report on the identification of a carbonic anhydrase III-like protein from H. villosus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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