Heat-resistant microbial hosts are required for bioprocess development using high cell density cultivations at the industrial scale. We report that the thermotolerance of Escherichia coli can be enhanced by overexpressing ybeD, which was known to encode a hypothetical protein of unknown function. In the wild-type E. coli BL21(DE3), ybeD transcription level increased over five-fold when temperature was increased from $37^{\circ}C$ to either $42^{\circ}C$ or $46^{\circ}C$. To study the function of ybeD, a deletion strain and an overexpression strain were constructed. At $46^{\circ}C$, in comparison to the wild type, the ybeD-deletion reduced cell growth half-fold, and the ybeD-overexpression promoted cell growth over two-fold. The growth enhancement by ybeD-overexpression was much more pronounced at $46^{\circ}C$ than $37^{\circ}C$. The ybeD-overexpression was also effective in other E. coli strains of MG1655, W3110, DH10B, and BW25113. These findings reveal that ybeD gene plays an important role in enduring high-temperature stress, and that ybeD-overexpression can be a prospective strategy to develop thermotolerant microbial hosts.
Di Wang;Dongjie Chen;Shengkui Xu;Fang Wei;Hongyuan Zhao
Journal of Veterinary Science
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v.25
no.4
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pp.54.1-54.16
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2024
Importance: As one of the main etiologic agents of infectious diseases in pigs, pseudorabies virus (PRV) infections have caused enormous economic losses worldwide. EP0, one of the PRV early proteins (EP) plays a vital role in PRV infections, but the mechanisms are unclear. Objective: This study examined the function of EP0 to provide a direction for its in-depth analysis. Methods: In this study, the EP0-deleted PRV mutant was obtained, and Tandem Mass Tag-based proteomic analysis was used to screen the differentially expressed proteins (DEPs) quantitatively in EP0-deleted PRV- or wild-type PRV-infected porcine kidney 15 cells. Results: This study identified 7,391 DEPs, including 120 and 21 up-regulated and down-regulated DEPs, respectively. Western blot analysis confirmed the changes in the expression of the selected proteins, such as speckled protein 100. Comprehensive analysis revealed 141 DEPs involved in various biological processes and molecular functions, such as transcription regulator activity, biological regulation, and localization. Conclusions and Relevance: These results holistically outlined the functions of EP0 during a PRV infection and might provide a direction for more detailed function studies of EP0 and the stimulation of lytic PRV infections.
To construct a new recombinant strain of Bacillus velezensis that has antifungal and insecticidal activity via the expression of the insecticidal Bacillus thuringiensis crystal protein, a B. thuringiensis expression vector (pHT1K-1Ac) was generated that contained the B. thuringiensis cry1Ac gene under the control of its endogenous promoter in a minimal E. coli-B. thuringiensis shuttle vector (pHT1K). This vector was introduced into a B. velezensis isolate that showed high antifungal activities against several plant diseases, including rice blast (Magnaporthe grisea), rice sheath blight (Rhizotonia solani), tomato gray mold (Botrytis cinerea), tomato late blight (Phytophthora infestans), and wheat leaf rust (Puccinia recondita), by electroporation. The recombinant B. velezensis strain was confirmed by PCR using cry1Ac-specific primers. Additionally, the recombinant strain produced a protein approximately 130 kDa in size and parasporal inclusion bodies similar to B. thuringiensis. The in vivo antifungal activity assay demonstrated that the activity of the recombinant B. velezensis strain was maintained at the same level as that of wild-type B. velezensis. Furthermore, it exhibited high insecticidal activity against a lepidopteran pest, Plutella xylostella, although its activity was lower than that of a recombinant B. thuringiensis strain, whereas wild-type B. velezensis strain did not show any insecticidal activity. These results suggest that this recombinant B. velezensis strain can be used to control harmful insect pests and fungal diseases simultaneously in one crop.
Poria cocos is an importantant medical macrofungus,the sclerotium of Poria cocos has specific value as the drug material. There are few papers about its breeding and spawn rejuvenation. In this project, the protoplasts of cultivated strain T and wild strain L were prepared and treated separately by ultraviolet and heating, then fused with the PEG6000. The tural fusants were selected and identified by the affinity and ISSR analysis. 71 incompatibility strains between parents and reg regenerations were obtained from 118 regenerations by the affinity analysis. Five incompatibility strains were amplified with different primers, the results were showed that they had specific bands of both parents in the profile amplified with 3 primers, which proved these 5 strains were fusants by means of molecular biology marker. On the other hand, 25 strain were selected from 168 protoplast regenerations of cultivated strain T for cultivation experiment. The fresh sclerotium weight of these protoplast regenerations were better than the original strain.significantil 3 strains (T-1, T-4, T-7) increased respectively 118%, 73% and 73% than original strain. This method could be the effective in the rejuvenation Poria cocos.
In 2019, as a subset study to discover indigenous yeast species in Korea, a total of 20 yeast species were isolated from soil samples collected in Pochoen-si. Among them, eight strains were unreported species. From the high 26S rRNA gene sequence similarity and formation of a robust phylogenetic clade with the closest species, it was determined that each strain belonged to independent and predefined yeast species. The 20 strains were assigned to the genera Aureobasidium (1 strain) and Meyerozyma (1 strain) of the phylum Ascomycota and Cystofilobasidium (2 strains), Filobasidium (1 strain), Naganishia (2 strains), Bullera (3 strains), Leucosporidium (9 strains) and Sampaiozyma (1 strain) of the phylum Basidiomycota. There is no official report of the following species in Korea: Leucosporidium creatinivorum (4 strains), Leucosporidium escuderoi(2 strains), Leucosporidium golubevii(1 strain) and Leucosporidium intermedium (2 strains). Basic biochemical characteristics, colony and cell morphology are also described in the species description section.
The goal of this study was to investigate the microbiological characteristics of the ethanol-producing wild yeast, Aureobasidium pullulans P-1, isolated from flowers growing near the Yedang reservoir, Chungnam province, Korea, and in addition, to optimize its fermentation ability for the production of Makgeolli. A. pullulans P-1 was oval-shaped, and formed ascospores and pseudomycelium. The P-1 strain was a halophilic and sugar tolerant yeast which grew in 15% NaCl and 50% glucose-containing yeast extract-peptone-dextrose media. The P-1 strain was also resistant to 20% ethanol. Changes of the physicochemical properties during Makgeolli fermentation by A. pullulans P-1 were investigated. A maximum of 8.45% ethanol was obtained when a mixture of cooked rice, 150% water, and 35% ipguk per cooked rice was fermented by 5% A. pullulans P-1 culture broth at $25^{\circ}C$ for 10 days. Antihypertensive angiotensin I-converting enzyme inhibitory activity in the Makgeolli ferment produced by A. pullulans P-1 reached a high of 71.1% after 10 days.
Ryu Choong-Min;Murphy John F.;Reddy M.S.;Kloepper Joseph W.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.2
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pp.280-286
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2007
We evaluated a commercial biopreparation of plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) strains Bacillus subtilis GB03 and B. amyloliquefaciens IN937a formulated with the carrier chitosan (Bio Yield) for its capacity to elicit growth promotion and induced systemic resistance against infection by Cucumber Mosaic Virus (CMV) and Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in Arabidopsis thaliana. The biopreparation promoted plant growth of Arabidopsis hormonal mutants, which included auxin, gibberellic acid, ethylene, jasmonate, salicylic acid, and brassinosteroid insensitive lines as well as each wild-type. The biopreparation protected plants against CMV based on disease severity in wild-type plants. However, virus titre was not lower in control plants and those treated with biopreparation, suggesting that the biopreparation induced tolerance rather than resistance against CMV. Interestingly, the biopreparation induced resistance against CMV in NahG plants, as evidenced by both reduced disease severity and virus titer. The biopreparation also elicited induced resistance against P. syringae pv. tomato in the wild-type but not in NahG transgenic plants, which degrade endogenous salicylic acid, indicating the involvement of salicylic acid signaling. Our results indicate that some PGPR strains can elicit plant growth promotion by mechanisms that are different from known hormonal signaling pathways. In addition, the mechanism for elicitation of induced resistance by PGPR may be pathogen-dependent. Collectively, the two-Bacilli strain mixture can be utilized as a biological inoculant for both protection of plant against bacterial and viral pathogens and enhancement of plant growth.
The RNAI mutation of Saccharomyces cerevisia is a recessive and temperature sensitive lethal mutation which interferes with the production of mRNA, rRNA, and tRNA. However, the precise role of RNAI gene have not been revealed until yet. We have cloned rna1-1 mutant gene from rna1-1 mutant yeast strain(R49 ; trpl, ura3-52, rna1-1). The 3.4kb BglII fragment of wild type RNAI clone(81-2-6) contains whole RNAI gene. The genomic southern blotting with BglII digested R49 genomic DNA as a probe shows the unique and identical band with wild type 3.4kb BglII fragment. Therefore, We prepared partial BglII genomic library(3~4kb BglII fragments) into BamH I site of pUC19. The rna 1-1 mutant clone was screened with Digoxigenin(DIG)-lableled probe by high density colony hybridization. The 5'-flanking region of rna1-1 gene was sequenced by dideoxy chain termination method. The 5'-flanking sequence of RNAI gene contains three TATA-like sequence ; TAATA, TATA and TTTTAA at position of -67, -45, and -36 from first ATG codon respectively. The 5'-flanking region of wild type RNA I gene from ATG codon to -103nt was deleted with Bal31 exonuclease digestion, generating $pUC{\Delta}$/RNA I. After constructing $pYEP{\Delta}RNA$ I (consists of -103nt deleting RNA I gene, URA3 gene, $2{\mu}m$ rep. origin), pYEPrna1-1(consists of Xba I fragment of pUCrna1-1. URA3 gene, $2{\mu}m$ rep. origin), and pYEPRNAI. each plasmid was transformed into host strain(trpl, ura3-52, rna1-1) by electroporation, respectively. Yeast transformant carrying $pYEP{\Delta}RNA$ I did not complement the thermal sensitivity of rna1-1 gene. It means that TATA-like sequences in 5'-flanking region is not TATA sequence for transcribing RNAI gene and there may be other essential sequence in upstream region for the transcription of RNAI gene.
In this study, the carbon monoxide (CO)-fermenting acetogen, Clostridium sp. AWRP was subjected to chemical mutagenesis with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) to generate a CO-resistant mutant. Among the 26 colonies obtained, the highest alcohol production was observed in one isolate, named C1. Compared to the wild-type strain, the C1 strain exhibited 1.5- and 3.4-fold higher CO consumption rate and alcohol selectivity, respectively. The total CO consumption of strain C1 could be further enhanced by increasing the content of metal ions, such as nickel and iron. The highest ethanol titer (5.7 g/l) was achieved by 5-fold increase in the iron concentration.
A marine bacterium Bacillus cereus ASK202, agarase producing strain, was treated with some mutagenic agents, ultraviolte(UV), 1-methyl-3-nitro-1-nitrosoguanidine(NTG), and ethyl methane sulfonate(EMS), several times for the increasing of the agarase production After mutagen treatment, we isolated one mutant strain treated with NTG showed the highest stability and agarase productivity and named as Bacillus cereus ASK202-N3. This Bacillus cereus ASK202-N3 strain was well grown in the modified marine medium containing 0.5%(w/v) agar, 0.3%(w/v) yeast extract, and 5.0%(w/v) NaCl, and the optimal initial pH, temperature and culture time were 7.8, $25^{\circ}C$ and 32h, respectively. In the optimal culture conditions, the agarase production was increased to 5.3 fold(850units/L) compared to that of the wild type.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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