The observation of calcium salts in dentinogenesis was performed with Von Kossa-toluidine blue method and metachromasia were observed on the portion of border that is beginning the calcification in dentin and predentin, which is positive Von Kossa reaction.
The intact dental pulps which were free of their tooth bud from adult rat incisors, and oral mucosa were transplanted subcutaneously in homologous rats to study the formation of calcified tissue. The rat were sacrificed after 1,2,3 and 4 weeks following transplantation of dental pulp and oral mucosa. The samples which contained the transplanted and surrounding tissue were fixed in 10% NBF, stained with hematoxylin and eosin, alizarin red S, von Kossa, and alcian blue. Microscopic examinstins revealed as follows: 1. The transplanted oral mucosas were not calcified but tended to form the epithelial cysts. 2. At 1 week after transplantation of dental pulp the calcified structures were appeared at the periphery of the transplantation of dental pulp but weakly reacted to alizarin red S, von Kossa, and alcian blue. 3. At 2 weeks after transplantation of dental pulp the calcified structures began to expand from the periphery to the center of the transplanted dental pulp and occupied the large areas comparatively, and strongly reacted to alizarin red S, and von Kossa stains. 4. At 3 weeks after transplantation of pulp tissue the fibrous components were grown at the periphery of the transplanted pulp tissuesand at 4 weeks a large amount of fibrous tissues were observed. The transplanted pulp tissue tended to form foreign bodies gradually.
Park, Jung Hoe;Kwon, Ki-Tak;Park, Byung Keon;Lee, Young-Hoon
International Journal of Oral Biology
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제40권1호
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pp.1-9
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2015
Osteocalcin (OC) is the most abundant noncollagenous protein of extracellular matrix in the bone. In an OC deficient mouse, bone formation rates are increased in cancellous and cortical bones. OC is known as a negative regulator of mineral apposition. OC is also expressed in the tooth of the rat, bovine, and human. However, little is known about OC during tooth development in Xenopus. The purpose of this study is to compare the expression of OC with mineralization in the developing tooth of Xenopus, by using von Kossa staining and in situ hybridization. At stage 56, the developmental stage of tooth germ corresponds to the cap stage, and an acellular zone was apparent between the dental papilla and the enamel organ. From stage 57, calcium deposition was revealed by von Kossa staining prior to OC expression, and the differentiated odontoblasts forming predentin were located at adjoining predentin. At stage 58, OC transcripts were detected in the differentiated odontoblasts. At stage 66, OC mRNA was expressed in the odontoblasts, which was aligned in a single layer at the periphery of the pulp. These findings suggest that OC may play a role in mineralization and odontogenesis of tooth development in Xenopus.
Background: Kalkitoxin (KT) is an active lipopeptide isolated from the cyanobacterium Lyngbya majuscula found in the bed of the coral reef. Although KT suppresses cell division and inflammation, KT's mechanism of action in vascular smooth muscle cells (VSMCs) is unidentified. Therefore, our main aim was to investigate the impact of KT on vascular calcification for the treatment of cardiovascular disease. Objectives: Using diverse calcification media, we studied the effect of KT on VSMC calcification and the underlying mechanism of this effect. Methods: VSMC was isolated from the 6 weeks ICR mice. Then VSMCs were treated with different concentrations of KT to check the cell viability. Alizarin red and von Kossa staining were carried out to examine the calcium deposition on VSMC. Thoracic aorta of 6 weeks mice were taken and treated with different concentrations of KT, and H and E staining was performed. Real-time polymerase chain reaction and western blot were performed to examine KT's effect on VSMC mineralization. Calcium deposition on VSMC was examined with a calcium deposition quantification kit. Results: Calcium deposition, Alizarin red, and von Kossa staining revealed that KT reduced inorganic phosphate-induced calcification phenotypes. KT also reduced Ca++-induced calcification by inhibiting genes that regulate osteoblast differentiation, such as runtrelated transcription factor 2 (RUNX-2), SMAD family member 4, osterix, collagen 1α, and osteopontin. Also, KT repressed Ca2+-induced bone morphogenetic protein 2, RUNX-2, collagen 1α, osteoprotegerin, and smooth muscle actin protein expression. Likewise, Alizarin red and von Kossa staining showed that KT markedly decreased the calcification of ex vivo ring formation in the mouse thoracic aorta. Conclusions: This experiment demonstrated that KT decreases vascular calcification and may be developed as a new therapeutic treatment for vascular calcification and arteriosclerosis.
생체적합성 천연재료 중 하나인 탈미네랄화된 골분 (demineralized bone particle, DBP)은 골형성단백질 (BMP)을 함유하고 있어 골수간엽줄기세포 (BMSCs)의 분화를 유도한다. 본 연구에서는 DBP를 함유한 폴리 락타이드 (PLA)와 락타이드-글리콜라이드 공중합체 (PLGA) 다공성 지지체를 용매 캐스팅/염추출법으로 제조하였고, 수은다공측정계 및 전자주사현미경을 이용하여 특성결정 하였다. BMSCs는 골분화 배지를 이용하여 조골세포로 분화시켜 Wright-Giemsa, Alizarin red, von Kossa 및 ALP 염색으로 확인하였다. DBP가 함유된 지지체와 DBP가 함유되지 않은 지지체에 BMSCs를 파종한 후 면역결핍 누드마우스의 피하에 삽입하여 이들의 골형성 정도를 비교하여 보았다. 제조한 지지체의 다공도는 $90.2\%$ 이상이었고 평균 다공크기도 69.1$\mu$m 이상이었다. BMSCs는 Wright-Giemsa, Alizarin red, von Kossa 및 ALP 염색결과 조골세포로 분화가 가능했으며, 동물실험을 수행한 결과 DBP가 함유된 지지체에서 칼슘침착 영역을 확인할 수 있었지만 DBP가 함유되지 않은 지지체에서는 칼슘침착 영역을 확인하지 못하였다. 결론적으로 DBP를 함유한 지지체에서 DBP와 BMSCs가 골형성에 중요한 요인으로 작용한다고 사료된다.
The demonstration of glycoprotein in developing mandibular bone was observed histochemically, using Clara method and Von Kossa method. The glycoprotein reaction showed slight activity in New bilding bone matrix.
Objectives: New resin cement (NRC) has been developed as a root repairing material and the material is composed of organic resin matrix and inorganic powders. The aim of this study was to compare the rat subcutaneous tissue response to NRC and mineral trioxide aggregate (MTA) cement and to investigate the tissue toxicity of both materials. Materials and Methods: Sixty rats received two polyethylene tube-implants in dorsal subcutaneous regions, MTA and NRC specimens. Twenty rats were sacrificed respectively at 1, 4 and 8 wk after implantation and sectioned to 5 ${\mu}m$ thickness and stained with Hematoxylin-Eosin (H-E) or von-Kossa staining. The condition of tissue adjacent to the implanted materials and the extent of inflammation to each implant were evaluated by two examiners who were unaware of the type of implanted materials in the tissues. Data were statistically analyzed with paired t-test (p < 0.05). Results: In specimens implanted with both NRC and MTA, severe inflammatory reactions were present at one wk, which decreased with time. At eighth wk, MTA implanted tissue showed mild inflammatory reaction, while there were moderate inflammatory reactions in NRC implanted tissue, respectively. In NRC group, von-Kossa staining showed more calcification materials than MTA group at eighth wk. Conclusions: It was concluded that the calcium reservoir capability of NRC may contribute to mineralization of the tissues.
Stem cells have self-renewal capacity, long-term viability, and multiline age potential. Adult bone marrow contains mesenchymal stem cells. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSCs) are progenitors of skeletal tissue components and can differentiate into adipocytes, chondrocytes, osteoblasts, and myoblasts in vitro and undergo differentiation in vivo. However, the clinical use of BMSCs has presented problems, including pain, morbidity, and low cell number upon harvest. Recent studies have identified a putative stem cell population within the adipose tissue. Human adipose tissue contains pluripotent stem cells simillar to bone marrow-derived stem cells that can differentiate toward the osteogenic, adipogenic, myogenic, and chondrogenic lineages. Human adipose tissue-derived stem cells (ATSCs) could be proposed as an alternative source of adult bone marrow stem cells, and could be obtained in large quantities, under local anesthesia, with minimal discomfort. Human adipose tissue obtained by liposuction was processed to obtain ATSCs. In this study, we compared the osteogenic differentiation of ATSCs in a specific osteogenic induction medium with that in a non-osteogenic medium. ATSCs were incubated in an osteogenic medium for 28 days to induce osteogenesis respectively. Osteogenic differentiation was assessed by von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific bone sialoprotein, osteocalcin, collagen type I and alkaline phosphatase, bone morphogenic protein 2, bone morphogenic protein 6 was confirmed by RT-PCR. ATSCs incubated in the osteogenic medium were stained positively for von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific genes was also detected. Since this cell population can be easily identified through fluorescence microscopy, it may be an ideal source of ATSCs for further experiments on stem cell biology and tissue engineering. The present results show that ADSCs have an ability to differentiate into osteoblasts. In the present study, we extend this approach to characterize adipose tissue-derived stem cells.
The synovial tissues are a valuable MSCs source for cartilage tissue engineering because these cells are easily obtainable by the intra-articular biopsy during diagnosis. In this study, we isolated and characterized the canine MSCs derived from synovial fluid of female and male donors. Synovial fluid was flushed with saline solution from pre and post-puberty male (cM1-sMSC and cM2-sMSC) and female (cF1-sMSC and cF2-sMSC) dogs, and cells were isolated and cultured in advanced-DMEM (A-DMEM) supplemented with 10% FBS in a humidified 5% $CO_2$ atmosphere at $38.5^{\circ}C$. The cells were evaluated for the expression of the early transcriptional factors, such as Oct3/4, Nanog and Sox2 by RT-PCR. The cells were induced under conditions conductive for adipogenic, osteogenic, and chondrogenic lineages, then evaluated by specific staining (Oil red O, von Kossa, and Alcian Blue staining, respectively) and analyzed for lineage specific markers by RT-PCR. All cell types were positive for alkaline phosphatase (AP) activity and early transcriptional factors (Oct3/4 and Sox2) were also positively detected. However, Nanog were not positively detected in all cells. Further, these MSCs were observed to differentiate into mesenchymal lineages, such as adipocytes (Oil red O staining), osteocytes (von Kossa staining), and chondrocytes (Alcian Blue staining) by cell specific staining. Lineage-specific genes (osteocyte; osteonectin and Runx2, adipocytes; PRAR-${\gamma}2$, FABP and LEP, and chondrocytes; collagen type-2 and Sox9) were also detected in all cells. In this study, we successfully established synovial fluid derived mesenchymal stem cells from female and male dogs, and determined their basic biological properties and differentiation ability. These results suggested that synovial fluid is a valuable stem cell source for cartilage regeneration therapy, and it is easily accessible from osteoarthritic knee.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제28권2호
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pp.114-125
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2002
This study was designed to evaluate the influence of fibroblasts or connective tissue from mouse oral mucosa on differentiation of neonatal mouse calvaria-derived osteoblasts and mineralization of bone nodules. Primary cell cultures from mouse calvarial osteoblasts and 2-4 passaged fibroblasts from oral mucosa were co-cultured in monolayer cultures, devided into 6 experimental group according to cell density or cell confluency. Osteoblasts were also co-cultured with fibroblasts in $Transwell^{(R)}$ culture plate with different co-cultured period according to osteoblast differentiation. The alkaline phosphatase activity were measured in monolayer cultures and cultures using $Transwell^{(R)}$. The mineralized bone nodules were presented by Von Kossa staining and density of mineralized nodules was measured by image analysis. The connective tissues with or without osteoblast seeding were cultured and examined histologically by Von Kossa and Trichrome Goldner staining. The results were as follows; 1. Prolonged maturation of matrix and delayed mineralization of bone nodules were resulted in monolayer cultures. 2. Co-culture of fibroblast with osteoblast using $Transwell^{(R)}$ during osteoblast proliferation stage stimulated proliferation of osteoblasts and increased alkaline phosphatase activity and mineralization of bone nodules. 3. Co-culture of fibroblast with osteoblast using $Transwell^{(R)}$ during matrix mineralization stage decreased and delayed mineralization of bone nodules. 4. In vitro cultured connective tissue with osteoblast seeding resulted in proliferation of osteoblasts and matrix formation with mineralization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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