본 연구는 소형견의 불임 해결을 위해 미숙난자를 보존 후 이용할 수 있는지의 여부를 판명하기 위하여 미성숙 난포란을 시간별로 배양한 뒤 vitrification 동결 융해후 체외수정율과 생존율을 조사하였다. 1 미숙난포란을 회수 후 1, 6, 12, 24시간 성숙 배양 후vitrification동결 융해 후 체외수정 시켰을때 수정율은 각각 31.4%. 22.5%, 11.9% 및 5.3%로서 대조군의 수정율 60.0%에 비해 낮은 성적이었고, 회수 후 시간이 경과되지 않은 난포란이 높은 체외수정율을 나타냈다. 2. 미숙난포란을 회수 후 1, 6, 12 및 24시간 배양시킨 난포란을 vitrification 동결 융해 후 체외 수정시킨 배의 생존율은 각각 55.0%, 40.0%, 28.6% 및 17.1%로써 대조군의 76.7%에 비해 낮은 생존율을 나타냈다.
This study was conducted to investigate the effect of vitrification solution(VS) on in vitro developmental competence of immature porcine oocytes. The immature porcine oocytes were exposed to the following vitrification solution, at RT. 1) EFS sol. : 20% ethylene glycol (EG) 3 min, 40% EG + 18%(w/v) Ficoll(MV70, 000) + 0.3 M sucrose 30 sec, 2) GE sol. : 10% glycerol 5 min, 10% G + 20% EG 5 min, 25% G +25% EG 30 sec, 3) EG sol : 1.5M EG 2.5 min, 5.5 M EG + 1.0 M sucrose 30 sec. Oocytes were immediately transferred into 1.0 M, 0.5 M, 0.25 M, 0125 M, 0 M sucrose solution for 2.5 min each at RT. After removal of VS, immature oocytes were matured in vitro and subsequently all oocytes were subjected to IVF followed in vitro culture for 7 days. Maturation rates of oocytes were 38.8%, 44.5%, 22.4% and 57.6%, in EFS, EG, GE and Control, respectively, maturation rates of oocytes in EG and Control was significantly higher than EFS and GE(P<0.01). Fertilization rates of oocytes in Control was significantly higher than other treated groups(P<0.05), but no difference were observed among treated groups. Polyspermic rates were no significant difference among four groups. Cleavage rates of oocytes were 21.9%, 47.1%, 19.0% and 65.9%, in EFS, EG, GE and Control, respectively, cleavage rates of oocytes in EG and Control was significantly higher than EFS and GE(P<0.05), but blastocyst formation rates were no significant difference among four groups. These results suggested that the use of EG solution could be a great challenge for reaching a successful vitrification of immature porcine oocytes.
Successful cryopreservation of mammalian oocytes would provide a source of materials for in vitro embryo production. This study was conducted to determine vitrification conditions for bovine immature oocytes using micro-drop method and, to examine maturation, fertilization and development of vitrified bovine immature oocytes. (omitted)
The present study was performed to investigate the survival and subsequent embryonic developmental rate of immature and mature oocytes after vitrification and pronuclear stage embryos after slow-freezing and vitrification. We have also tried to examine the dependency of concentrations (7.5, 15%) and exposure time (5, 10, 20 min) of ED cryoprotectant on developmental rate of pronuclear stage embryos. The developmental rates of 2-ce1l and blastocyst embryos at mature oocytes were significantly (p<0.05) higher than immature oocytes. After slow freezing, vitrification and thawing of pronuclear stage embryo, the survival and developmental rates of blastocysts and hatched blastocysts were significantly (p<0.05) higher after vitrification than after slow-freezing. On contrary, the developmental rates of 2-cell embryos were significantly (p<0.05) higher after slow freezing than after vitrification. The cryopreservation methods of pronuclear stage embryos vitrified by exposed to 7.5% ED solution for 5 minutes was significantly (p<0.05) higher than other experimental group. The results of our study suggest 1hat the developmental rates of mature oocytes have been more successful than immature oocytes during vitrification. Vitrification was more efficient than slow freezing in case of pronuclear stage embryos. The effective cryopreservation method of pronuclear stage embryos was vitrified by exposed to 7.5% ED solution for 5 minutes.
The present study was undertaken to investigate the effects of PVP concentration and exposure temperature to vitrification solution on the post-thaw survival, in vitro maturation and development of immature bovine oocytes (germinal vesicle stage). The vitrification solution (VS) consisted of 40% ethylene glycol (EG)+0.5 M sucrose (S)+10% FBS. PVP was added to VS: 0%, 5% or 10%. The cumulus-oocyte complexes (COCs) were diluted in VS as one step, after 2 min the COCs were loaded in straw and vitrified by direct immersion into liquid nitrogen. For thawing, the straws were plunged into $30^{\circ}C$ water bath for 10s. After thawing, the oocytes were diluted in 0.5 M (in DPBS with 10% FBS) sucrose solution for 5 min. The survival rate (FDA-test and trypan blue) of immature bovine oocytes was measured. The survival rate was higher in 5% PVP (91.5%) than in 0% (64.2%) or in 10% PVP (79.7%). The proportion of metaphase II formation was 69.35% in control (no vitrified COCs), 9.3% in 40% EG+0.5 M S+0% PVP and 21.05% in 40% EG+0.5 M S+5% PVP (p<0.05). The effect of room temperature ($25^{\circ}C$ for 10 min) and cold temperature ($4^{\circ}C$ for 10 min) on COCs were determined in this study. After IVF, the cleavage and blastocysts rate of oocytes exposed to room temperature and cold temperature in VS+5% PVP was significantly different (2 cell: 63.20% vs 37.97%, blastocysts: 18.40% vs 2.53%). The cleavage rates of frozen-thawed oocytes were 20.53% with PVP and 22.13% without PVP (p>0.05). Two out of 151 oocytes (1.32%) developed to blastocyst stage after frozen-thawed with 5% PVP (p>0.05). Development of oocytes after frozen-thawing to the 2 cell were not significantly affected with or without PVP following IVF. However, the vitrification of immature bovine oocytes with PVP maintained the ability to develop to the blastocyst stage after IVM-IVF and IVC, while no blastocysts were obtained from oocytes vitrified without PVP. These results suggested that PVP has a protective role for vitrification of immature bovine oocytes as far as survival is concerned, however, the protection was not sufficient enough to support blastocyst formation.
한우 미성숙 난자의 vitrification 동결시 발생단계별 생존성과 체외발생율을 알아보고자 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양시킨 후 vitrification 동결 융해 후의 체외발생율을 조사하였다 본 연구에서 나타난 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양시킨 난자를 vitrification 동결보존 후 MR 단계로의 발생율은 각각 33.3%, 55.0%, 68.3% 73.3%였으며, diploid로의 발생율은 26.7%, 21.7%, 6.7%, 1.7%로서 대조군의 M II 단계의 78.2%에 비해 낮게 나타났으나 diploid단계의 3.6%에 비해서는 높게 나타났다. 2. 미성숙 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양 시킨 후 vitrification 동결 응해 후의 생존율은 각각 38.0%, 30.0%, 20.0% 및 12.0%로서 비동결 대조군의 48.0%에 비해 낮은 생존율을 나타냈다. 3. 미성숙 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양 시킨 다음 vitrification동결 응해 후 수정하였 때 체외수정율은 64.6%, 61.6%, 54.8%, 32.3% 였으며, 배 반포로의 체 외 발생 율은 각각 32.3%, 21.7%, 14.5%, 4.6%로서 대조춘의 80.0%와 55.0%에 비해 낮은 체외수정율과 체외발생율을 나타냈다.
Choudhury, Sk Mohiuddin;Bhuiyan, Mohammad Musharraf Uddin;Rahman, Mohammad Moshiur;Rahman, Md. Masudur;Sharif, Md. Newaz;Bhattacharjee, Jayonta;Bari, Farida Yeasmin;Juyena, Nasrin Sultana
한국수정란이식학회지
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제32권4호
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pp.311-317
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2017
Cryopreservation of oocytes by vitrification technique may contribute a lot in the field of reproductive biotechnology. The objectives of the present study were to evaluate the effectiveness of two cryo-devices for vitrification of immature oocytes of indigenous zebu cows. Slaughter house derived immature cumulus-oocyte-complexes (COCs) of cows were vitrified using 15% dimethyl sulphoxide (DMSO) as cryoprotective agent (CPA) with 0.5 mol sucrose in TCM 199 supplemented with 20% FBS. Vitrification of COCs was completed after immediate plunging of COCs loaded cryotop or French mini straw into the liquid nitrogen ($LN_2$). Then the COCs containing cryotop or French mini straws were warmed in 0.25 mol sucrose and 20% FBS supplemented TCM 199 followed by in vitro culture in $50{\mu}l$ droplets of bicarbonate buffered TCM 199 supplemented with 10% FBS, pyruvate, FSH and oestradiol for 24 hrs at $39^{\circ}C$ with 5% CO2 in humidified air. After maturation culture, oocytes were denuded and examined under inverted microscope for presence of polar body as the indication of maturation. Denuded oocytes were also stained by whole mount technique using 1% orcein to examine the maturation by presence of MII chromosomes. The in vitro maturation rate was significantly (p<0.05) higher in oocytes vitrified and warmed using crytop ($47.1{\pm}6.9%$) than that of French mini straw ($15.9{\pm}12.5%$). Moreover, in vitro maturation rate was significantly (p<0.05) highe r in control oocytes (not vitrified) ($84.5{\pm}14.2%$) than that of vitrified oocytes. In conclusion, cryotop is better than French mini straw as cryo-device for vitrification of bovine immature oocytes.
본 연구는 미성숙, 성숙 단계의 돼지 난포란이 유리화 동결에 의한 동결보존이 가능한지를 조사 하고자 실시하였다. 난포란은 세포질 내 지방구를 분극시키기 위해 원심분리를 실시하였고, 미세조작기를 이용하여 지방구를 제거하였다. 돼지 난포란을 CB 처리하여 원심분리 후 지방구를 제거한 지방제거구(Delipated), CB 처리 후 원심분리만 하여 지방구를 분극시킨 원심분리구(Centrifuged), 아무처리도 하지 않은 대조구(Control)를 EM grid를 이용한 유리화 동결, 융해 한 후 생존율과 체 외 발생율을 조사하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 미성숙 시기에 지방제거, 원심분리, 무처리 후 유리화 동결을 실시한 돼지 난포란의 생존율은 각각 15.1%, 0%, 0%로 지 방제 거구에서만 유의적으로 높은 생존율을 나타내었다(p<.01). 2. 성숙 시기에 지방제거, 원심분리, 무처리 후 유리화 동결을 실시한 돼지 난포란의 생존율은 각각 12.2%, 0%, 0%로 지방제거구에서만 유의적으로 높은 생존율을 나타내었다(P<.01). 3. 미성숙 시기에 지방제거 후 유리화 동결을 실시하여 생존한 난자치 핵 성숙율은 37.5%로 동결하지 않은 난포란의 성숙율 68.9%보다 유의적으로 낮은 것이었다(P<.01). 4. 미성숙 시기에 지방제거, 원심분리, 무처리 후 유리화 동결을 실시하여 생존한 난자의수정 후 배 발달율은 12.5%, 0%, 0%로 지방 제거구에서만 배 발달을 나타었으나, 세 처리간의 유의차는 없었고, 이것은 동결하지 않은 난포란의 배 발달율 56.1%보다는 유의 적으로 낮은 것이었다(P<.05). 5. 성숙 시기에 지방제거, 원심분리, 무처리 후 유리화 동결을 실시하여 생존한 난자의 수정 후 배 발달율은 25.0%, 0%, 0%로 지방제거구에서만 배 발달을 나타내었으나 세 처리간의 유의차는 없었고, 이것은 동결하지 않은 난포란의 배 발달율 67.9%보다는 유의적으로 낮은 것이었다(P<.05).
This study was undertaken in an effort to product embryos through in vitro maturation(IVM), in vitro fertilization(IVF) and in vitro culture(IVC) after cryopreservation of immature and mature porcine oocytes. The experiments were conducted to investigate IVM rate of oocytes frozen with 3 different cryoprotectants and to examine IVF and IVC of frozen-thawed oocytes. The CEI(cumulus cells expansion index) after IVM of frozen-thawed immature oocytes was higher in oocytes frozen with PG+PEG(propylene glycol plus polyethylene glycol) than those frozen with single cryoprotectant and this index was almost 90% of unfrozen oocyte's index(2.39 vs. 2.66). The IVF rate of all frozen oocytes was very low(68% of unfrozen oocytes) and the IVF rate of frozen immature oocytes was slightly higher than that of frozen mature oocytes(39.0% vs. 34.4%), but polyspermic penetration was higher in frozen immature oocytes(21.9% vs. 19.1%). The cleavage rate after IVF of frozen-thawed oocytes was 9.3% for frozen mature oocytes and 11.3% for frozen immature oocytes and this rate was significantly lower(P<0.05) than that of control(60.7%). The development to 8-cell stage was greatly lower in frozen mature oocytes than in frozen immature oocytes. The results indicate that the use of PG plus PEG as cryoprotectant may be very effective for vitrification of porcine oocytes and the frozen-thawed immature porcine oocytes can be used fro in vitro embryo production based on IVM, IVF and IVC system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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