Yun, Yeo Hong;Oh, Man Hwan;Kim, Jun Young;Kim, Seong Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제27권5호
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pp.1010-1022
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2017
Hybrid histidine kinase is part of a two-component system that is required for various stress responses and pathogenesis of pathogenic fungi. The Tco1 gene in human pathogen Cryptococcus neoformans encodes a hybrid histidine kinase and is important for pathogenesis. In this study, we identified a Tco1 homolog, UmTco1, in the maize pathogen Ustilago maydis by bioinformatics analysis. To explore the role of UmTco1 in the survival of U. maydis under environmental stresses and its pathogenesis, ${\Delta}umtco1$ mutants were constructed by allelic exchange. The growth of ${\Delta}umtco1$ mutants was significantly impaired when they were cultured under hyperosmotic stress. The ${\Delta}umtco1$ mutants exhibited increased resistance to antifungal agent fludioxonil. In particular, the ${\Delta}umtco1$ mutants were unable to produce cytokinesis or conjugation tubes, and to develop fuzzy filaments, resulting in impaired mating between compatible strains. The expression levels of Prf1, Pra1, and Mfa1, which are involved in the pheromone pathway, were significantly decreased in the ${\Delta}umtco1$ mutants. In inoculation tests to the host plant, the ${\Delta}umtco1$ mutants showed significantly reduced ability in the production of anthocyanin pigments and tumor development on maize leaves. Overall, the combined results indicated that UmTco1 plays important roles in the survival under hyperosmotic stress, and contributes to cytokinesis, sexual development, and virulence of U. maydis by regulating the expression of the genes involved in the pheromone pathway.
This study investigated the prevalence of Vibrio parahaemolyticus in the oyster Crassostrea gigas, which is commonly consumed raw. The presence of virulence factors and the antimicrobial susceptibility of isolates were also investigated. The overall prevalence rate of V. parahaemolyticus in oysters was 37.5% (36/96) and the range of concentrations was 30-11,000 MPN/100 g. PCR-based assays indicated that 9.6% (11/115) of the isolates were positive for the thermostable direct hemolysin-related hemolysin gene (trh), while none of the isolates were positive for the thermostable direct hemolysin gene (tdh). The Multiple Antibiotics Resistance (MAR) index was measured for 16 common antimicrobial agents and 46.1% (53/115) of the isolates had a MAR index > 0.2. The MAR index ranged from 0.07 to 0.73. The highest MAR index was observed with strain s150608, isolated in June 2015, which exhibited resistance to 11 antimicrobial agents. Our results demonstrate that oysters are high-risk sources of V. parahaemolyticus, although no antimicrobial agent was being used to promote growth or to treat bacterial infections in the sampled oyster-growing areas.
From 2013 through 2015, we investigated the contamination status and antimicrobial resistance patterns of pathogenic Vibrio parahaemolyticus in commercially valuable seawater and shellfish (Oyster Crassostrea gigas, short-neck clam Venerupis philippinarum, ark shell Scapharca broughtonii and mussel Mytilus galloprovinciallis) from the southern coast of Korea. The detection rate of V. parahaemolyticus was highest in short-neck clams (23.7%), followed by ark shells (19.2%), oysters (15.9%), mussels (13.6%), and seawater (8.6%). The following percentages of PCR assays of shellfish were positive for the thermostable direct hemolysin-related hemolysin gene (trh) : oysters (12.8%), short-neck clams(11.8%), and ark shells (3.4%). Similar assays for the thermostable direct hemolysin gene (tdh) resulted in positive results for short-neck clams (5.9%) and ark shells (3.4%). Antimicrobial resistance was present in 100% of 8 tdh (+) and 2 trh (+) V. parahaemolyticus isolates challenged with ampicillin. However, all pathogenic V. parahaemolyticus were sensitive to 14 other antibiotics. To ensure the safety of shellfish consumption, the continuous monitoring of the prevalence and distribution of virulence factors of V. parahaemolyticus in shellfish farms is needed.
Shiga toxin (stx) producing Escherichia coli (STEC) causes various clinical signs in animal and human. In this study, 255 fecal samples from calves showing diarrhea were collected from cattle farms in Chonnam province during the period from January 2005 to July 2005. Twenty six STEC (10%) were isolated from 255 fecal samples by PCR. The isolates displayed three different stx combinations (stx1 [69%], stx1 and stx2 [15%], and stx2 [38%]). The isolates were further studied for virulence associated genes and antimicrobial resistance to define the virulence properties. Intimin (eaeA), enterohemolysin (hlyA), and lipopolysaccharide (rfbE) virulence genes were detected in 6 (23%), 7 (26%), and 1 (3.8%) of the isolates, respectively, by PCR. One isolate possessing rfbE gene was typed as E. coli 0157 : H7 by agglutination test with O and H antisera. All 26 isolates showed susceptibility to amikacin (100%) and the majority of isolates showed high susceptibility to gentamicin (88.5%) and chloramphenicol (73.1%). But all isolates were resistant to penicillin. These results may provide the basic knowledge to establish strategies for the treatment and prevention of enteric disease in calves.
Type VI secretion system (T6SS) is a contact-dependent secretion system, employed by most gram-negative bacteria for translocating effector proteins to target cells. The present study was conducted to investigate T6SS in Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo), which causes bacterial blight in rice, and to unveil its functions. Two T6SS clusters were found in the genome of Xoo PXO99A. The deletion mutants, Δhcp1, Δhcp2, and Δhcp12, targeting the hcp gene in each cluster, and a double-deletion mutant targeting both genes were constructed and tested for growth rate, pathogenicity to rice, and inter-bacterial competition ability. The results indicated that hcp in T6SS-2, but not T6SS-1, was involved in bacterial virulence to rice plants. However, neither T6SS-1 nor T6SS-2 had any effect on the ability to compete with Escherichia coli or other bacterial cells. In conclusion, T6SS gene clusters in Xoo have been characterized, and its role in virulence to rice was confirmed.
Leptospirosis is a zoonotic disease caused by spirochetes from the genus Leptospira. In Thailand, Leptospira interrogans is a major cause of leptospirosis. Leptospirosis patients present with a wide range of clinical manifestations from asymptomatic, mild infections to severe illness involving organ failure. For better understanding the difference between Leptospira isolates causing mild and severe leptospirosis, illumina sequencing was used to sequence genomic DNA in both serotypes. DNA of Leptospira isolated from two patients, one with mild and another with severe symptoms, were included in this study. The paired-end reads were removed adapters and trimmed with Q30 score using Trimmomatic. Trimmed reads were constructed to contigs and scaffolds using SPAdes. Cross-contamination of scaffolds was evaluated by ContEst16s. Prokka tool for bacterial annotation was used to annotate sequences from both Leptospira isolates. Predicted amino acid sequences from Prokka were searched in EggNOG and David gene ontology database to characterize gene ontology. In addition, Leptospira from mild and severe patients, that passed the criteria e-value < 10e-5 from blastP against virulence factor database, were used to analyze with Venn diagram. From this study, we found 13 and 12 genes that were unique in the isolates from mild and severe patients, respectively. The 12 genes in the severe isolate might be virulence factor genes that affect disease severity. However, these genes should be validated in further study.
Shuyi Wang;Jingwen Hao;Jicheng Yang;Qianqian Zhang;Aihua Li
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제33권2호
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pp.167-179
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2023
The rifampicin-resistant strain E9-302 of Edwardsiella ictaluri strain 669 (WT) was generated by continuous passage on BHI agar plates containing increasing concentrations of rifampicin. E9-302 was attenuated significantly by 119 times to zebrafish Danio rerio compared to WT in terms of the 50% lethal dose (LD50). Zebrafish vaccinated with E9-302 via intraperitoneal (IP) injection at a dose of 1 × 103 CFU/fish had relative percentage survival (RPS) rates of 85.7% when challenged with wild-type E. ictaluri via IP 14 days post-vaccination (dpv). After 14 days of primary vaccination with E9-302 via immersion (IM) at a dose of 4 × 107 CFU/ml, a booster IM vaccination with E9-302 at a dose of 2 × 107 CFU/ml exhibited 65.2% RPS against challenge with wild-type E. ictaluri via IP 7 days later. These results indicated that the rifampicin-resistant attenuated strain E9-302 had potential as a live vaccine against E. ictaluri infection. A previously unreported amino acid site change at position 142 of the RNA polymerase (RNAP) β subunit encoded by the gene rpoB associated with rifampicin resistance was identified. Analysis of the whole-genome sequencing results revealed multiple missense mutations in the virulence-related genes esrB and sspH2 in E9-302 compared with WT, and a 189 bp mismatch in one gene, whose coding product was highly homologous to glycosyltransferase family 39 protein. This study preliminarily explored the molecular mechanism underlying the virulence attenuation of rifampicin-resistant strain E9-302 and provided a new target for the subsequent study of the pathogenic mechanism of E. ictaluri.
We have cloned the CGR1 gene encoding glutathione reductase (GR) which catalyzes the reduction of oxidized glutathione (GSSG) to reduced glutathione (GSH) from Candida albicans. The cgr1/cgr1 mutants were not viable when CaMAL2 promoter repressed the CGR1 expression. The growth of the mutants could be partially overcome by thiol compounds such as GSH, dithiothreitol, cysteine, N-acetylcysteine and GSSG. Interestingly, C. albicans with CGR1 overexpressed showed defective hyphal growth on solid medium and attenuated virulence. We have also cloned the GCS1 gene encoding ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase which catalyzes the first step of glutathione biosynthesis. The gcs1/gcs1 mutants were nonviable in minimal defined medium. The growth of the mutants could be resumed by supplementing with GSH, GSSG and ${\gamma}$-glutamylcysteine in the medium. The mutants had increased intracellular D-erythroascorbic acid level up to 2.25-fold when transferred to GSH-free medium. When the mutants were depleted of GSH, they showed typical markers of apoptosis. In conclusion, these results suggest that glutathione is an essential metabolite, and involved in hyphal growth, virulence and apoptosis in C. albicans.
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