The relationship between morphological differentiation and production of trypsin-like protease (TLP_ in streptomycetes was studied. All the Streptomyces spp.In this study produced TLP just before the onset of aerial mycelium formation. Addition of TLP inhibitor, TLCK, to the top surface of colonies inhibited aerial mycelium formation as well as TLP inhibitor, TLCK, to the top surface of colonies inhibited aerial mycelium formation as well as TLP activity. Addition of 2% glucose to the Bennett agar medium repressed both the aerial mycelium formation and TLP production in S. abuvaviensis, S. coelicolor A3(2), S exfoliatus, S. microflavus, S. roseus, s. lavendulae, and S. rochei. However the addition of glucose did not affect S. limosus, S. felleus, S. griseus, S. phaechromogenes, and S. rimosus. The glucose repression on aerial mycelium formation and production of TLP was relieved by the addition of glucose anti-metabolite (methyl .alpha.-glucopyranoside). Therefore, it was concluded that TLP production is coordinately regulated with morphological differentiation and TLP activity is essential for morphological differentiation in streptomycetes. The proposed role of TLP is that TLP participates in the degradation of substrate mycelium protein for providing nutrient for aerial mycelial growth.
Despite being a rich source of protein (28-34%), karanj (Pongamia glabra) cake is found to be bitter in taste and toxic in nature owing to the presence of flavonoid (karanjin), tannin and trypsin inhibitor, thereby restricting its safe inclusion in poultry rations. Feeding of karanj cake at higher levels (>10%) adversely affected the growth performance of poultry due to the presence of these toxic factors. Therefore, efforts were made to detoxify karanj cake by various physico-chemical methods such as dry heat, water washing, pressure cooking, alkali and acid treatments and microbiological treatment with Sacchraromyces cerevisiae (strain S-49). The level of residual karanjin in raw and variously processed cake was quantified by high performance liquid chromatography and tannin and trypsin inhibitor was quantified by titrametric and colorimetric methods, respectively. The karanjin, tannin and trypsin inhibitor levels in such solvent and expeller pressed karanj cake were 0.132, 3.766 and 6.550 and 0.324, 3.172 and 8.513%, respectively. Pressure-cooking of solvent extracted karanj cake (SKC) substantially reduced the karanjin content at a cake:water ratio of 1:0.5 with 30-minute cooking. Among chemical methods, 1.5% (w/w) NaOH was very effective in reducing the karanjin content. $Ca(OH)_2$ treatment was also equally effective in karanjin reduction, but at a higher concentration of 3.0% (w/w). A similar trend was noticed with respect to treatment of expeller pressed karanj cake (EKC). Pressure cooking of EKC was effective in reducing the karanjin level of the cake. Among chemical methods alkali treatment [2% (w/w) NaOH] substantially reduced the karanjin levels of the cake. Other methods such as water washing, dry heat, HCl, glacial acetic acid, urea-ammoniation, combined acid and alkali, and microbiological treatments marginally reduced the karanjin concentration of SKC and EKC. Treatment of both SKC and EKC with 1.5% and 2.0% NaOH (w/w) was the most effective method in reducing the tannin content. Among the various methods of detoxification, dry heat, pressure cooking and microbiological treatment with Saccharomyces cerevisiae were substantially effective in reducing the trypsin inhibitor activity in both SKC and EKC. Based on reduction in karanjin, in addition to tannin and trypsin inhibitor activity, detoxification of SKC with either 1.5% NaOH or 3% $Ca(OH)_2$, w/w) and with 2% NaOH were more effective. Despite the effectiveness of pressure cooking in reducing the karanjin content, it could not be recommended for detoxification because of the practical difficulties in adopting the technology as well as for economic considerations.
The principal objective of the current study was to prepare low molecular weight peptides from milk proteins using enzymatic hydrolysis techniques, in an effort to assess the antioxidant activity of these peptides. The casein and whey proteins isolated from fresh milk were treated with several proteolytic enzymes, such as chymotrypsin, pepsin, and trypsin and the resulting low molecular weight peptides were collected by TCA precipitation. Their identity was confirmed by SDS-PAGE analysis. The hydrolysis experiments indicated that whey protein treated with chymotrypsin displayed the highest degree of protein hydrolysis. The antioxidant activity of milk protein hydrolysates was determined by measuring the ABTS-radical scavenging activity. The results of these experiments showed that hydrolysis of the milk protein was effective in increasing their antioxidant activities. Especially, the tryptic digested casein displayed the highest radical scavenging activity (80.7%). The hydrolyzed low molecular weight milk protein was isolated using an ultrafiltration membrane. The casein hydrolysate passed through a membrane with molecular weight cut-off (MWCO) of 3 kDa displayed the strongest antioxidant activity.
The fibrinolytic activities of soluble proteins extracted from young leaves of Camellia japonica L. were studied. Fibrinolvity activity of extract from partitions of C. japonica L. showed 1.6-2.0 times higher than plasmin used as positive control. The fibrinolytic enzyme was confirmed directly from young leaves of C. japonica L. by a fibrin Plate and fibrin zymography. The protein was composed of a single polypeptide and its apparent molecular weight was found to be 45 kDa, as judged by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The optimum pH and temperature for the fibrinolytic activity were pH 5.5 and $30^{\circ}C$, respectively. Also, the fibrinolytic activity was clearly inhibited by PMSF and TLCK, suggesting that it is a member of the trypsin-like serine protease. All these results suggest the protease is a fibrinolytic enzyme belong to a family of trypsin-like serine protease.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.37
no.2
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pp.136-140
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2008
In order to utilize the silkworm larvae (Bombyx mori) protein, defatted silkworm protein was hydrolysed by four enzymes (pepsin, trypsin, neutrase and alcalase) at various hydrolysis times (6, 12, 18, 24 and 30 hr) and suspension concentrations (2, 5, 10, 15 and 20%). Protein solubility index, ACE (angiotensin converting enzyme) inhibitory activity and antioxidative activity of silkworm protein hydrolysates were investigated. The optimum condition of hydrolysis was 10% suspension concentration and 18 hr. Protein solubility index of trypsin treatment was higher than other enzyme treatments. ACE inhibitory activity and $IC_{50}$ value of antioxidative activity of neutrase treatment were 86.16% at $100\;{\mu}g/mL$ and $352.75\;{\mu}g/mL$, respectively; also, these values were higher than other enzyme treatments.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.22
no.1
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pp.68-72
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1993
The methanol extract of the leaves of Cudrania tricuspidata and ethyl acetate fraction from the methanol extract showed inhibition for trypsin activity and the growth inhibition of Staphylococcus aureus. The content of kaempferol 7-O-$\beta$-D-glucopyranoside isolated from this plant was determined by HPLC and it was about 0.31% for the methanol extract.
A fluorometric method is described which permits the assay of trypsin inhibitor contained in a sample in an extremely small amount, utilizing a novel reagent generally called fluorescamine. The fluorometric assay with an enzyme kinetic approach has been found to be at least 100 times more sensitive than the well-known Kunitz's spectrophotometric method, considerably taster and less complicated, when it was demonstrated with the anti tryptic activities of very dilute extracts from soybean, red-bean and mung bean. Details of experimental procedure as well as theoretical considerations will be discussed.
Park, Yun-Joo;Yun, Yeo-Pyo;Lee, Hyung-Joo;Jang, Hae-Dong
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.28
no.1
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pp.99-104
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1996
Carbohydrate-free caseinomacropeptide (CMP) was isolated from the sweet whey powder by a precipitation method using 12% trichloroacetic acid. The yield of carbohydrate-free CMP was 2.7 g from 100 g sweet whey powder. The electrophoretic pattern and the amino acid analysis of CMP showed that isolated CMP was quite pure, indicating the precipitation with 12% trichloroacetic acid was very effective for isolating carbohydrate-free CMP from the sweet whey powder. Trypsin, covalently immobilized on pore glass beads by carbodiimide (EDC) method, was 20mg per 1g glass beads. CMP was almost completely hydrolyzed by soluble trypsin in 24hr, but not by immobilized trypsin. The tryptic hydrolysates were fractionated on a Bio-Gel P 4 column $(1.5{\times}120\;cm)$and separated peptides were tested for their capacities to inhibit platelet aggregation using a aggregometer. The hydrolysate obtained from CMP after 24hr digestion by immobilized trypsin showed the highest activity.
Jeewanthi, Renda Kankanamge Chaturika;Kim, Myeong Hee;Lee, Na-Kyoung;Yoon, Yoh Chang;Paik, Hyun-Dong
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.1
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pp.62-70
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2017
The aim of this study was identifying a suitable food grade enzymes to hydrolyze whey protein concentrates (WPCs), to give the highest bioactivity. WPCs from ultrafiltration retentate were adjusted to 35% protein (WPC-35) and hydrolyzed by enzymes, alcalase, ${\alpha}-chymotrypsin$, pepsin, protease M, protease S, and trypsin at different hydrolysis times (0, 0.5, 1, 2, 3, 4, and 5 h). These 36 types of hydrolysates were analyzed for their prominent peptides ${\beta}-lactoglobulin$ (${\beta}-Lg$) and ${\alpha}-lactalbumin$ (${\alpha}-La$), to identify the proteolytic activity of each enzyme. Protease S showed the highest proteolytic activity and angiotensin converting enzyme inhibitory activity of IC50, 0.099 mg/mL (91.55%) while trypsin showed the weakest effect. Antihypertensive and antioxidative peptides associated with ${\beta}-Lg$ hydrolysates were identified in WPC-35 hydrolysates (WPH-35) that hydrolyzed by the enzymes, trypsin and protease S. WPH-35 treated with protease S in 0.5 h, responded positively to usage as a bioactive component in different applications of pharmaceutical or related industries.
Myosin were prepared from red muscle and white muscle, and their ATPase activities were compared. Ca-ATPase activity of bovine myosin from red muscle was higher than that of myosin from white muscle, while Ca-ATPase activity of chicken myosin from red muscle differed hardly from that of myosin from whitemuscle. Atso EDTA-ATPase activity of bovine red muscle myosin was higher than that of white muscle myosin ,although EDTA-ATPase activity of chicken myosin from red muscle differed hardly from that of white muscle myosin. When myosins were treated with trypsin, bovine myosin from white muscle was hydrolysed moreeasily than red muscle myosin was. Chicken myosin from red muscle , however, was hydrolysed by trypsin more easily than white muscle myosin was.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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