Su-Kang Kong;Byung Soo Kim;Sae Mi Hwang;Hyune Hwan Lee;Il Yup Chung
IMMUNE NETWORK
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제16권3호
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pp.176-182
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2016
CCR3 is a chemokine receptor that mediates the accumulation of allergic inflammatory cells, including eosinophils and Th2 cells, at inflamed sites. The regulatory sequence of the CCR3 gene, contains two Runt-related transcription factor (RUNX) 1 sites and two PU.1 sites, in addition to a functional GATA site for transactivation of the CCR3 gene. In the present study, we examined the effects of the cis-acting elements of RUNX1 and PU.1 on transcription of the gene in EoL-1 eosinophilic cells and Jurkat T cells, both of which expressed functional surface CCR3 and these two transcription factors. Introduction of RUNX1 siRNA or PU.1 siRNA resulted in a modest decrease in CCR3 reporter activity in both cell types, compared with transfection of GATA-1 siRNA. Cotransfection of the two siRNAs led to inhibition in an additive manner. EMSA analysis showed that RUNX1, in particular, bound to its binding motifs. Mutagenesis analysis revealed that all point mutants lacking RUNX1- and PU.1-binding sites exhibited reduced reporter activities. These results suggest that RUNX1 and PU.1 participate in transcriptional regulation of the CCR3 gene.
Sterol regulatory element-binding protein-1c (SREBP1c) plays an important role in triglyceride (TG) homeostasis. Although our previous study showed that hepatitis C virus core-binding protein 6 (HCBP6) regulates SREBP1c expression to maintain intracellular TG homeostasis, the mechanism underlying this regulation is unclear. In the present study, we found that HCBP6 increased intracellular TG levels by upregulating SREBP1c expression. HCBP6 increased SREBP1c transcription by directly binding to the SREBP1c promoter (at the -139- to +359-bp region). Moreover, we observed that HCBP6 interacted with $C/EBP{\beta}-binding$ site in the SREBP1c promoter both in vitro and in vivo. These results indicate that HCBP6 upregulates human SREBP1c expression by binding to the $C/EBP{\beta}-binding$ site in the SREBP1c promoter.
Bacillus subtilis PerR is a metal-dependent peroxide-sensing transcription factor which uses metal-catalyzed histidine oxidation for peroxide-sensing. PerR contains two metal binding sites, one for structural $Zn^{2+}$ and the other for the regulatory/peroxide-sensing metal. Here we investigated the effect of mutations at both the structural and regulatory metal binding sites on the oxidation of either H37 or H91, two of the peroxide-sensing ligands. All four serine substitution mutants at the structural $Zn^{2+}$ site (C96S, C99S, C136S and C139S) exhibited no detectable oxidation at histidine residues. Two of the alanine substitution mutants at regulatory metal site (H37A and D85A) exhibited selective oxidation preferentially at the H91-containing tryptic peptide, whereas no oxidation was detected in the other mutants (H91A, H93A and D104A). Our results suggest that the cysteine residues coordinating structural $Zn^{2+}$ are essential for peroxide sensing by PerR, and that the C-terminal regulatory metal binding site composed of H91, H93 and D104 can bind $Fe^{2+}$, providing a possible explanation for the peroxide sensing mechanisms by PerR.
SOX3 is one of the earliest neural markers in vertebrates, playing the role in specifying neuronal fate. In this study we have established first functional link between CREB and human SOX3 gene which both have important roles in the nervous system throughout development and in the adulthood. Here we demonstrate both in vitro and in vivo that CREB binds to CRE half-site located -195 to -191 within the human SOX3 promoter. Overexpression studies with CREB or its dominant-negative inhibitor A-CREB indicate that this transcription factor acts as a positive regulator of basal SOX3 gene expression in NT2/D1 cells. This is further confirmed by mutational analysis where mutation of CREB binding site results in reduction of SOX3 promoter activity. Our results point at CREB as a positive regulator of SOX3 gene transcription in NT2/D1 cells, while its contribution to RA induction of SOX3 promoter is not prominent.
Objective: Vanin1 (VNN1) is a pantetheinase that can catalyze the hydrolysis of pantetheine to produce pantothenic acid and cysteamine. Our previous studies showed that VNN1 is specifically expressed in chicken liver. In this study, we aimed to investigate the roles of peroxisome proliferators activated receptor α (PPARα) and miRNA-181a-5p in regulating VNN1 gene expression in chicken liver. Methods: 5'-RACE was performed to identify the transcription start site of chicken VNN1. JASPAR and TFSEARCH were used to analyze the potential transcription factor binding sites in the promoter region of chicken VNN1 and miRanda was used to search miRNA binding sites in 3' untranslated region (3'UTR) of chicken VNN1. We used a knock-down strategy to manipulate PPARα (or miRNA-181a-5p) expression levels in vitro to further investigate its effect on VNN1 gene transcription. Luciferase reporter assays were used to explore the specific regions of VNN1 targeted by PPARα and miRNA-181a-5p. Results: Sequence analysis of the VNN1 promoter region revealed several transcription factor-binding sites, including hepatocyte nuclear factor 1α (HNF1α), PPARα, and CCAAT/enhancer binding protein α. GW7647 (a specific agonist of PPARα) increased the expression level of VNN1 mRNA in chicken primary hepatocytes, whereas knockdown of PPARα with siRNA increased VNN1 mRNA expression. Moreover, the predicted PPARα-binding site was confirmed to be necessary for PPARα regulation of VNN1 gene expression. In addition, the VNN1 3'UTR contains a sequence that is completely complementary to nucleotides 1 to 7 of miRNA-181a-5p. Overexpression of miR-181a-5p significantly decreased the expression level of VNN1 mRNA. Conclusion: This study demonstrates that PPARα is an important transcriptional activator of VNN1 gene expression and that miRNA-181a-5p acts as a negative regulator of VNN1 expression in chicken hepatocytes.
MITF는 미백관련 유전자의 대표적인 조절 인자 단백질로서 미백관련 유전자의 E-box와의 결합정도를 단백질 칩을 이용하여 측정하였다. 융합 단백질 형태의 MITF를 유리 칩에 고정시켰고 E-box를 포함하는 DNA oligomer가 결합하는 것을 확인하였다. 형광법, SPR (surface plasmon resonance), SPRi (surface plasmon resonance imaging)방법 중 형광법이 가장 효과적이었으며, DNA 저해제를 사용시 결합이 감소하는 것을 확인하였다. 이 결과 MITF를 이용한 미백원료의 고속스크리닝(HTS)의 가능성을 보여주었다.
환경 스트레스 신호 인지부터 스트레스 반응 유전자의 발현에 이르는 신호전달 네트워크에 있어서, 스트레스 반응 프로모터의 cis-조절 요소와 거기에 결합하는 다양한 전사인자는 환경 스트레스에 대한 식물의 적응을 조절한다. 애기장대 AP2/ERF 전사인자 패밀리 중 그룹 VII ERF는 RAP2.12, RAP2.2, RAP2.3, AtERF73/HRE1, AtERF71/HRE2 유전자를 포함하며, 저산소 스트레스 반응에서 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 HRE1 프로모터의 저산소 반응 부위를 동정하였다. 이를 위해 1,000 bp, 800 bp, 600 bp, 400 bp, 200 bp, 100 bp, 그리고 50 bp HRE1 프로모터 부위를 포함하는 벡터를 제작하여 프로모 터 활성을 분석한 결과, -200에서 -100 프로모터 부위가 HRE1의 저산소 반응에서 중요함을 확인하였다. HRE1의 -200에서 -100 프로모터 부위에는 저산소 반응 cis-조절 요소로 알려진 ERF-결합 부위와 DOF-결합 부위가 존재하는데, 이는 HRE1의 발현이 ERF 전사인자와 DOF 전사인자에 의해 조절될 수 있음을 시사한다. 전체적으로, 본 연구를 통해 HRE1 의 저산소 스트레스 반응에는 -200에서 -100 프로모터 부위에 존재하는 cis-조절 요소가 중요한 역할을 한다는 것을 확인하였다.
The process of transcription is the major point at which gene expression is regulated. The jun and fos families of eukaryotic transcription factor heterodimerize to form complexes capable of binding 5'-TGAGTCA-3'DNA elements (AP-1 binding site). To search for the inhibitors of the jun-fos-DNA complex formation, several natural products extracts were screened and methanol extract of tanshen (the dried roots of Salvia miltiorrhiza Bunge) showed remarkable inhibitory activity. The active compounds of the extracts were purified using re-peated column chromatography and recrystallization. Their structures were identified as tanshinone I and tanshinone IIA. Through the electrophoresis mobility shift assay and cell cytotoxicity test, tanshinone I and tanshinone IIA were identified as inhibitors that suppress not only AP-1 function but also the cell proliferation. Tanshinone I also suppressed the jun-fos-DNA complex formation in TPA-induced NIH 3T3 cells.
Lee, Hansol;Shin, Won-Sub;Kim, Young Uk;Jeon, Seungjib;Kim, Minsik;Kang, Nam Kyu;Chang, Yong Keun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제30권10호
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pp.1597-1606
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2020
Transcription factor engineering to regulate multiple genes has shown promise in the field of microalgae genetic engineering. Here, we report the first use of transcription factor engineering in Chlorella sp. HS2, thought to have potential for producing biofuels and bioproducts. We identified seven endogenous bZIP transcription factors in Chlorella sp. HS2 and named them HSbZIP1 through HSbZIP7. We overexpressed HSbZIP1, a C-type bZIP transcription factor, in Chlorella sp. HS2 with the goal of enhancing lipid production. Phenotype screening under heterotrophic conditions showed that all transformants exhibited increased fatty acid production. In particular, HSbZIP1 37 and 58 showed fatty acid methyl ester (FAME) yields of 859 and 1,052 mg/l, respectively, at day 10 of growth under heterotrophic conditions, and these yields were 74% and 113% higher, respectively, than that of WT. To elucidate the mechanism underlying the improved phenotypes, we identified candidate HSbZIP1-regulated genes via transcription factor binding site analysis. We then selected three genes involved in fatty acid synthesis and investigated mRNA expression levels of the genes by qRT-PCR. The result revealed that the possible HSbZIP1-regulated genes involved in fatty acid synthesis were upregulated in the HSbZIP1 transformants. Taken together, our results demonstrate that HSbZIP1 can be utilized to improve lipid production in Chlorella sp. HS2 under heterotrophic conditions.
Cimicifuga heracleifolia extract (CHE) was investigated for its effects on the release of nitric oxide (NO) and at the level of inducible nitric oxide synthase (iNOS) gene expression in mouse macrophages. We found that C. heracleifolia elicited a dose-dependent increase in NO production and the level of iNOS mRNA. Since, iNOS transcription has been shown to be under the control of the transcription factor $NF-{\kappa}B$, the effects of CHE on $NF-{\kappa}B$ activation were examined. Transient expression assays with $NF-{\kappa}B$ binding sites linked to the luciferase gene revealed that the increased level of iNOS mRNA, induced by CHE, was mediated by the $NF-{\kappa}B$ transcription factor complex. By using DNA fragments containing the $NF-{\kappa}B$ binding sequence, CHE was shown to activate the protein/DNA binding of $NF-{\kappa}B$ to its cognate site, as measured by electrophoretic mobility shift assay. These results demonstrate that C. heracleifolia stimulates NO production and is able to up-regulate iNOS expression through $NF-{\kappa}B$ transactivation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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