Numerous studies have reported that genes with similar expression patterns are co-regulated. From gene expression data, we have assumed that genes having similar expression pattern would share similar transcription factor binding sites (TFBSs). These function as the binding regions for transcription factors (TFs) and thereby regulate gene expression. In this context, various analysis tools have been developed. However, they have shortcomings in the combined analysis of expression patterns and significant TFBSs and in the functional analysis of target genes of significantly overrepresented putative regulators. In this study, we present a web-based A Functional Clustering Analysis Tool for Predicted Transcription Regulatory Elements and Gene Ontology Terms (FCAnalyzer). This system integrates microarray clustering data with similar expression patterns, and TFBS data in each cluster. FCAnalyzer is designed to perform two independent clustering procedures. The first process clusters gene expression profiles using the K-means clustering method, and the second process clusters predicted TFBSs in the upstream region of previously clustered genes using the hierarchical biclustering method for simultaneous grouping of genes and samples. This system offers retrieved information for predicted TFBSs in each cluster using $Match^{TM}$ in the TRANSFAC database. We used gene ontology term analysis for functional annotation of genes in the same cluster. We also provide the user with a combinatorial TFBS analysis of TFBS pairs. The enrichment of TFBS analysis and GO term analysis is statistically by the calculation of P values based on Fisher’s exact test, hypergeometric distribution and Bonferroni correction. FCAnalyzer is a web-based, user-friendly functional clustering analysis system that facilitates the transcriptional regulatory analysis of co-expressed genes. This system presents the analyses of clustered genes, significant TFBSs, significantly enriched TFBS combinations, their target genes and TFBS-TF pairs.
Sodium butyrate (NaBu) has been used to enhance protein expression levels in mammalian cell culture. To determine the clonal variability of recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cells in response to NaBu addition regarding specific antibody productivity $(q_{Ab})$, three rCHO clones were subjected to different concentrations of NaBu. For all three clones, NaBu addition inhibited cell growth and decreased cell viability in a dose-dependent manner. On the other hand, the enhancing effect of NaBu on $q_{Ab}$ varied significantly among the clones. NaBu addition enhanced the antibody production of only one clone. RT-PCR analysis revealed that the changes in $q_{Ab}$ correlated linearly with those of the mRNA transcription level. Thus, it was concluded that the different enhancing effects of NaBu on protein expression in rCHO cell clones resulted from their different mRNA transcription levels.
Kim, Kwoneel;Bang, Hyoeun;Lee, Kibaick;Choi, Jung Kyoon
Genomics & Informatics
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v.13
no.2
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pp.40-44
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2015
DNA microarray and next-generation sequencing provide data that can be used for the genetic analysis of multiple quantitative traits such as gene expression levels, transcription factor binding profiles, and epigenetic signatures. In particular, chromatin opening is tightly coupled with gene transcription. To understand how these two processes are genetically regulated and associated with each other, we examined the changes of chromatin accessibility and gene expression in response to genetic variation by means of quantitative trait loci mapping. Regulatory patterns commonly observed in yeast and human across different technical platforms and experimental designs suggest a higher genetic complexity of transcription regulation in contrast to a more robust genetic architecture of chromatin regulation.
The Runt-related transcription factors (RUNX) transcription factors have been known for their critical roles in numerous developmental processes and diseases such as autoimmune disorders and cancer. Especially, RUNX proteins are best known for their roles in hematopoiesis, particularly during the development of T cells. As scientists discover more types of new immune cells, the functional diversity of RUNX proteins also has been increased over time. Furthermore, recent research has revealed complicated transcriptional networks involving RUNX proteins by the current technical advances. Databases established by next generation sequencing data analysis has identified ever increasing numbers of potential targets for RUNX proteins and other transcription factors. Here, we summarize diverse functions of RUNX proteins mainly on lymphoid lineage cells by incorporating recent discoveries.
An olive-green mutant was generated in Synechocystis sp. strain PCC 6803 by inactivation of the sll0396 gene. Whole-cell absorption spectra of the mutant revealed the missing of phycocyanin peak. An investigation of the low-temperature fluorescence emission spectra revealed that the $sll0396{\Omega}$ mutant has a reduced amount of phycocyanin. Western blot analysis showed that the mutant contained less phycocyanin ${\beta}$- and ${\alpha}$-subunits and lacked the 30- and 32-kDa linker polypeptides, and northern blot analysis revealed that the transcription of the 1.4-kb cpcBA gene encoding the phycocyanin ${\beta}$- and ${\alpha}$-subunits was lower in the mutant. The Sll0396 protein has a DNA-binding motif and shares homology with known response regulators. Our results indicate that Sll0396 plays a regulatory role in the transcription of the phycocyanin genes during phycobilisome synthesis.
Ermawati, Netty;Hong, Jong Chan;Son, Daeyoung;Cha, Joon-Yung
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.41
no.4
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pp.242-249
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2021
Forage crop management is severely challenged by global warming-induced climate changes representing diverse a/biotic stresses. Thus, screening of valuable genetic resources would be applied to develop stress-tolerant forage crops. We isolated two NAC (NAM, ATAF1, ATAF2, CUC2) transcription factors (ANAC032 and ANAC083) transcriptionally activated by multi-abiotic stresses (salt, drought, and cold stresses) from Arabidopsis by microarray analysis. The NAC family is one of the most prominent transcription factor families in plants and functions in various biological processes. The enhanced expressions of two ANACs by multi-abiotic stresses were validated by quantitative RT-PCR analysis. We also confirmed that both ANACs were localized in the nucleus, suggesting that ANAC032 and ANAC083 act as transcription factors to regulate the expression of downstream target genes. Promoter activities of ANAC032 and ANAC083 through histochemical GUS staining again suggested that various abiotic stresses strongly drive both ANACs expressions. Our data suggest that ANAC032 and ANAC083 would be valuable genetic candidates for breeding multi-abiotic stress-tolerant forage crops via the genetic modification of a single gene.
Open reading frame (ORF) 3 on the Choristoneura fumiferana granulovirus (ChfuGV), located in the 11 kb fragment of the BamHI genomic bank encodes a predicted 32-kDa putative kinase protein. Bioinformatics analysis on the predicted amino acid sequence of ChfuGV PK-1 revealed the existence of 11 catalytic subdomains. Sequence analysis within the 5'-untranslated region (5'-UTR) of ChfuGV pk-1 indicates the presence of both putative early and late promoter motifs, indicating that pk-1 may be expressed throughout the infection cycle. Promoter sequence analysis reveals that pk-1 is deprived of a TATA box and appears instead to be regulated by other cis-acting transcriptional regulatory elements. Temporal transcription analysis by RT-PCR confirms the appearance of transcripts detected from 2 h p.i. until 72 h p.i. Northern blot hybridization characterizes pk-1 transcription as a 1.2 kb transcript. Homology comparisons reveal that ChfuGV PK-1 protein is most closely related to Phthorimaea operculalla granulovirus (PoGV) with 80% amino acid identity.
Transcription of mitochondrial DNA in the yeast S. cerevisiae depends on recognition of a consensus nonanucleotide promoter sequence by mitochondrial RNA polymerase specificity factor, which is a 43 kDa polypeptide encoded by the nuclear MTF1 gene. Mtf1p has only limited amino acid sequence homology to bacterial sigma factors, but functions in many ways like sigma in that it is required for promoter recognition and initiation of transcription. To analyze the corebinding region of Mtf1p, monoclonal antibodies to this protein were prepared. Recombinant Mtf1p overproduced in E. coli was purified to near homogeneity and used to raise monoclonal antibodies (mAbs). From fused cells screened for Mtf1p mAbs by immunodot blot analysis, 19 positive clones were initially isolated. Further analysis of positive clones by Western blotting resulted in 4 mAbs of Mtf1p.
The present study was performed to analyze the molecular mechanism which dictates the transcription regulation of the $O^6$-methylguanine-DNA methyltransferase (MGMT) gene in Saccharomyces cerevisiae. Previously we identified one possible upstream repressing sequence (URS) in MGMT promoter by promoter deletion and competition analysis. In this paper we report another regulatory element (UAS: upstream activating sequence. -213 to -136) which affects the transcription activity of MGMT promoter. Gel mobility shift assay and Southwestern blot analysis using UAS probe showed several specific proteins which were able to bind to this sequence.
We previously found three transcription factor-binding motifs in the rat p53 promoter. They are two recognition motifs of NF1-like protein (NF1-like element 1: -296 ~ -312, NF1-like element 2: -195 ~ -219) and a bHLH protein binding element (-142 ~ -146). In this study, we investigated the DNA-protein complex formation of the three elements with nuclear extracts from both normal and regenerating liver to find the element involved in the induced transcription of p53. The level of each DNA-protein complex on NF1-like and bHLH motifs was not changed. Instead, a new element located at -264 ~ -284 was detected in the DNase I footprinting assay with regenerating nuclear extract. This element has partial homology to the AP1 consensus motif. However, the competition studies with diverse oligonucleotides suggest that the binding protein is not AP1. An in vitro transcription assay shows that this element is important for the transcriptional activation of the rat p53 promoter. Therefore, for the induced transcription of the rat p53 promoter, the-264 ~ -284 region is required in addition to two NF1-like and one bHLH motif.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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