Bacterial programmed cell death is regulated by the toxin-antitoxin (TA) system. YhaV (toxin) and Pr1F (antitoxin) have been recently identified as a type II TA system in Escherichia coli. YhaV homologs have conserved active residues within the C-terminus, and to characterize the function of this region, we purified native YhaV protein (without denaturing) and constructed YhaV proteins of varying lengths. Here, we report a new low-temperature method of purifying native YhaV, which is notable given the existing challenges of purifying this highly toxic protein. The secondary structures and thermostability of the purified native protein were characterized and no significant structural destruction was observed, suggesting that the observed inhibition of cell growth in vivo was not the result of structural protein damage. However, it has been reported that excessive levels of protein expression may result in protein misfolding and changes in cell growth and mRNA stability. To exclude this possibility, we used an [$^{35}S$]-methionine prokaryotic cell-free protein synthesis system in vitro in the presence of purified YhaV, and two C-terminal truncated forms of this protein (YhaV-L and YhaV-S). Our results suggest that the YhaV C-terminal region is essential for mRNA interferase activity, and the W143 or H154 residues may play an analogous role to Y87 of RelE.
Effects of cyclic (c) AMP and G-protein related reagents (3-isobutyl-l-methyxanthine (IBMX), Forskolin (FSK), cholera toxin (CTX), and pertussis toxin (PTX≫ on estradiol-17$\beta$ induced vitellogenin (VTG) induction were examined in primary hepatocyte cultures in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. The addition of IBMX, FSK, or CTX to the incubation medium markedly increased VTG production, while PTX was not effective in stimulating the production. It is well known that cAMP regulates phosphorylation and dephosphorylation through mediation of protein kinase A. These results suggest that VTG production is highly dependent on cAMP state in hepatocytes because of its highly phosphorylated nature.
Several lines evidence indicate that microtubule depolymerization initiates DNA synthesis or enhances the effects of serum or purified growth factors in many types of fibroblasts. Yet little is known about the intracellular events responsible for the mitogenic effect of microtubule disrupting agents. The effects of antitubulin agents on DNA synthesis in sparse and dense cultures in the presence or absence of serum and possible involvement of G-proteins in their mitotic action were examined. In these studies, colchicine by itself appeared to be mitogenic only for confluent quiesecent human lung fibroblasts. In sparse culture, however, colchicine inhibited serum-stimulated DNA synthesis. Colcemid, another antitubulin agent, showed similar effects of growth inhibition and stimulation in sparse and confluent cultures while lumicolhicine, inactive colchicine, did not. The mitogenic effect of two antitubulin agents, colchicine and colcemid, was partially inhibited by pertussis toxin. These data suggest that microtubular integrity is associated with the expression of either negative or positive control on DNA synthesis and mitogenic effect of antitubulin agents may be partially mediated by pertussis toxin-sensitive G protein.
The aim of this study was to evaluate capability of pertussis toxin (PT) to active mouse macrophages. The investigations were undertaken to determine whether the role played by this toxin required the A-protomer of the toxin to ADP-ribosylate a guanine nucleotide binding protein (a class I activity) or was dependent on the binding of B-oligomer of the toxin to the surface of target cells (a Class II activity). The results of these experiments have established that the mechanism of macrophage activation with PT seems to be dependent upon a Class II activity of the toxin.
A simplified method for the purification of cholera toxin was developed. The 569B strain of Vibrio cholerae, a recognized hyper-producer of cholera toxin, was propagated in a bioreactor under conditions that promote the production of the toxin. The toxin was separated from the bacterial cells using 0.2-${\mu}m$ crossflow microfiltration, the clarified toxin was passed through the membrane into the permeate, and the bacterial cells were retained in the retentate. The 0.2-${\mu}m$ permeate was then concentrated 3-fold and diafiltered against 10 mM phosphate buffer, pH 7.6, using 30-kDa crossflow ultrafiltration. The concentrated toxin was loaded onto a cation exchange column, the toxin was bound to the column, and most of the impurities were passed unimpeded through the column. The toxin was eluted with a salt gradient of phosphate buffer, pH 7.0, containing 1.0 M NaCl. The peak containing the toxin was assayed for cholera toxin and protein and the purity was determined to be 92%. The toxin peak had a low endotoxin level of $3.1\;EU/{\mu}g$ of toxin. The purified toxin was used to prepare antiserum against whole toxin, which was used in a $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA to determine residual levels of toxin in an oral inactivated whole-cell cholera vaccine. The $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA was shown to be very sensitive and capable of detecting as little as 1 ng/ml of cholera toxin.
Bacillus thuringiensis Cyt2Aa toxin is a mosquito-larvicidal and cytolytic $\delta$-endotoxin, which is synthesized as a protoxin and forms crystalline inclusions within the cell. These inclusions are solubilized under alkaline conditions and are activated by proteases within the larval gut. In order to assess the functions of the N-and C-terminal regions of the protoxin, several N- and C-terminal truncated forms of Cyt2Aa were constructed. It was determined that amino acid removal at the N-terminal, which disrupts the $\beta$1 structure, might critically influence toxin production and inclusion formation. The deletion of 22 amino acids from the C-terminus reduced the production and solubility of the toxin. However, the removal of more than 22 amino acids from the C-terminus or the addition of a bulky group to this region could result in the inability of the protein to adopt the proper folding. These findings directly demonstrated the critical roles of N- and C-terminal amino acids on the production and folding of the B. thuringiensis cytolytic $\delta$-endotoxin.
식물 호르몬의 하나인 앱시스산이 식물의 기공을 닫게 하는 과정 중에 phospholipase C가 활성화되어 inositol 1,4,5-trisphosphate(P3)의 양이 증가함이 보고되었다 (Cot and Crain. 1994). 그러나 아직까지 공변세포에서 phospholipase C의 활성을 조절하는 G-단백질에 대한 보고는 없었다. 그러므로 앱시스산에 의한 기공닫힘과정에 G-단백질이 수반되는지를 조사하고자, G-단백질 활성의 저해제인 pertussis toxin과 촉진제인 cholera toxin을 처리하여 보았다. 닭의장풀(Commelina communis L.)의 잎 뒷면으로부터 얻은 온전한 표피층과 잠두(Vicia faba L)의 잎을 부분 분해하여 공변세포만을 남긴 표피층에 pertussis toxin을 처리하였을 때, 앱시스산에 의한 기공닫힘이 부분적으로 억제됨을 관찰하였다. 그러나 cholera toxin의 경우는 아무런 영향이 없었다. 공변세포만을 지닌 표피층에 pertussis toxin을 전처리한 후 앱시스산을 가했을 때, 앱시스산에 의한 IP3 양의 증가 양상이 억제됨을 확인하였다. 이러한 결과들로부터 앱시스산에 의한 기공닫힘과정에는 pertussis toxin-sensitive, phospholipase C-linked G-protein이 관여하고 있음을 알 수 있었다.
Kim, Byung-Oh;Shin, Sung-Seup;Yoo, Young-Hyo;Pyo, Shuk-Neung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제10권1호
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pp.56-62
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2000
The hpa gene genetically linked to the ctxa2b gene was cloned into the pTED expression vector, and the constructed pTEDhpa/ctxa2b was transformed into Excherichia coli. The fusion protein, the adhesin fused to the cholera toxin subunit A2B (CTXA2B) subunit, was expressed to high levels as inclusion bodies in E. coli. The expressed protein was partially purified by washing the inclusion bodies with working solution containing 8M Urea and 0.1M DTT. Refolding of denatured fusion protein was carried out in the presence of glutathione redox buffer. The refolded fusion protein was purified by size exclusion chromatography. The expressed fusion protein was verified by SDS-PAGE, western blotting with antibodies to both antigenic components of adhesin and cholera toxin subunit B (CTXB), and its N-terminal amino acid sequence was analyzed. The orderly assembled fusion protein was confirmed by modified Gm1-ganglioside ELISA with Abs to adhesin. The results indicate that the purified fusion protein is an Adhesin/CTXA2B protein containing the H. pylori adhesin and $G_{m1}4-ganglioside binding activity of CTXB and the expressed fusion protein in E. coli could be easily purified by the refolding process, Its molecular weight was 168kDa as estimated by size exclusion chromatography. The Adhesin/CTXA2B protein may be used as a candidate antigen for oral immunization against H. pylori.
The FimH subunit of type 1-fimbriated Escherichiu coli (E. coli) has been determined as a major cause for urinary tract infections. Thus, to produce a possible vaccine antigen against urinary tract infections, the fimIH gene was genetically coupled to the ctxa2b gene and cloned into a pMAL-p2E expression vector. The chimeric construction of pMALfimH/ctxa2b was then transformed into E. coli K-12 TB1 and its nucleotide sequence was verified. A fusion protein, based on fusing adhesin to the cholera toxin subunit A2B (CTXA2B), was induced with 0.01 mM isopropyl-${\beta}-D-thiogalactoside$ (IPTG) for 4 h at $37^{\circ}C$ to yield a soluble fusion protein. The fusion protein was then purified by affinity chromatography. The expressed fusion protein was confirmed by SDS-PAGE and Western blotting using antibodies to the maltose binding protein (MBP) or the cholera toxin subunit B (CTXB), plus the N-terminal amino acid sequence was also analyzed. The orderly-assembled fusion protein was confirmed by a modified $G_{Ml}-ganglioside$ ELISA, using antibodies to adhesin. The results indicated that the purified fusion protein was an adhesin/CTXA2B protein containing E. coli adhesin and the $G_{Ml}-ganglioside$ binding activity of CTXB. Accordingly, this adhesin/CTXA2B protein may be a potential antigen for oral immunization against uropathogenic E. coli.
지금까지 많은 연구가 되어 있지 않던 Bacillus thuringiensis serovar. darmstadiensis의 내독소를 Renografin-76 단계적 기울기 원심분리로 분리하여 전자 현미경으로 관찰하여 이중피라미드 구조를 가진 독소 단백질을 확인하였으며 B. thuringiensis serovar. kurstaki HD1의 독소 생성유전자와 B. thuringiensis serovar. darmstadiensis의 유전자가 유사성이 있다는 보고를 근거로 하여 B. thuringiensis serovar. HD1의 독소 생성유전자를 가진 프로브(pUYBT 9044)로 이용하여 colony hybridization 및 Southern hybridization 한 결과 2.6Kb EcoRI 단편 및 3.6Kb Hind III 단편을 선발할 수 있었다. 이들 단편들은 B. thuringiensis serovar. kurstaki HD1 독소 유전자와 hybridization시 유사성이 있었다. 특히 3.5Kb HindIII 단편은 2.6Kb EcoR I 단편에 클로닝되어 있는 1.8Kb의 HD1 독소 유전자와 유사성이 있는 부분을 공유하고 있었으며 1.0Kb 정도의 EcoR I-HindIII 부분이 더 삽입한 것을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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